INSTRUKCJA DO BARWIENIA BŁĘKITEM ALCJANU

1. Skrawki odparafinować - ksylen I - 3 min. ; ksylen II - 3 min.

2. Skrawki nawodnić - alk. 100 % I - 3 min.; alk. 100 % II - 3 min

alk. 96 % - 3 min.; alk.90% - 1 min.

alk. 80% - 1 min.; alk. 70% - 1 min.; woda dest.- 1 min.

3. Barwić błękitem alcjanu - 15 min.

4. Płukać wodą destylowaną - 1 min.

5. Podbarwić jądra komórkowe w czerwieni jądrowej w temp. 37 ⁰ C - 3 min.

6. ( czerwień wstawić do cieplarki przed rozpoczęciem barwienia)

7. Opłukać wodą dest. (krótko)

8. Odwodnić w niskich stężeniach alkoholi ( od alk. 70% do 90%) krótko

9. Odwodnić w alk. 96%, 100% I i II - 3 min.

10. Prześwietlić w ksylenie II i I - 3 min.

11. Zamknąć w balsamie kanadyjskim

WYNIK BARWIENIA:

Jądra kom. - czerwone

Cytoplazma - różowa lub bezbarwna

Kwaśne mukopolisacharydy - niebieskie lub turkusowe

INSTRUKCJA DO BARWIENIA KOŚCI MET. SCHMOORLA

1. Skrawki odparafinować - ksylen I - 3 min. ; ksylen II - 3 min.

2. Skrawki nawodnić - alk. 100 % I - 3 min.; alk. 100 % II - 3 min

alk. 96 % - 3 min.; alk.90% - 1 min.

alk. 80% - 1 min.; alk. 70% - 1 min.; woda dest.- 1 min.

3. Barwić tioniną karbolową - 15 min.

4. Płukać wodą destylowaną - 1 min

5. Barwić w 1 % kwasie pikrynowym - 15 min.

6. Opłukać w wodzie dest.

7. Różnicować w 70% alkoholu - 5 min.(do momentu aż przestaną

8. spływać niebieskie obłoczki barwnika)

7. Odwodnić od alk. 90 %, 96%, 100% I i II -po 1 min.

8. Prześwietlić w ksylenie II i I - 3 min.

9Zamknąć w balsamie kanadyjskim

WYNIK BARWIENIA:

Jądra kom. - czerwono-brązowe

Cytoplazma - brązowa

Substancja podstawowa - żółta