background image

Politechnika Gdaoska, międzywydziałowy kierunek „INŻYNIERIA BIOMEDYCZNA” 

 

Projekt „Przygotowanie i realizacja kierunku inżynieria biomedyczna – studia międzywydziałowe”  
współfinansowany ze środków Unii Europejskiej w ramach Europejskiego Funduszu Społecznego. 

 

 
 
 

 

 
 
 
 

SKRYPT DO LABORATORIUM 

 
 
 

CHEMIA 

 
 

ĆWICZENIE L7: Kinetyka reakcji chemicznych  

 

autor: 

dr hab. inż. Anna Skwierawska  

 
 
 
 
 
 

Gdaosk, 2010 

 
 
 

background image

Politechnika Gdaoska, międzywydziałowy kierunek „INŻYNIERIA BIOMEDYCZNA” 

2

 

CHEMIA, Anna Skwierawska 

1.  Wymagania wstępne 

Znajomośd takich pojęd jak: rząd reakcji, reakcje pierwszorzędowe, drugorzędowe; reakcje pseudo-
pierwszorzędowe i reakcje zerowego rzędu. Znajomośd podstawowych równao kinetycznych oraz 
wpływu parametrów na szybkośd reakcji. Dodatkowo umiejętnośd ważenia, pipetowania, 
miareczkowania, obliczania stężenia procentowego i molowego.    
 
Cele dwiczenia:  
Zapoznanie  studentów  z  doborem  metod  do  określenia  rzędu  reakcji  i  wyznaczania  stałych 
kinetycznych. 
 

Spodziewane efekty kształcenia - umiejętności i kompetencje:  

Umiejętne posługiwanie się szkłem laboratoryjnym, zapoznanie się z obsługą konduktometru. 
Dokonywanie dokładnych pomiarów. 
 

Metody dydaktyczne: 

Praktyczna realizacja zadao teoretycznie opisanych w instrukcji. 
 
Zasady oceniania/warunek zaliczenia dwiczenia 

Warunkiem  zaliczenia  dwiczenia  jest  sporządzenie  sprawozdania.  W  sprawozdaniu  należy  umieścid: 
krótki  opis  wykonanych  dwiczeo,  otrzymane  wyniki  w  postaci  uzupełnionych  tabel;    sporządzid 
wykresy  zależności  ln  λ  (1/c)  w  funkcji  czasu  (w  przypadku  gdy  punkty  pomiarowe  nie  wyznaczają 
równania  prostej,  należy  je  wyznaczyd  metodą  najmniejszych  kwadratów);  obliczyd  wartośd  stałych 
szybkości reakcji oraz okresy połowicznej przemiany nanosząc punkty doświadczalne oraz wnioski. 
 
Wykaz literatury podstawowej do dwiczenia: 

1.  Skrypt do wykładu 
2.  Red. E. Luboch, M. Bocheoska, J.F. Biernat „Chemia ogólna. Dwiczenia laboratoryjne” Wyd. PG 

2003 – rozdział 16.  

3.  A. Molski „Wprowadzenie do kinetyki chemicznej” WNT, 2001 

 

P. W. Atkins „ Chemia Fizyczna” PWN, 2001 

 

2. Przebieg dwiczenia  

L.p.  Zadanie 
1. 

Wprowadzenie  prowadzącego,  informacja  o  warunkach  bezpieczeostwa,  przydzielenie 
określonych zadao podgrupom studentów 

2.  

Realizacja zadao zgodnie z instrukcją do dwiczenia i podanymi uszczegółowieniami 

3. 

Sprawdzenie uzyskanych wyników i dyskusja 

 

UWAGI! 

 

 

 

background image

Politechnika Gdaoska, międzywydziałowy kierunek „INŻYNIERIA BIOMEDYCZNA” 

3

 

CHEMIA, Anna Skwierawska 

3. Wprowadzenie do dwiczenia 

Podstawy teoretyczne 

Jedną  z  najbardziej  użytecznych  spośród  metod  fizykochemicznych  stosowanych  w  celu  poznania 

mechanizmów reakcji, jest pomiar szybkości reakcji 

Szybkośd reakcji, czyli liczba moli substratów, które reagują w jednostce czasu jest proporcjonalna do 

iloczynu stężeo substancji reagujących i niezależny od stężeo substancji obecnych, prócz substratów tj. 

produkty  reakcji  i  rozpuszczalniki.  Zakłada  się,  że  szybkośd  reakcji  jest  proporcjonalna  do  liczby 

zderzeo  substratów  w  jednostce  czasu.  Częstośd  zderzeo  jest  z  kolei  proporcjonalna  do  iloczynu 

stężeo. Stężenia substancji reagujących maleją stale podczas reakcji, z tego powodu do opisu używa 

się pochodnej –dc/dt. Przez c oznacza się stężenie *mol/l+, wybranej substancji reagującej w czasie t [s, 

min,  godz.],  mierzonym  od  początku  reakcji.  Znak  minus  wskazuje  spadek  stężenia,  substancji 

reagujących.  Jeśli  w  reakcji  bierze  udział  tylko  jedna  substancja,  szybkośd  reakcja  wyrażona  jest 

równaniem (1): 

kc

dt

dc

   (1) 

Na podstawie danych doświadczalnych można stwierdzid, że parametrami wpływającymi na szybkośd 

reakcji  chemicznej  są:  temperatura,  stężenie,  w  przypadku  gazów  również  ciśnienie  oraz  obecnośd 

katalizatorów.  

Stała proporcjonalności k nazywa się stałą szybkości. Stała szybkości równa jest jedności, gdy stężenia 

wszystkich  substancji  reagujących  są  równe  jedności.  Stała  szybkości  nie  zależy  od  stężenia  i  jest 

wielkością charakterystyczną dla reakcji w danych warunkach. 

 

Rząd  reakcji.  Wyróżniamy  reakcje  I  rzędu,  II  rzędu  itd.,  w  zależności  od  liczby  mnożników  stężenia, 

występujących  w  równaniu  szybkości  reakcji.  Równanie  kinetyczne  (1),  jest  równaniem  I  rzędu. 

Odpowiada  ono  reakcji  jednocząsteczkowej,  którą  można  przedstawid  następującym  równaniem 

chemicznym (2): 

S

1

   →  P

1

   +   P

2

   +  …   (2) 

Stężenie c z równania (1) odnosi się do substratu S

1

, więc można przyjąd c = [S

1

]  

 

Dla reakcji dwucząsteczkowej (3): 

S

1

   +   S

2

   →  P

1

   +   P

2

   +  …   (3) 

Równanie kinetyczne II rzędu  (4): 

 

background image

Politechnika Gdaoska, międzywydziałowy kierunek „INŻYNIERIA BIOMEDYCZNA” 

4

 

CHEMIA, Anna Skwierawska 

t  [s, min., godz.]

ln

c

B

A (x

1

, y

1

)

B (x

2

, y

2

)

A

y

x

tg

k

2

1

0

0

2

ln

kt

c

c

k

t

2

ln

2

1

]

][

[

]

[

]

[

2

1

2

1

S

S

k

dt

S

d

dt

S

d

   (4) 

W  reakcjach  dwucząsteczkowych  tego  typu  szybkośd  zmiany  stężenia  substratu  S

1

  jest  równa 

szybkości  zmiany  stężenia  S

2

,  wynika  to  z  zapisu  równania  (3),  według  którego  1  mol  S

1

  reaguje  z 

jednym  molem  S

2

.  Jeśli  w  reakcji  dwucząsteczkowej  stężenia  substratów  S

1

  i  S

2

  są  równe,  lub  gdy 

reagują ze sobą dwie identyczne cząsteczki, wówczas wzór (4) przyjmuje postad: 

2

kc

dt

dc

 

(5) 

Przedstawione  równania  po  scałkowaniu  można  wykorzystad  do  oznaczania  rzędu  reakcji  i  tak  dla 

reakcji I. 

 

kc

dt

dc

v

t

c

c

dt

k

c

dc

0

0

 

kt

c

c

0

ln

ln

 

Jeśli analizowana reakcja jest reakcją pierwszorzędową, to wykreślając wykres, lnc, jako funkcja czasu 

otrzymuje się linię prostą. Nachylenie tej prostej równe jest wartości liczbowej stałej szybkości reakcji 

k.  

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Znając stałą k, można wyliczyd inny bardzo ważny parametr kinetyczny, jakim jest okres połowicznej 

przemiany.  Okres  połowicznej  przemiany  (okres  półtrwania)  -  to  czas,  w  którym  stężenie  substratu 

zmniejsza się o połowę. Tak, więc podstawiając  

 

 

background image

Politechnika Gdaoska, międzywydziałowy kierunek „INŻYNIERIA BIOMEDYCZNA” 

5

 

CHEMIA, Anna Skwierawska 

0

2

1

c

c

k

t

2

ln

2

1

t

c

c

dt

k

c

dc

0

2

0

 

 

Znajomośd  kinetyki  reakcji  oraz  wynikającego  stąd  okresu  połowicznej  przemiany  jest  niezwykle 

ważna w medycynie, gdzie w oparciu o farmakokinetykę bada się właściwości terapeutyczne danych 

leków jak również rozkład trucizn, związków radioaktywnych.  

 

Przykład:  

Obliczenie  okresu  półtrwania  dla  eliminacji  metylku  rtęci  z  organizmu  człowieka.  Na  podstawie 

oznaczenia  poziomu  metylu  rtęci  u  osób  uratowanych  z  zatrucia  fungicydem  stwierdzono,  że  średni 

czas  wydalania  wynosi  1,75%  całkowitej  dawki  w  czasie  jednego  dnia.  Przeprowadzone  badania 

wskazują,  że  rozkład  metylku  ołowiu  jest  reakcją  I  rzędu.  Jaka  jest  wartośd  czasu  półtrwania 

wyznaczona przez tą obserwację?  

Rozwiązanie:  

kt

c

c

0

ln

ln

 

 

 

gdzie: 

stężenie w danym czasie t (mg/L) 

t  

czas (w godzinach) 

c

stężenie początkowe (mg/L), więc:  

t

1/2

 = - ln(0.5) / (0.0175 dziennie) = 39.6 dni 

 

Reakcje rzędu II 

Jak już wspomniano wcześniej, do tego typu zaliczamy reakcje, których szybkośd jest proporcjonalna 

do kwadratu stężenia jednego ze substratów lub do iloczynu stężeo obu substratów. Jeśli początkowe 

stężenia  obu  reagentów  są  równe,  wówczas  oba  przypadki  można  opisad  jednakowym  równaniem 

kinetycznym i jak poprzednio scałkowad w danych granicach (równania 4 i 5). 

 

 

 

 

background image

Politechnika Gdaoska, międzywydziałowy kierunek „INŻYNIERIA BIOMEDYCZNA” 

6

 

CHEMIA, Anna Skwierawska 

kt

c

c

0

1

1

 

  

Otrzymana  zależnośd  jest  funkcją  odwrotności  stężenia  względem  czasu.  Jeśli  więc  doświadczalnie 

wyznaczona  zależnośd  1/c  od  czasu  jest  linią  prostą,  to  badana  reakcja  jest  rzędu  drugiego.  W  tym 

przypadku nachylenie prostej pozwala na wyznaczenie stałej szybkości reakcji.  

 

Opracowanie wyników 

Bardzo  często  otrzymane  wyniki  nie  tworzą  linii  prostej.  Na  ogół  jest  to  spowodowane 

niedokładnością  wykonywanych  pomiarów,  lub  błędami  przypadkowymi.  W  takiej  sytuacji  należy 

dokonad  jak  najlepszego  dopasowania  linii  prostej  do  punktów  pomiarowych,  na  przykład  metodą 

najmniejszych kwadratów. Metoda ta pozwala na wykorzystanie wszystkich punktów pomiarowych i 

obliczenie  szacunkowych  odchyleo  prawdziwej  wartości  k  od  uzyskanej,  jako  średnia  pomiarów. 

Poniżej  przedstawiono  wzory  pozwalające  na  wyznaczenie  parametrów  prostej  jak  również 

oszacowanie błędów. 

 

b

ax

y

 

2

2

)

(

i

i

i

i

i

x

x

n

y

y

x

n

a

 

)

(

1

i

i

x

a

y

n

b

 

 

Gdzie: 

x

i

, y

i

 

wartości doświadczalne 

n  

liczba wykonanych pomiarów 

 

Błędy wyznaczonych wartości a i b określone są wzorami: 

 

2

2

2

)

(

)[

2

(

]

[

i

i

i

i

i

i

a

x

x

n

n

y

b

y

x

a

y

n

S

n

x

S

S

i

a

a

2

2

 

 

Metoda  najmniejszych  kwadratów  należy  do najpopularniejszych  i z  tego  powodu  wiele  programów 

komputerowych  służących  do  opracowania  wyników  jest  w  nią  standardowo  wyposażonych,  na 

przykład Excel

 

Wart  podkreślenia  jest  fakt,  że  w  równaniach  kinetycznych  stężenie  może  byd  zastąpione  dowolną 

wielkością doo proporcjonalną, nawet, jeśli stała proporcjonalności jest nieznana. Na przykład można 

background image

Politechnika Gdaoska, międzywydziałowy kierunek „INŻYNIERIA BIOMEDYCZNA” 

7

 

CHEMIA, Anna Skwierawska 

użyd  liczby  mililitrów  roztworu  zużytego  do  miareczkowania  substancji  reagujących,  kąta  skręcania 

płaszczyzny  polaryzacji  światła  spolaryzowanego,  ciśnienia  dla  reakcji  gazowych,  przewodnictwa,  pH 

itp. 

 

Reakcje pseudo jednocząsteczkowe 

Istnieją pewne reakcje o kinetyce I rzędu, mimo że badania chemiczne reakcji wskazują na przebieg 

dwucząsteczkowy.  Klasycznym  przykładem  takich  reakcji  jest  hydroliza,  alkoholiza  itp.  Jako  przykład 

można podad kwaśną hydrolizę sacharozy na glukozę i fruktozę.  

 

C

12

H

22

O

11

   +   H

2

O   →   C

6

H

12

O

6

   +   C

6

H

12

O

6

 

 

Reakcja  przebiega  w  rozcieoczonym  roztworze  wodnym  bez  kłopotu  można  oznaczyd  analitycznie 

zmiany stężenia sacharozy, lecz nie wody, gdyż stężenie wody zmienia się nieznacznie.  

 

Reakcje zerowego rzędu 

Do tej grupy należą reakcje, których szybkośd nie zależy od stężenia reagentów. Tego typu reakcje są 

dośd  rzadkie.  Przykładami  mogą  byd  reakcje  biegnące  na  granicy  faz  lub  niektóre  zachodzące  w 

organizmach żywych. Tu można wspomnied o reakcji eliminacji alkoholu z organizmu ludzkiego. 

 

Przykład:  

Eliminacja  etanolu.  Metabolizm  etanolu  jest  reakcją  zerowego  rzędu  (tzn.  wydalanie  jest  stałe  i 

niezależne  od  stężenia).  Jeśli  normalny  człowiek  jest  zdolny  do  metabolizowania  10  ml  etanolu  na 

godzinę, to jak długo będzie trwało wydalanie sześciu puszek piwa o zawartości alkoholu 4,5%?  

Rozwiązanie: 

t = stosunek dawki całkowitej do szybkości eliminacji  

= (6 piw)x(500mL/piwo)x(4,5% alkoholu) / (10 ml/godz)  

= 13,5 godziny 

 

 

 

 

background image

Politechnika Gdaoska, międzywydziałowy kierunek „INŻYNIERIA BIOMEDYCZNA” 

8

 

CHEMIA, Anna Skwierawska 

Ćwiczenia 

 

Zadanie 1 – Hydroliza chlorku tert-butylu 

 

Hydrolizę chlorku tert-butylu w środowisku wodno-alkoholowym można opisad równaniem 

 

C

4

H

9

Cl  +  2H

2

O  →  C

4

H

9

OH  + Cl

-

  + H

3

O

 

Produktami  hydrolizy  są  alkohol  tert-butylowy  i  chlorowodór.  Jest  to  przykład  reakcji  pseudo-

pierwszego rzędu. Jej szybkośd zależy od stężenia chlorku  tert-butylu. Ponieważ bezpośredni pomiar 

zmian stężenia substratu jest trudny, dokonuje się pomiaru wielkości proporcjonalnej do stężenia w 

tym  przypadku  przewodnictwa  roztworu.  Zmiany  przewodnictwa  roztworu  zależą  od  stężenia 

zdysocjowanego na jony chlorowodoru. 

 

Aparatura i odczynniki 

Zlewka  100 mL, cylinder miarowy 100 mL, pipeta 1mL 

Mieszadło magnetyczne, dipol magnetyczny, konduktometr, elektroda konduktometryczna, stoper 

Mieszanina woda-etanol (3:2), chlorek tert-butylu 

Wykonanie dwiczenia 

Do zlewki o pojemności 100 mL odmierzyd cylindrem 80 mL mieszaniny woda-etanol (3:2). Do zlewki 

włożyd  dipol  magnetyczny.  Zlewkę  ustawid  na  płytce  mieszadła  magnetycznego.  Ustawid  obroty 

mieszadła tak by roztwór był intensywnie mieszany i zanurzyd elektrodę konduktometru w roztworze. 

Sposób  obsługi  konduktometru  poda  osoba  prowadząca  dwiczenie.  Włączyd  mieszanie.  Zmierzyd 

przewodnictwo  roztworu  λ

0

.  Za  pomocą  suchej  pipety  dodad  0,3  mL  chlorku  tert-butylu  i  odczytad 

czas  t

0

.  W  odstępach  dwuminutowych  dokonad  10  odczytów  przewodnictwa  roztworu.  Następnie 

wyłączyd konduktometr, ale nie mieszadło i ostatni odczyt przewodnictwa λ

 wykonad po upływie 60 

minut. 

 

1.  Uzupełnid tabelę pomiarów 

2.  Sporządzid wykres zależności ln(λ

- λ

t

) w funkcji czasu. W przypadku, gdy punkty pomiarowe 

nie wyznaczają prostej, należy wyznaczyd równanie prostej korzystając z metody najmniejszych 

kwadratów. 

background image

Politechnika Gdaoska, międzywydziałowy kierunek „INŻYNIERIA BIOMEDYCZNA” 

9

 

CHEMIA, Anna Skwierawska 

O

OCH

3

+   OH

-

C

O

O

+ CH

3

OH

k

O

OCH

3

+   OH

-

C

O

-

OCH

3

+ CH

3

OH

OH

wolno

szybko

C

O

-

O

3.  Wyznaczyd  stałą  szybkości  reakcji  korzystając  z  danych  pomiarowych  i  metodą  graficzną.  W 

przypadku, gdy równanie prostej wyznaczono w oparciu o metodę najmniejszych kwadratów 

do obliczeo stałej szybkości reakcji korzysta się z danych teoretycznych. 

4.  Obliczyd okres połowicznej przemiany. 

 

t [min] 

λ

t

 [mS] 

λ

- λ

t

 

ln(λ

- λ

t

10 

12 

14 

16 

18 

20 

60 

λ

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

λ

 

 

 

 

Zadanie 2 – zasadowa hydroliza benzoesanu metylu 

Zasadowa  hydroliza  estrów  jest  reakcją  nieodwracalną.  W  przypadku  benzoesanu  metylu  reakcję 

można przedstawid poniższym równaniem. 

 

 

 

 

 

 

Najpowolniejszym etapem warunkującym szybkośd reakcji jest atak jonów OH

-

 na cząsteczkę estru: 

 

 

 

 

 

background image

Politechnika Gdaoska, międzywydziałowy kierunek „INŻYNIERIA BIOMEDYCZNA” 

10

 

CHEMIA, Anna Skwierawska 

Z tego wynika, że szybkośd hydrolizy estru jest proporcjonalna do iloczynu stężeo estru i jonów OH

-

, a 

więc jest to przykład reakcji drugorzędowej. 

 

Aparatura i odczynniki 

Kolba stożkowa 125 mL, kolby stożkowe 50 mL, cylinder miarowy 100 mL, cylinder miarowy 50 mL, 

pipeta 2 mL, pipety miarowe 5 mL, biureta,  

Mieszadło magnetyczne, dipol magnetyczny, termometr, łaźnia lodowa 

Benzoesan metylu, aceton, 0,1 M HCl, 0,25 M NaOH, 0,01 M NaOH, fenoloftaleina 

  

Do kolby stożkowej o pojemności 125 mL odmierzyd za pomocą cylindra miarowego  60 mL acetonu i 

za pomocą pipety 1,25 ml benzoesanu metylu (0,01 mol). Do kolby włożyd dipol magnetyczny. Kolbę 

umieścid  w  łaźni  lodowej  na  płytce  mieszadła  magnetycznego.  Włączyd  mieszanie.  Jednocześnie  do 

kolby  stożkowej  o  pojemności  50  mL  odmierzyd  za  pomocą  cylindra  miarowego  40  mL  0,25  M 

roztworu  NaOH  (0,01  mol).  Roztwory  oziębid  do  temperatury  5  °C.  Reakcję  rozpoczynany  przez 

dodanie  roztworu  wodorotlenku  do  estru.  Notujemy  czas  rozpoczęcia  reakcji  z  dokładnością  do  1 

sekundy.  W  określonych  odstępach  czasu  (patrz  tabela)  pobieramy  pipetą  miarową  5  mL  próbki  i 

przenosimy  natychmiast  do  oddzielnych,  oznaczonych  kolb,  zawierających  po  5  mL  dokładnie 

odmierzonego  pipetą  miarową  0,1  M  HCl.  Do  każdej  z  kolb  dodajemy  3  krople  fenoloftaleiny  i 

miareczkujemy  0,01  M  NaOH  aż  do  trwałego  różowego  zabarwienia  wskaźnika.  Zapisujemy  czas 

reakcji każdej próbki (czas pobrania próbki) i objętośd zużytego 0,01 M roztworu NaOH. 

 

1.  Uzupełnid tabelę pomiarów 

2.  Sporządzid wykres zależności 1/c

estru 

w funkcji czasu. W przypadku, gdy punkty pomiarowe nie 

wyznaczają  prostej,  należy  wyznaczyd  równanie  prostej  korzystając  z  metody  najmniejszych 

kwadratów. 

3.  Wyznaczyd  stałą  szybkości  reakcji  korzystając  z  danych  pomiarowych  i  metodą  graficzną.  W 

przypadku, gdy równanie prostej wyznaczono w oparciu o metodę najmniejszych kwadratów 

do obliczeo stałej szybkości reakcji korzysta się z danych teoretycznych. 

 

 

 

 

 

 

background image

Politechnika Gdaoska, międzywydziałowy kierunek „INŻYNIERIA BIOMEDYCZNA” 

11

 

CHEMIA, Anna Skwierawska 

Numer 

próbki 

Czas 

pobrania 

[s] 

Objętośd 

0,01 M 

NaOH 

[mL] 

Liczba mmoli 

kwasu 

benzoesowego

Liczba 

mmoli 

benzoesanu 

metylu

Stężenie 

benzoesanu 

metylu 

[mol/L] 

 

1/c

estru

 

 

60 

120 

300 

600 

1200 

1800 

 

 

 

 

 

 

 

(*) po przereagowaniu x% estru w roztworze znajduje się 0,01(x/100) moli jonów benzoesanowych i 

pozostaje  0,01[1-(x/100)+  moli  estru  i  jonów  OH

-

.    Po  dodaniu  10  mL  0,1  M  HCl  powstaje  0,01[1-

(x/100)] moli wody plus 0,01(x/100) moli kwasu benzoesowego.