background image

Wykład 7

Ekspresja genów, biosynteza białka, 

metody biotechnologiczne stosowane 

w gospodarce Ŝywnościowej 

background image

Ekspresja genów

2

wd_7

background image

Definicja genu

wd_7

3

background image

Struktura genów prokariotycznych

wd_7

4

Promotor

Sekwencja 
odpowiadająca 
za wiązanie 
rybosomu

Właściwa sekwencja 

kodująca

Terminator 
(transkrypcji)

5’

3’

Miejsce 
inicjacji 
transkrypcji

Sygnał 
START dla 
translacji

Sygnał 
STOP dla 
translacji

DNA

background image

Struktura genów eukariotycznych

wd_7

5

rejony kodujące

(eksony)

rejony niekodujące

(introny)

gen eukariotyczny

DNA

5’

3’

5’

3’

promotor

Miejsce 
inicjacji 
transkrypcji

Miejsce 
terminacji
transkrypcji

background image

kodony stop: 

UAA, UGA, UAG

kodon „start” -

koduje 

metioninę

AUG

6

wd_7

background image

Replikacja DNA w komórkach 

eukariotycznych

7

wd_7

background image

8

wd_7

background image

Replikacja DNA w komórkach 

eukariotycznych cd

wd_7

9

background image

W procesie 

replikacji

stwierdzono wiele aktywności enzymatycznych:

Topoizomeraza

– rozplata podwójną helise DNA, umoŜliwiając 

rozpoczęcie procesu;

helikaza

- rozrywają wiązania wodorowe między nićmi matrycowego 

DNA, rozdzielające je;

prymaza

- syntetyzuje starter – odcinek RNA;

polimerazy DNA

– syntetyzują DNA, wytwarzają wiązania fosfodiestrowe, 

zgodnie z zasadą komplementarności;

egzonukleaza

- usuwa startery RNA z nici;

ligaza DNA

- uzupełnia brakujące wiązania fosfodiestrowe w szkielecie 

nowozsyntezowanej nici DNA – łączy fragmenty Okazaki;

10

wd_7

background image

Transkrypcja u 

eukariotów

11

wd_7

background image

nić sensowna

nić antysensowna

2. elongacja

– polimeraza RNA syntetyzuje RNA w kierunku 5’→3’ 

uŜywając 5’-trifosforanów jako substraty Kolejne zasady dobudowywane 
są na podstawie komplementarności zasad (szybkość 50-100 zasad/sek), 
zamiast 

tyminy występuje uracyl

!

12

wd_7

background image

Transkrypcja u eukariotów cd

3. terminacja

– transkrypcja trwa 

A

C

G U

C

C

C

C

C

C

A

A

A

A

A A

G

G

G G

G

U

U

U

RNAP

5’

wd_7

13

3. terminacja

– transkrypcja trwa 

do momentu, gdy kompleks 
transkrypcyjny napotka sygnał 
terminacji np. palindromowy
rejon bogaty w GC w efekcie RNA 
przybiera postać 

struktury spinki od 

włosów

innym sposobem terminacji jest 

białko rho

które rozpoznaje 

miejsca terminacji i kończy 
tarnskrypcję

5’
mRNA

Sekwencja 
terminacyjna

RNAP

Rho

ATPaza

zatrzymanie

background image

Dojrzewanie mRNA u eukariotów:

Synteza blokady

(kapu)

na końcu 5’ –

przyłączenie 

7-metyloguanozyny (m7G),

kap zabezpiecza koniec 5’ transkryptu przed 

atakiem rybonukleaz oraz pełni rolę przy 

biosyntezie białka –

tylko mRNA ma kap –

rRNA i tRNA kapu nie posiadają

Poliadenylacja

końca 3’

– dołączenie nawet 

Poliadenylacja

końca 3’

– dołączenie nawet 

do 500 reszt A – powstaje 

ogon poly(A),

sekwencja ta stabilizuje mRNA ułatwia 

tworzenie kompleksu z odpowiednimi 

białkami i 

utrudnia atak rybonukleazom

Splicing

– usunięcie

sekwencji intronowych

połączenie

sekwencji eksonowych

funkcjonalną cząsteczkę mRNA, 

katalizowanie 

przez snRNA – moŜliwy 

alternatywny splicing

Redagowanie RNA 

-

polega na insercji lub 

delecji nukleotydów oraz na deaminacji

nukleozydów (C

U) – nie u wszystkich 

organizmów

14

wd_7

background image

wd_7

15

background image

Biosynteza białka u eukariotów

16

wd_7

background image

Aminoacylo – tRNA: aktywowane związki 

pośrednie w biosyntezie białka

1 etap

2 etap

Dwuetapowa synteza aminoacylo-tRNA

17

wd_7

background image

3 etapowa biosynteza białka - powstawanie wiązania 

peptydowego pomiędzy aminokwasami

P- miejsce peptydylowe, A – miejsce aminokwasowe na rybosomie

18

wd_7

background image

19

wd_7

background image

Biosynteza białka - podsumowanie

20

wd_7

background image

Obróbka potranslacyjna białka

21

wd_7

background image

Kontrola ekspresji genów

22

wd_7

background image

Operon laktozowy

brak laktozy

laktoza

Laktoza + H

2

→ galaktoza + glukoza 

enzym: 

ββββ

-galaktozydaza

laktoza

23

wd_7

background image

Metageneza, uszkodzenia i naprawa DNA

24

wd_7

background image

Delecja

wd_7

25

Mechanizm delecji na poziomie 

całego chromosomu 

background image

Insercja

wd_7

26

Mechanizm insercji na poziomie 

całego chromosomu. 

background image

Mutageny

Metyzacja guanidyny w DNA 
przez dichlorfos (substancja 
czynna insektycydów 
fosforoorganicznych):

27

wd_7

background image

28

wd_7

background image

Naprawa DNA

29

wd_7

background image

Elementy inŜynierii molekularnej

30

wd_7

background image

Enzymatyczny rozkład kwasów 

nukleinowych.

Działanie DNAazy II na cząsteczkę DNA

31

wd_7

background image

5’ GGTACCAATTCAAAGCTTATG 3’

3’ CCATGGTTAAGTTTCGAATAC 5’

Enzymy restrykcyjne – rozcinanie DNA w 

specyficznych miejscach

Alu I

Hind III

A

↓↓↓↓

AGCTT

TTCGA

↑↑↑↑

A

5’ GGTACCAATTCA

3’

3’ CCATGGTTAAGT

TTCGA

5’

5’

AGCTT

ATG 3’

3’

A

TAC 5’

Alu I

AG

↓↓↓↓

CT

TC

↑↑↑↑

GA

5’ 

CT

TATG 3’

3’ 

GA

ATAC 5’

5’ GGTACCAATTCAA

AG

3’

3’ CCATGGTTAAGTT

TC

5’

tępe końce

lepkie/wystające końce

32

wd_7

background image

5’ GGTACCAATTCA

A

||||||||||||||||||||  

3’ CCATGGTTAAGT

TTCGA

AGCTT

ATG 3’

|

A

TAC 5’

5’ GGTACCAATTCA

A

||||||||||||||||||||  

3’ CCATGGTTAAGT

TTCGA

AGCTT

ATG 3’

|

A

TAC 5’

Hind III

A

↓↓↓↓

AGCTT

TTCGA

↑↑↑↑

A

Hind III

5’ GGTACCAATTCA

3’

5’

AGCTT

ATG 3’

5’ GGTACCAATTCA

3’

|||||||||||||

5’

AGCTT

ATG 3’

|||

Enzymy restrykcyjne – zastosowanie

5’ GGTACCAATTCA

A

|||||||||||||

||||

|||  

3’ CCATGGTTAAGT

TTCGA

AGCTT

ATG 3’

|

A

TAC 5’

|||||||||||||

3’ CCATGGTTAAGT

TTCGA

5’

5’

AGCTT

ATG 3’

|||

3’

A

TAC 5’

|||||||||||||

3’ CCATGGTTAAGT

TTCGA

5’

|||

3’

A

TAC 5’

ligaza

33

wd_7

background image

5’ GGTACCCGGGCAA

||||||||||||||||||||  

3’ CCATGGGCCCGTTTCGA

AGCTTATG 3’

|

ATAC 5’

5’ GGTACCAATTCAA

||||||||||||||||||||  

3’ CCATGGTTAAGTTGGCC

CCGGTATG 3’

|

ATAC 5’

Xma I

A

↓↓↓↓

CCGGT

TGGCC

↑↑↑↑

A

Age I

C

↓↓↓↓

CCGGG

GGGCC

↑↑↑↑

C

5’ GGTACCAATTCAA 3’

5’CCGGTATG 3’

5’ GGTAC 3’

Enzymy restrykcyjne – zastosowanie

ligaza

5’ GGTACCAATTCAA 3’

|||||||||||||

3’ CCATGGTTAAGTTGGCC 5’

5’CCGGTATG 3’

||||

3’ATAC 5’

5’ GGTAC

CCGG

T

ATG

||||||||||||| 

3’ CCATG

GGCC

A

TAC

3’

5’

C

↓↓↓↓

CCGGG

GGGCC

↑↑↑↑

C

A

↓↓↓↓

CCGGT

TGGCC

↑↑↑↑

A

Xma I

Age I

5’ GGTAC 3’

|||||

3’ CCATGGGCC 5’

5’CCGGGCAAAGCTTATG 3’

||||||||||||

3’CGTTTCGAATAC 5’

34

wd_7

background image

Cykl syntezy DNA w reakcji PCR

35

wd_7

background image

Reakcja  PCR - mieszanina reakcyjna

dwuniciowa 
matryca DNA

sekwencja docelowa

bufor

dNTP

starter1

starter2

polimeraza Taq

36

wd_7

background image

94°C

15s

94°C

3 min

te

m

p

er

at

u

ra

15x 

1x 

1x 

94°C

15s

94°C

3 min

te

m

p

er

at

u

ra

15x 

1x 

1x 

Profil termiczny reakcji PCR

65°C

15s

72°C

30s

czas

72°C

30s

4°C

±∞

65°C

15s

72°C

30s

czas

72°C

30s

4°C

±∞

cykl 

podstawowy

cykle dodatkowe

37

wd_7

background image

Zastosowanie metody PCR

38

wd_7

background image

wektor

trawienie enzymem restrykcyjnym

DNA zawierający 
wstawkę, 
którą chcemy 
przeklonować

trawienie 

enzymem 

restrykcyjnym

wstawka

Klonowanie DNA

ligacja wektora 
ze wstawką

plazmid ze wstawką gotowy 

do wprowadzenia do bakterii

39

wd_7

background image

Pozytywne aspekty GMO

40

wd_7