Metabolizm bakterii – źródła węgla, azotu i energii

• PodłoŜe mineralne AB

sole A + sole B + czerwień fenolowa + sole Tuovinena + agaroid fosforany tiosiarczan mikroelementy sodu

podłoŜe stałe, selekcyjne dla chemolitoautotrofów

źródło energii – tiosiarczan sodu Na2S2O3

źródło węgla – CO2

czerwień fenolowa znacznik dla zmiany pH (z lekko zasadowej na kwasową), tj.

obecności bakterii, które utleniają tiosiarczan do SO 2-

4 (barwa czerwona zmienia się

na Ŝółtą)

obligatoryjne chemolitoatotrofy rosną tylko na tym podłoŜu

Np. Halothiobacillus neapolitanus

(pałeczka gram-, bezwzględny chemolitoautotrof, bezwzględny tlenowiec, uzyskuje energię z utleniania siarki i jej zredukowanych związków nieorganicznych)

fakultatywne chemolitoautotrofy rosną na tym podłoŜu i na podłoŜu dla heterotrofów

Np. Paracoccus versutus

(pałeczka gram-, względny chemolitoautotrof, zdolny do wzrostu autotroficznego na poŜywkach tiosiarczanem; prototrof, rośnie heterotroficznie na licznych związkach organicznych, które wykorzystuje jako jedyne źródło C i energii)

Wzrost bakterii na podłoŜu AB – bardzo słaby, ale zauwaŜalny (Ŝółknie), gdyŜ

utlenianie związków nieorganicznych zapewnia tylko nieznaczny wzrost Chemoorganoheterotrofy nie rosną na poŜywce AB

Np. Bacillus subtilis

Micrococcus luteus

• Agar odŜywczy

Bulion odŜywczy + agar-agar + woda

podłoŜe stałe, pełne, dla heterotrofów lub fakultatywnych autotrofów źródło węgla – pepton

rosną bakterie chemoorganoheterotroficzne, dla których źródłami C i energii są związki zawarte w podłoŜu

Np. Bacillus subtilis

(laseczka gram+, chemoorganotrof, prototrof)

1

Micrococcus luteus

(ziarniak gram+, tlenowiec, chemoorganotrof, auksotrof)

rosną teŜ fakultatywne chemolitoautotrofy, które w obecności organicznych związków węgla przestawiają się na tryb heterotroficzny

Np. Paracoccus versutus

Obligatoryjne chemolitoautotrofy nie rosną na tym podłoŜu, ze względu na brak związków nieorganicznych, z utlenienia których mogłyby czerpać energię do asymilacji CO2 (nawet jeśli miałyby związek nieorg. to ich wzrost byłby tak znikomy w porównaniu ze wzrostem bakterii heterotroficznych, Ŝe nie byłyby one zauwaŜalne)

Np. Halothiobacillus neapolitanus

Pełne podłoŜe zawiera wszystkie potrzebne czynniki wzrostu dla róŜnych szczepów E.

coli

Escherichia coli WT

Escherichia coli MG1693 thr, leu, pro, his, arg, tiamina

Escherichia coli AB1157 tymina

(pałeczka gramm - , rodzina enterobacteriaceae, względny beztlenowiec, chemoorganotrof, WT

prototropf)

• PodłoŜe dla nitryfikatorów

Woda + sole mineralne

(NH4)2SO4, MgSO4, FeSO4, K2HPO4, NaCl, CaCO3

podłoŜe płynne, mineralne, selekcyjne

źródło węgla – CO2

źródło energii – związki nieorganiczne

brak związków organicznych

obecne źródło S, P, NH +

4

NH +

4 -najbardziej zredukowana forma azotu, łatwo dostępna dla bakterii bakterie nitryfikacyjne – obligatoryjne chemolitoautotrofy

hodowane w czystych roztworach soli rosną bardzo powoli (czas generacji – ok. 10

godz), dlatego nie obserwujemy zmętnienia

I faza: NH +

-

4 NH2OH NO2 (Nitroso- )

II faza: NO -

-

2 NO3 (Nitro- )

dodajemy grudkę gleby, inkubujemy przez tydzień

wykrywamy obecność jonów azotynowych NO -

2 przez dodanie kropli mieszaniny

α-naftyloaminy z kwasem sulfanilowym.

Powstanie róŜowego zabarwienia świadczy o obecności w glebie bakterii Nitrosomonas

• Agar odŜywczy + skrobia (1%)

2

Źródło energii – związek organiczny

Źródło węgla – pepton + skrobia

Wyrosną bakterię heterotroficzne:

Escherichia coli (dziki)

Bacillus subtilis

Wykorzystywanie skrobi jako dodatkowego źródła węgla wykrywamy przez dodanie płynu Lugola, brak zabarwienia w miejscach gdzie skrobia została rozłoŜona świadczy o właściwościach amfolitycznych

Bacillus subtilis

Fioletowe zabarwienie w miejscach gdzie skrobia nadal znajduje się w podłoŜu: Escherichia coli (dziki)

• Agar odŜywczy + mleko(4%)

jałowe, odtłuszczone

PodłoŜe stałe, półprzezroczyste (mleczny wygląd nadawany przez kazeinę), źródło węgla – pepton + kazeina

wykorzystywane do wielu testów, na ćwiczeniach badamy zdolności proteolityczne bakterii – rozkładanie kazeiny (zanika zmętnienie)

Na poŜywce rosną bakterie heterotroficzne:

Escherichia coli

Bacillus subtilis (dziki)

Zanik zmętnienia, świadczący o zdolnościach proteolitycznych (wykorzystywanie kazeiny jako dodatkowego źródła węgla) obserwujemy wokół posiewu: Bacillus subtilis

Nie obserwujemy wokół posiewu:

Escherichia coli (dziki)

• Agar odŜywczy + tłuszcz(3%)

wrząca margaryna

podłoŜe stałe, róŜnicujące

źródło węgla – pepton + tłuszcze

bakterie wykorzystują tłuszcz jako dodatkowe źródło węgla rozkładają tłuszcz do glicerolu i wolnych kwasów tłuszczowych

3

KT reagują z siarczanem miedzi (20% roztwór CuSO4) powstaje szmaragdowe zabarwienie

Na wzbogaconej poŜywce agarowej rosną oba posiane szczepy heterotroficzne: Escherichia coli

Pseudomonas fluorescens

(pałeczka gramm -, orzęsione, tlenowce, chemoorganotrof, prototrof, heterotrof, denitryfikator) Po zalaniu roztworem CuSO4 powstaje szmaragdowe zabarwienie, świadczące o zdolności do wykorzystywania tłuszczu wokół posiewu:

Pseudomonas fluorescenscens

Zabarwienia nie obserwujemy wokół posiewu:

Escherichia coli

• śelatyna odŜywcza

Woda + Ŝelatyna + pepton

PoŜywka stała, wylewana w słupki

Źródło węgla – pepton + Ŝelatyna

śelatyna – białko, bakterie posiadające zdolności proteolityczne będą ją rozkładać (te same, które rozkładają kazeinę)

Obserwujemy rozrzedzenie poŜywki, świadczące o zdolnościach proteolitycznych i rozłoŜeniu Ŝelatyny – zestalacza:

Bacillus subtilis

Na nie rozrzedzonej poŜywce rośną bakterie nie mające zdolności proteolitycznych: Escherichia coli

• EMB z laktozą

Ekstrakt droŜdŜowy + hydrolizat kazeiny + K2HPO4 +NaCl + woda + agar-agar +

laktoza

i eozyna + błękit metylenowy – rozkładające laktozę charakteryzują się bordowym zabarwieniem wzrostu (powstanie kwasu mlekowego)

Escherichia coli lac+

Escherichia coli lac- (jasne zabarwienie wzrostu)

Skrypt: lac+ zabarwienie fioletowe z metalicznym połyskiem; lac- kolonie zabarwione na róŜ owo

Źródło węgla – laktoza + hydrolizat kazeiny ?

Źródło energii –

• PodłoŜe Davisa dla prototrofów

Davis – K2HPO4, KH2PO4, MgSO4, (NH4)2SO4, woda

+ agaroid +glukoza 20%

4

Escherichia coli WT wyrośnie jako jedyna bo nie potrzebuje dodatkowych czynników wzrostu

Escherichia coli AB1157 thr, leu, pro, his, arg, tiamina

Escherichia coli MG1693 tymina

Źródło węgla – glukoza

Źródło energii –

• PodłoŜe Davisa dla auksotrofów

Davis + glukoza +agaroid

+kazeina +tiamina

Escherichia coli WT

Escherichia coli AB1157 w podłoŜu znajdują się potrzebne czynniki wzrostu Escherichia coli MG1693

Źródło węgla – glukoza + kazeina?

Źródło energii –

• PodłoŜe dla bakterii wiąŜących azot

Woda+ mannitol +K2HPO4 + KH2PO4 +MgSO4 + NaCl + CaCO3 + FeCl2

+Na2MoO4

PodłoŜe płynne, brak azotu w podłoŜu

Źródło węgla - mannitol

Źródło energii – związki nieorganiczne

Bakterie izolujemy z gleby – te wolnoŜyjące nie związane z korzeniami Warunki tlenowe - kolba

Azotobacter sp.

śluzowaty koŜuch (w obecności mannitolu w podłoŜu)

Warunki beztlenowe – probówka „z górką” + sacharoza

Clostridium pasteurianum

(laseczka gramm +, bezwzględny beztlenowiec, chemoorganotrof, prototrof, zdolny do wiązania azotu cząsteczkowego, gromadzi granulozę)

fermentacja masłowa – zapach

+ pęcherzyki gazu z dna probówki

oraz obserwacje pod mikroskopem

• PodłoŜe Davisa z róŜnymi źródłami azotu

Davis + glukoza (20%) + akaroid

5

+ źródło azotu:

- 10% NH4Cl –bardzo dobre uniwersalne źródło azotu – juŜ zredukowane Escherichia coli

Bacillus subtilis

- 10% KNO3 – by azotany były źródłem azotu do syntez muszą być zredukowane do formy NH3

Escherichia coli – nie potrafi redukować azotanów – brak reduktazy azotanowej asymilacyjnej (hamowana przez sole amonowe obecne w cytoplazmie) Bacillus subtilis

- 20% hydrolizat kazeiny

Escherichia coli

Bacillus subtilis

Źródło węgla – glukoza

Źródło energii -

6