background image

Iranian Journal of Clinical Infectious Disease 2006;1(3):149-155 

Iranian Journal of Clinical Infectious Diseases 
2006;1(3):149-155 
©2006 IDTMRC, Infectious Diseases and Tropical Medicine Research Center

   

 
 
 

Epidemiology of Shigella species isolated from diarrheal children 

and drawing their antibiotic resistance pattern 

 

 

Rasoul Yousefi Mashouf 

1

, Ali Akbar Moshtaghi

2

, Seyyed Hamid Hashemi

 3

  

Department of Microbiology, Hamadan University of Medical Sciences, Hamadan, Iran. 

 

Department of Pediatric, Hamadan University of Medical Sciences, Hamadan, Iran.  

3

 Department of Infection Diseases and Tropical Medicine, Hamadan University of Medical Sciences, Hamadan, Iran.

  

 
ABSTRACT 

Background: Shigellosis accounts for majority of cases of bacterial diarrhea in infants in developing countries. The 
present study was conducted to determine the distribution and pattern of antimicrobial resistance of Shigella species 
among children 0-14 years of age with acute diarrhea in Hamadan.  
Materials and methods: The study included all acute diarrhea patients who admitted in the pediatric department from 
January 2001 to December 2004. Antibiogram test was performed by gel-diffusion method and ten commonly used 
antibiotics were applied. 
Results: Of 1686 stool samples, 166 (9.8%) were positive for Shigella species. Shigella flexneri was the predominant 
serogroup (40.3%) followed by S. dysentriae (33.7%), S. boydii (15.1%) and S. sonnei (10.8%). Of Shigella isolates, 
91% were resistant to one or more antimicrobial agent(s), and 88% were multi-drug resistant. Most strains were resistant 
to chloramphenicol (90%), ampicillin (89%), co-trimoxazole (84%), tetracycline (83%) and nalidixic acid (51%). 
Resistance to amoxicillin-clavulanic acid (co-amoxiclav), ceftriaxone, amikacin, nitrofurantoin and ciprofloxacin was 
observed in 34.9%, 23.4%, 6.6%, 3.6% and 1.8% of the isolates, respectively. Emerging resistance against nalidixic acid 
(42.3%) was observed. 
Conclusion
: Our experiences suggest that Shigella  species could be an important etiological agent of diarrhea in this 
area, while the drugs of choice for the treatment of Shigella infection should be ciprofloxacin and nitrofurantoin. 
Amikacin was the third drug of choice. 

KeywordsDiarrhea, Shigella, Antibiotic, Resistance, Children

(Iranian Journal of Clinical Infectious Diseases 2006;1(3):149-155).

 

 
 

INTRODUCTION

  

1

 Diarrheal diseases remain a major cause of 

morbidity and mortality in all age groups, 
especially in developing countries including Iran 
(1,2). In our country, diarrhea is estimated for the 

                                                 

Received: 12 March 2006   Accepted: 18 July  2006 
Reprint or Correspondence: Rasoul Yousefi, PhD. 

Department of Microbiology, Hamadan University of Medical 
Sciences, Hamadan, Iran.  
E-mail: yousefimash@yahoo.com

 

third leading cause of overall morbidity and the 
leading cause of infant mortality (3).  

Shigellosis occurs both in epidemic and 

endemic forms in children and remains a major 
public health problem in developing countries 
(4,5). In a study conducted from 1997 to 1999, 
Shigella (S.) flexneri  was found to be the most 
frequently isolated organism from diarrheal 
patients in a community setting in Jakarta (6).

 

ORIGINAL ARTICLE

background image

150  Epidemiology of Shigella in Hamadan  

Iranian Journal of Clinical Infectious Disease 2006;1(3):149-155 

Similarly, S. flexneri  was the most common 
organism isolated in four low socio-economic areas 
of Karachi between January 2002 and March 2003 
(7). The attack rate of shigellosis in India is 1-15% 
and bacillary dysentery is responsible for 
approximately 10% of deaths in children (2,8,9).   

In another study from Bangladesh (10), Shigella 

species were the most common isolated species 
from patients with acute diarrhea and S. flexneri 
(54 %) was the most frequently isolated one, 
followed by S. dysenteriae, S. boydii and S. sonnei. 
An investigation from Bahia, Brazil was also 
revealed that the shigellosis was the predominant 
cause of acute diarrhea, while S. sonnei (80.1%) 
was the most common isolated organism followed 
by S. flexneri (19.9%) (5). Shigellosis is also an 
important cause of infectious diarrhea in Iran (3), 
mostly community-acquired, caused mainly by S. 
flexneri and S. dysenteriae.  

Over the past decades, Shigella species have 

become progressively resistant to most of the 
widely used and inexpensive antibiotics (11-14). 
Resistance has emerged even to newer, more potent 
antimicrobial agents. Moreover, a change in the 
incidence of Shigella subgroups from time to time 
makes it difficult to formulate a drug of choice for 
Shigellosis (2,15,16). Prior to this study, the 
antibiotic resistance pattern of Shigella isolates has 
not been previously determined in this region. 
Therefore, this study was carried out to identify 
and to establish the antimicrobial resistance pattern 
of the most important Shigella  serotypes involved 
in the epidemiology of acute diarrhea in children 
who admitted in the pediatric department of 
hospitals in Hamadan.  

 

PATIENTS and METHODS 

A prospective study was conducted on children 

with acute diarrhea and dysentery between 0 and 
14 years of age from January 2001 to December 
2004 who were admitted in the pediatric 
departments of two hospitals (Ghaem and Ekbatan) 

in Hamadan. A total of 1686 stool samples were 
examined for Shigella species, then isolates were 
serotyped and their antibiotics susceptibilities were 
determined. Only one Shigella  isolate per patient 
per diarrheal episode was included in the analysis. 
No outbreak has been detected during the study 
period.  

Fecal samples were collected in Cary-Blair 

transport medium and transferred immediately to 
the laboratories of hospitals. Cultivation and 
isolation of organisms were performed according to 
the methods outlined in the Bailey & Scott’s 
Diagnostic Microbiology (17).

 

The samples were 

cultured into GN broth and plated onto Salmonella-
Shigella (SS) agar and MacConkey agar (Merck, 
Germany). Plates were incubated at 37°C for 
selective isolation of Shigellae and were examined 
after 18-24h of incubation. Suspected colonies 
were inoculated into Triple sugar iron agar 
(Oxoid), Mannitol motility medium (Hi-media, 
India), Urea medium (Hi-media), and peptone 
water (1% Bactopepton, Difco; pH 7.2) for 
biochemical identification of Shigellae.  

Shigella serotypes were identified using 

standard commercially available polyvalent and 
monovalent antisera (Wellcome Research 
Laboratories, Beckenham, UK). Single colonies of 
isolates were tested serologically by slide and tube 
agglutination with specific antisera against Shigella 
sonnei, Shigella flexneri, Shigella boydii and 
Shigella dysenteriae, according to the standard 
protocols (17).  

In order to draw the susceptibility patterns of 

isolates, they were tested by disk

 

diffusion method 

using guidelines established by the National

 

Committee for Clinical Laboratory Standards 
(NCCLS) (18). A total of 10 selected antibiotic 
disks (Mast Group LTD, UK) including 
chloramphenicol (CHL, 30µg), co-amoxiclav 
(AMC, 20µg), amikacin (AMK, 30µg), ampicillin 
(AMP10µg), ceftriaxone (CRO, 30µg), 
ciprofloxacin (CIP, 5µg), co-trimoxazole (TMP-
SXZ, 25µg), nitrofurantoin (NIT, 300µg), nalidixic 

background image

Yousefi MR. et al  151 

Iranian Journal of Clinical Infectious Disease 2006;1(3):149-155 

acid (NAL, 30µg) and tetracycline (TET, 30µg) 
were applied during the test. The

 

organisms used 

for quality control were Escherichia coli (ATCC 
25922; American Type Culture Collection) and 
Staphylococcus aureus

 

(ATCC 25923).  

The initial data including patient's age and sex 

as well as types of microorganisms isolated from 
stool cultures and their antimicrobial resistance 
patterns were recorded in a special questionnaire. 
Finally, data analysis was achieved by SPSS 
software package (version 13.0, SPSS Inc., USA) 
and discrete variables were compared by the χ

test.  

 

RESULTS 

During the study period, of 1686 stool samples, 

166 (9.8%) were positive for Shigella species. S. 
flexneri (40.3%) was the predominant serogroup 
followed by S. dysenteriae (33.7%), S. boydii 
(15.1%) and S. sonnei (10.8%). A number of 
serotypes were isolated in each serogroup, 7 
serotypes in S. flexneri, 5 in S. dysenteriae, 4 in S. 
boydii, and Phase 1 & 2 in S. sonnei. The most 
common S. flexneri serotypes were 2a (31.3%), 1b 
(29.8%), and 2b (10.4%). The least common S. 
flexneri serotype was 1a (4.4%). The most 
common S. dysenteriae serotypes were type 1 
(41.1%), type 2 (21.4%), and type 4 (16.1%), while 
type 7 (5.3%) was the least common. Table 1 
represents the serotype distribution of shigella 
species (each isolate representing a case). Most of 
shigella species were isolated from patients during 
the first two years of study, 2001 and 2002 (25.9% 
and 30.7%), respectively.  

Of 166 patients, 89(53.6%) were male, and 

15(9.1%) were younger than two years of age, 
while 41(24.7%), 54(35.5%) and 51(30.7%) aged 
3-6, 7-10, and 11-14 years, respectively. Table 2 
presents the distribution frequencies of the age 
groups of patients with Shigella. As shown in this 
table, S. flexneri and  S. dysenteriae were more 
frequently observed in 7-10 and 11-14 year-old 
group, respectively. 

Table 1. Distribution of Shigella species and their 

serotypes in Hamadan, 2001-2004 

Studied years 

 

2001 2002 2003 2004 

Shigella 

 isolates 

43(25.9) 51(30.7) 37(22.2) 35(21.1)

S. flexneri 

18(26.8) 25(37.3) 13(19.4) 11(16.4)

Type 1a 

Type 1b 

Type 2a 

Type 2b 

Type 3a 

Type 4a 

Type 5 

S.dysenteriae 

15(26.7) 13(23.2) 15(26.7) 13(23.2)

Type 1 

Type 2 

Type 4 

Type 5 

Type 7 

S. boydii 

7(28.0) 6(24.0) 5(20.0) 7(28.0) 

Type 3 

Type 5 

Type 9 

Type 12 

S. sonnei 

3(16.6) 7(38.8) 4(22.2) 4(22.2) 

Phase 1 

Phase 2 

 

Table 2. Distribution frequencies of the age groups of 

patients according to Shigella species 

Age group 

(yrs) 

S.flexneri S. dysenteria  S. boydii  S. sonnei

Total 

0-2 6(3.6) 

8(4.8) 

1(0.06) 15(9.1) 

3-6 19(11.4)

15(9.0) 

4(2.4) 

3(1.8) 

41(24.7)

7-10 26(15.6)

18(10.8) 

7(4.2) 

8(4.8) 

59(35.5)

11-14 16(9.6) 

23(13.8) 

6(3.6) 

6(3.6) 

51(30.7)

Total 67(40.3)

56(33.7) 

25(15.1) 

18(10.8) 166(100)

   
Of the Shigella isolates, 82.5% were resistant to 

one or more of all tested antibiotics in this study (S. 
dysenteriae 100%, S. flexneri 90%, S. sonnei 80% 
and S. boydii 60%). Most strains were resistant to 
chloramphenicol (90%), ampicillin (89%), co-
trimoxazole (84%), tetracycline (83%) and 
nalidixic acid (51%). Resistance to co-amoxiclav, 

background image

152  Epidemiology of Shigella in Hamadan  

Iranian Journal of Clinical Infectious Disease 2006;1(3):149-155 

ceftriaxone, amikacin, nitrofurantoin and 
ciprofloxacin was observed in 34.9%, 23.4%, 
6.6%, 3.6% and 1.8% of the isolates, respectively. 
Emerging resistance against nalidixic acid (42.3%) 
was observed. The antibiotics resistance 
distribution of Shigella isolates is shown in table 3. 
Shigella flexneri, S. dysenteriae and S. sonnei 
shared

 

very similar susceptibility profile for most 

of the tested antibiotics. The most frequent patterns 
of resistance were

 

exhibited towards 

chloramphenicol, ampicillin, co-trimoxazole,

 

tetracycline and co-amoxiclav (Table 3). S. boydii 
showed slightly different susceptibility profile. 
Resistance to nalidixic acid and ceftriaxone were 
appeared to be different in four types of Shigella 
isolates. S. dysenteriae isolates were more resistant 
than isolates of S. flexneri, S. sonnei and S. boydii 
to nalidixic acid (85.5% versus 44.7%, 38.8% and 
0.0%, respectively, p<0.001).  S. dysenteriae 
isolates also were more resistant than other three 
types of Shigella isolates to ceftriaxone (41.1% 
versus 14.9%, 0.0% and 12.0%, p<0.001). 

Seventy eight percent of the Shigella isolates 

were multi-antibiotics resistant (resistance to at 
least two antibiotics). Different resistance patterns 
were defined in the four categories

 

of the Shigella 

isolates. S. dysenteriae showed the highest multi-
antibiotics resistant, while S. boydii showed the 
lowest. Twelve resistance patterns were observed 
in S. dysenteriae, while 10 R-patterns in S. flexneri, 
9 in S. sonnei and 7 in S. boydii. The most 
prevalent multi-antibiotic resistance

 

pattern was 

CHL

r

, AMP

r

, TMP-SXT

r

, TET

r

 in all types of 

Shigella isolates, namely,

 

37.6%, 32.6%, 28.2% 

and 19.4% for S. dysenteriae, S. flexneri, S. sonnei 
and S. boydii, respectively.

   

The CHL

r

, AMP

r

TMP-SXT

r

, TET

r

, NAL

r

, AMC

r

 pattern in S. 

flexneri strains and the CHL

r

, AMP

r

, TMP-SXT

r

TET

r

, NAL

r

, CRO

r

 pattern

 

in S. dysenteriae strains 

were the second most prevalent multi-antibiotic 
resistance

 

patterns with a prevalence of 18.4 and 

16.2% in each category,

 

respectively. Three S. 

dysenteriae strains were resistant to all tested 

antibiotics, however, 2 S. boydii strains were 
susceptible to all tested antibiotics. 

 

Table 3. Distribution frequencies of the antibiotic 

resistance of 166 isolated Shigella species 

Antibiotics 

S. 

flexneri

S. 

dysenteria 

S. 

boydii 

S. 

sonnei

Total 

Chloramphenicol(30)

61(91.1)

52(92.8) 21(84.0) 

17(94.4) 151(90.9)

Ampicillin (10)

*

 

63(94.0)

54(96.4) 17(68.0) 

15(83.3) 149(89.7)

Co-trimoxazole (25) 

59(88.1)

52(92.8) 15(60.0) 

14(77.7) 140(84.3)

Tetracycline (30) 

61(91.1)

50(89.2) 13(52.0) 

15(83.3) 139(83.7)

Nalidixic acid (30) 

3(44.7) 48(85.7)  0  7(38.8) 85(51.2)

Co-amoxiclav (20) 

20(29.8)

21(37.5) 10(40.0) 

7(38.8) 85(51.2)

Ceftriaxone (30) 

10(14.9)

23(41.1) 3(12.0)  0  36(21.6)

Amikacin (30) 

5(7.4) 4(7.1)  0 2(11.1)

11(6.6) 

Nitrofurantion (300) 

2(2.9) 4(7.1)  0  0  6(3.6) 

Ciprofloxacin (5) 

0 3(5.3) 0 0 

3(1.8) 

*

 µg/disk 

 

DISCUSSION 

In present study,  S. flexneri was the 

predominant isolated shigella species, followed by 
S.

 

dysenteriae, S. boydii and S. sonnei. This is 

consistent with other reports from other part of Iran 
(3). However, temporal and spatial variations in the 
isolation of Shigella species have been reported in 
various parts of world from time to time. Before 
1984, S. flexneri was the predominant species 
isolated sporadically from 3% of diarrhea cases in 
Calcutta, India (19). During 1990-1992 S. 
dysenteriae type 1 was isolated more from this area 
(20), again during 2001 to 2004 S. flexneri was the 
most prevalent serogroup (8). In an 
epidemiological study of acute bacterial diarrhea in 
children during 2002-2003 in Bahia, Brazil, S. 
sonnei was the most frequent pathogen (5). From 
1999 to 2000 S. flexneri and S. dysenteriae were 
the most common shigella isolates in Lagos, 
Nigeria (21). From 1987 to 2002 S. sonnei was 
predominant species in central Turkey (22). In our 
study, S. sonnei was the least frequent isolates 
among other Shigella species that was in agreement 
with findings of Lee et al from Malaysia (23).   

background image

Yousefi MR. et al  153 

Iranian Journal of Clinical Infectious Disease 2006;1(3):149-155 

In our study, S. flexneri types 1b, 2a and 2b 

were the most common serotypes isolated from 
children with bacillary dysentery, respectively 
(Table 1). These findings are differed from other 
reports. In China (14) the most common serotypes 
of  S. flexneri were 1a, X, and 2a and in Thialand 
(24)

 

the three most frequently encountered 

serotypes were 2a, 1b and 3b, respectively. Among 
S. dysenteriae  isolates that were serotyped in 
current study, types 1 and 2 were more prevalent. 
This finding was supported with some other studies 
(2,25,26). In the present study, S. flexneri  and S. 
sonnei were mostly found in children aged 7-10 
years, while S. boydii was found in children <2 
years old, this was not supported with other reports 
(2,5). However, S.

 

dysenteriae was mostly isolated 

in children aged 11-14 years old. 

Our study also documents the trend of multi-

resistant Shigella species associated

 

with bacillary 

dysentery in Hamadan over a four-year period.

 

Multiple antibiotic resistances were observed 
among the strains of Shigella  isolates and more 
than four commonly used antibiotics were 
ineffective against Shigellae isolates in this study. 
S. flexneri showed

 

a high degree of resistance to 

most of the commonly used antibiotics,

 

such as 

chloramphenicol, ampicillin, co-trimoxazole, and 
tetracycline (table 3). This finding is in agreement 
with other reports from

 

developing countries such 

as India (8,9), Bangladesh (10),Brazil (5),

 

Chile 

(13), China (14), Nigeria (21) and Thailand (24).  
However, in our experience S. flexneri also showed 
resistance to nalidixic acid (44.7%) and co-
amoxiclav (29.8%). These results are slightly 
differed from other reports (3,13,27). In developing 
countries and low socio-economic conditions 
including Iran, S. flexneri is still the predominant 
serotype (3,10,21,25). 

 

Evaluating the trends in the resistance patterns 

of Shigella species demonstrated that S.

 

dysenteriae 

is currently significantly more resistant than the 
other Shigella  species in Hamadan, especially to 
the commonly used antimicrobial agents. This 

finding is of utmost importance since S.

 

dysenteriae 

is, at present, the second predominant species in 
this region. In our survey,  S.

 

dysenteriae showed

 

the highest rate of resistance to most of the tested 
antibiotics including ampicillin, co-trimoxazole, 
chloramphenicol, tetracycline, nalidixic acid, co-
amoxiclav and ceftriaxone (table 3). Resistance 
was emerged even to more potent antimicrobial 
agents such as ciprofloxacin, nalidixic acid, co-
amoxiclav and nitrofurantoin. 

Resistance to nalidixic acid (85.7%), 

ceftriaxone (41.1%) and co-amoxiclav (37.5%) was 
not compatible with studies of some other countries 
such as Ethiopia (27), Israel (28),

 

Thailand (24),

 

Turkey (22), and Chile (13).  

S. boydii and S. sonnei also showed

 

a high level 

of resistance to chloramphenicol, ampicillin, co-
trimoxazole, and tetracycline, but most of them 
were susceptible to co-amoxiclav and ceftriaxone. 
In children with severe shigellosis, especially in 
those who are hospitalized, parenteral ceftriaxone 
is effective and usually recommended. In our 
study, all shigella isolates, except S.

 

dysenteriae, 

were sensitive to ceftriaxone. All isolates of S. 
boydii were susceptible to amikacin, ciprofloxacin, 
nitrofurantoin and nalidixic acid. Increasing 
resistance of Shigella strains to nalidixic acid has 
been emerged over the past few decades in some 
part of the worlds, especially in developing country 
(14,21,25,26). This may be

 

due to inappropriate use 

of this drug. 

In our study, all shigella isolates, except S. 

boydii, were resistant to nalidixic acid. In spite of 
the worldwide spread of resistant strains, the use of 
nalidixic acid is still recommended by the World 
Health Organization guidelines for the 
management of acute bloody diarrhea in children 
(2).  

Although resistance to ciprofloxacin has been 

rarely reported, nearly all Shigella isolates (except 
a few strains of S.

 

dysenteriae)  remained 

susceptible to this agent. Ciprofloxacin is often 
recommended as empirical therapy in areas with 

background image

154  Epidemiology of Shigella in Hamadan  

Iranian Journal of Clinical Infectious Disease 2006;1(3):149-155 

high resistance to Shigella. It is, however, not 
approved for children because of the potential risk 
of damage to growing cartilage (29). 

In conclusion, our results revealed that multi-

resistant strains of Shigella (in particular S.

 

dysenteriae and S.

 

flexneri) are present in Hamadan 

and emphasize the importance of maintaining 
surveillance of these strains in order to assess local 
susceptibility patterns and empiric therapy. Most 
strains of Shigella species in this study were found 
to be resistant to chloramphenicol, ampicillin, co-
trimoxazole, nalidixic acid and tetracycline, and 
sensitive to ciprofloxacin, amikacin and 
nitrofurantoin.  

 

 

REFERENCES  

1.  Cleary TG. Shigella: In: Feigin RD, Chery JD, 
Demmier GJ, Kapian SL, editors, Textbook of pediatric 
infectious diseases. 5

th

 edition. Philadelphia: Saunders, 

2004; p:541-53. 

2.  Clemens J, Kotloff KL, Kay B. Generic protocol to 
estimate the burden of Shigella diarrhea and dysenteric 
mortality. Geneva: World Health Organization; 1999. 
WHO document WHO/V&B/99.26:1-11. 

3.  MoezArdalan K, Zali MR, Dallal MM, et al. 
Prevalence and pattern of antimicrobial resistance of 
Shigella species among patients with acute diarrhoea in 
Karaj, Tehran, Iran. J Health Popul Nutr 2003;21(2):96-
102. 

4.  World Health Organization. Diarrheal disease due 
to Shigella disease. In: Vaccines, immunization and 
biologicals. Geneva: World Health Organization, 
1998:1-5. 

5.  Diniz-Santos DR, Santana JS, Barretto JR, et al. 
Epidemiological and microbiological aspects of acute 
bacterial diarrhea in children from Salvador, Bahia, 
Brazil. Braz J Infect Dis 2005;9(1):77-83.  

6.  Oyofo BA, Subekti D, Tjaniadi P, et al. 
Enteropathogens associated with acute diarrhea in 
community and hospital patients in Jakarta, Indonesia. 
FEMS Immunol Med Microbiol 2002;34:139-46. 

7.  Zafar A, Sabir N, Bhutta ZA. Frequency of 
isolation of shigella serogroups/serotypes and their 
antimicrobial susceptibility pattern in children from 
slum areas in Karachi. J Pak Med Assoc 
2005;55(5):184-8. 

8.  Niyogi SK, Mitra U, Dutta P. Changing patterns of 
serotypes and antimicrobial susceptibilities of Shigella 
species isolated from children in Calcutta, India. Jpn J 
Infect Dis 2001;54:121-22.  

9.  Niyogi SK, Pazhani GP. Multiresistant Shigella 
species isolated from childhood diarrhea cases in 
Kolkata, India. Jpn J Infect Dis 2003;56:33-34. 

10.  Khan AI, Huq S, Malek MA, et al. Shigella 
serotypes among hospitalized patients in urban 
Bangladesh and their antimicrobial resistance. 
Epidemiol Infect 2004;132(4):773-7. 

11.  Battacharya SK, Sarkar K, Nair GB, et al. Multi-
drug resistant Shigella dysenteriae type 1 in South Asia. 
Lancet Infect Dis 2003;3(12):755. 

12.  Tjaniadi P, Lesmana M, Subekti D, et al. 
Antimicrobial resistance of bacterial pathogens 
associated with diarrheal patients in Indonesia. Am J 
Trop Med Hyg 2003;68:666-70 

13.  Fulla N, Prado V, Duran C, et al. Surveillance for 
antimicrobial resistance profiles among Shigella species 
isolated from a semirural community in the northern 
administrative area of Santiago, Chile. Am J Trop Med 
Hyg 2005;72(6):851-4. 

14.  Wang XY, Du L, Von Seidlein L, et al. Occurrence 
of shigellosis in the young and elderly in rural China: 
results of a 12-month population-based surveillance 
study. 1: Am J Trop Med Hyg 2005;73(2):416-22. 

15.  Novokshonova IV, Zelenskaia OI, Gol'dberg IE, et 
al. Significance of determination of Shigella antibiotic 
resistance in bacteriological diagnosis of dysentery. 
Antibiot Khimioter 2005;50(2-3):30-2. 

16.  Chompook P, Samosornsuk S, von Seidlein L, et al. 
Estimating the burden of shigellosis in Thailand: 36-
month population-based surveillance study. Bull World 
Health Organ 2005;83(10):739-46. 

17.  Forbes BA, Sahm DF, Weissfeld AS, editors. 
Bailey & Scott’s diagnostic microbiology. 11

th

 edition.  

Philadelphia: Mosby Co, 2002;p:368-75 and 204-13.  

18.  National Committee for Clinical Laboratory 
Standards (2000): Performance standard for 
antimicrobial disk susceptibility tests: approved 
standards. M2-A7. NCCL, Villanova, PA, USA.    

19.  Sen D, Saha MR, Nair GB, et al. Etiological 
spectrum of acute diarrhea in hospitalized patients. 
Indian J Med Res 1985;82:286-91. 

20.  Bhattachrya MK, Bhattacharya SK, Paul M, et al. 
Shigellosis in Calcutta during 1990-92 antibiotic 
susceptibility pattern and clinical features. J Diarr Dis 
Res 1994;12:121-24. 

background image

Yousefi MR. et al  155 

Iranian Journal of Clinical Infectious Disease 2006;1(3):149-155 

21.  Iwalokun BA, Gbenle GO, Smith SI, et al. 
Epidemiology of shigellosis in Lagos, Nigeria: trends in 
antimicrobial resistance. J Health Popul Nutr 
2001;19(3):183-90. 

22.  Ozmert EN, Gokturk B, Yurdakok K, et al. Shigella 
antibiotic resistance in central Turkey: comparison of 
the years 1987-1994 and 1995-2002. J Pediatr 
Gastroenterol Nutr 2005;40(3):359-62. 

23.  Lee WS, Puthucheary SD. Species distribution and 
antibiotic resistance of shigella isolates in an urban 
community in Malaysia. Med J Malaysia 
2003;58(2):262-7. 

24.  Chompook P, Samosornsuk S, von Seidlein L, et al. 
Estimating the burden of shigellosis in Thailand: 36-
month population-based surveillance study. Bull World 
Health Organ 2005;83(10):739-46. 

25.  Pazhani GP, Ramamurthy T, Mitra U, et al. Species 
diversity and antimicrobial resistance of Shigella spp. 
isolated between 2001 and 2004 from hospitalized 
children with diarrhea in Kolkata (Calcutta), India. 
Epidemiol Infect 2005;133(6):1089-95. 

26.  Ahmed K, Shakoori FR, Shakoori AR. Etiology of 
shigellosis in northern Pakistan. J Health Popul Nutr 
2003;21(1):32-9. 

27.  Mache A. Antibiotic resistance and sero-groups of 
shigella among pediatric out-patients in southwest 
Ethiopia. East Afr Med J 2001;78(6):296-9. 

28.  Ashkenazi1 S, Levy I, Kazaronovski V, Samra Z. 
Growing antimicrobial resistance of Shigella isolates. J 
Antimicrobial Chemother 2003;51:427–29. 

29.  Bennish ML, Salam MA. Rethinking options for 
the treatment of shigellosis. J Antimicrobial Chemother 
1992;30:243–7.