background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 

 
 

 

 

 

 

MINISTERSTWO EDUKACJI 

NARODOWEJ 

 

 
 
 
 
Alicja Królak 

 
 
 

 

Wykonywanie instrumentalnej analizy żywności 
321[09].Z4.03 

 

 

 
 
 

Poradnik dla ucznia 

 
 
 
 
 
 

 
 
 
 
 
 
 
 

Wydawca 

Instytut Technologii Eksploatacji – Państwowy Instytut Badawczy 
Radom 2006 
 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 1 

Recenzenci: 
mgr inż. Teresa Kubiak  
mgr inż. Aleksandra Ptak  
 
 
 
 
 
Opracowanie redakcyjne: 
 
 
 
Konsultacja: 
mgr inż. Maria Majewska 
 
Korekta: 

 
 

 
Poradnik  stanowi  obudowę  dydaktyczną  programu  jednostki  modułowej  321[09].Z4.03 
„Wykonywanie  instrumentalnej  analizy  żywności”  zawartego  w  modułowym  programie 
nauczania dla zawodu technik technologii żywności 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

Wydawca 

Instytut Technologii Eksploatacji – Państwowy Instytut Badawczy, Radom 2006

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 2 

 

SPIS TREŚCI

 

 

1.  Wprowadzenie 

2.  Wymagania wstępne 

3.  Cele kształcenia 

4.  Materiał nauczania 

4.1. Areometryczny, piknometryczny hydrostatyczny i pomiar gęstości 

4.1.1. Materiał nauczania 

4.1.2. Pytania sprawdzające 

10 

4.1.3. Ćwiczenia 

11 

4.1.4. Sprawdzian postępów 

14 

4.2. Pomiary refraktometryczne, polarymetryczne i kolorymetryczne 

15 

4.2.1. Materiał nauczania 

15 

4.2.2. Pytania sprawdzające 

25 

4.2.3. Ćwiczenia 

25 

4.2.4. Sprawdzian postępów 

28 

4.3. Oznaczenia potencjometryczne i chromatograficzne 

29 

4.3.1. Materiał nauczania 

29 

4.3.2. Pytania sprawdzające 

34 

4.3.3. Ćwiczenia 

34 

4.3.4. Sprawdzian postępów 

38 

5. Sprawdzian osiągnięć 

39 

6. Literatura 

44 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 3 

1. WPROWADZENIE

 

 

Poradnik  będzie  Ci  pomocny  w  przyswajaniu  wiedzy  dotyczącej  stosowania  różnych 

metod  oznaczania  zawartości  składników  w  produkowanej  żywności.  W  poradniku 
zamieszczono: 

 

wymagania wstępne, w których określono co powinieneś umieć przystępując do realizacji 
tej jednostki modułowej, 

 

cele  kształcenia,  które  określają  umiejętności  jakie  powinieneś  opanować  w  wyniku 
procesu kształcenia, 

 

materiał nauczania, który pomoże  Ci samodzielne przygotować się do wykonania ćwiczeń 
i  zaliczenia  sprawdzianów.  Wykorzystaj  do  poszerzenia  wiedzy  wskazaną  literaturę  oraz 
inne  źródła  informacji.  Obejmuje  on  również  ćwiczenia  zawierające  polecenie,  sposób 
wykonania oraz wyposażenie stanowiska pracy. 

 

sprawdzian  postępów,  który  umożliwi  Ci  sprawdzenie  poziomu  wiedzy  po  wykonaniu 
ćwiczeń, 

 

wykaz literatury. 
Sprawdzian osiągnięć opracowany jest w formie testu zawierającego: 

 

instrukcję, 

 

zestaw zadań testowych, 

 

punktację zadań, 

 

kartę odpowiedzi. 

 
Bezpieczeństwo i higiena pracy 

 
Przebywając  w  laboratorium  analizy  żywności  musisz  przestrzegać  regulaminu  pracowni, 

przepisów  bezpieczeństwa  i  higieny  pracy  oraz  przepisów  przeciwpożarowych.  Przy 
wykonywaniu ćwiczeń zachowaj ostrożność podczas ogrzewania roztworów. Szyjkę kolby lub 
probówki  trzymaj  otworem  od  siebie.  Postępuj  ostrożnie  z  roztworami  kwasów  i  zasad 
szczególnie stężonych. Kwasy do pipety naciągaj za pomocą pompki a nie ustami. 

 

 
 

 
 
 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 4 

 

 

Schemat układu jednostek modułowych 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

321[09].04 

Analiza żywności w przetwórstwie spożywczym 

321[09].04.01 

Wykonywanie wagowej analizy żywności 

321[09].04.02 

Wykonywanie objętościowej analizy żywności 

321[09].04.05 

Wykonywanie towaroznawczych badań żywności 

321[09].04.03 

Wykonywanie 

instrumentalnej 

analizy żywności 

321[09].04.04 
Wykonywanie 

mikrobiologicznych 

badań żywności 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 5 

2. WYMAGANIA WSTĘPNE

 

 

Przystępując do realizacji programu jednostki modułowej powinieneś umieć: 

 

korzystać z różnych źródeł informacji, 

 

posługiwać się sprzętem laboratoryjnym i łączyć go w zestawy zgodnie z instrukcją, 

 

wskazywać  zagrożenia  związane  z  pracą  w  laboratorium  oraz  podczas  wykonywania 
ćwiczenia, 

 

przeliczać stężenia, 

 

korzystać z wag technicznych i analitycznych, 

 

interpretować wyniki badań laboratoryjnych, 

 

stosować metody Dobrej Praktyki Laboratoryjnej, 

 

korzystać z dostępnych programów komputerowych. 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 6 

3. CELE KSZTAŁCENIA

 

 

W wyniku realizacji programu jednostki modułowej powinieneś umieć: 

 

określić znaczenie analizy instrumentalnej w przetwórstwie spożywczym, 

 

rozróżnić i scharakteryzować analizy fizykochemiczne, 

 

określić budowę i zasadę działania aparatów stosowanych w analizie instrumentalnej, 

 

obsłużyć aparaty do analiz instrumentalnych żywności, 

 

przeprowadzić próby badawcze analiz instrumentalnych, 

 

obliczyć ilość badanego składnika w próbie laboratoryjnej, 

 

opracować wyniki badań laboratoryjnych z zastosowaniem programów komputerowych, 

 

zinterpretować wyniki badań, 

 

przeprowadzać  wybrane  analizy  instrumentalne  w  zakładach  przetwórstwa  spożywczego 
monitorujące procesy produkcyjne w celu otrzymania bezpiecznej żywności, 

 

zastosować zasady Dobrej Praktyki Laboratoryjnej, 

 

zastosować  przepisy  bhp,  wymagania  ergonomii,  zasady  ochrony  przeciwpożarowej 
i ochrony środowiska, 

 

skorzystać  z  dokumentacji  technicznej  i  technologicznej  przy  wykonywaniu  analiz 
instrumentalnych żywności. 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 7 

4. MATERIAŁ NAUCZANIA

 

 

4.1.  Areometryczny, piknometryczny , hydrostatyczny i pomiar 

gęstości 

 

4.1.1. Materiał nauczania

 

 

Gęstość ciała d jest to masa jego jednostki objętości, gęstość określa się zatem stosunkiem 

masy  ciała  m  do  jego  objętości  v.  Rozróżnia  się  dwa  rodzaje  gęstości  ciał:  bezwzględną  i 
względną. Gęstość bezwzględna ciała określana jest więc wzorem: 

3

dm

g

V

m

d

=

 

Gęstość  względna  jest  ilorazem  gęstości  bezwzględnej  danego  ciała  i  gęstości 

bezwzględnej innego ciała, uznawanego za wzorcowe, np. wody. 
Gęstość  ciała  jest  wielkością  stałą,  zależną  od  temperatury  i  ciśnienia.  W  praktyce  gęstość 
oznaczana  jest  przez  porównanie  gęstości ciała badanego z gęstością wody, którą przyjęto za 
wzorzec.  Gęstość  wody  w  temperaturze  4°C  jest  równa  1  g/cm

3

.  Oznaczenie  gęstości 

roztworu polega na porównaniu masy pewnej jego objętości w temperaturze t°C, z masą takiej 
samej objętości, w tej samej temperaturze: 

t

w

t
x

t

t

m

m

d

=

 

gdzie: m

x

t

 – masa danego ciała w temperaturze t°C, 

m

w

t

 – masa wody w temperaturze t°C, 

d

t

t

  –  gęstość  ciała  temperaturze  t°C,  w  stosunku  do  wody  w  tej  samej  temperaturze. 

Otrzymana  wartość  stanowi  gęstość  względną.  Gęstość  bezwzględną  można  obliczyć  ze 
wzoru: 

4

4

w

t
x

t

m

m

d

=

 

aby  przeliczyć gęstość względną na bezwzględną należy pomnożyć wartość liczbową gęstości 
względnej danego ciała przez gęstość wody w temperaturze t°C. 

Gęstość ciał w analizie produktów spożywczych wyznaczyć można trzema metodami: 

 

areometrycznie, 

 

hydrostatycznie, 

 

piknometrycznie. 
W analizie żywności do mierzenia gęstości cieczy używa się areometrów. Areometr (rys.1) 

składa  się  z rurki szklanej, w której trzpieniu (część wydłużona rurki) umieszczona jest skala. 
W  dolnej  części  rurki  wydętej  w  postaci  bańki  znajduje  się  balast,  którym  jest  śrut  lub  rtęć. 
Areometr  może  zawierać  także  termometr.  Ponieważ  gęstość  jest  zależna  od  temperatury 
areometry są kalibrowane w określonej temperaturze, w której należy dokonać pomiaru. Przy 
zastosowaniu  innej  temperatury  pomiaru  należy  wyniki  korygować.  Areometr  utrzymuje  się 
w cieczy w pozycji pionowej i zanurza się w niej tylko częściowo. Oznacza to, że jego ciężar 
powinien  być  mniejszy  od  ciężaru  wypartej  cieczy.  Wynika  z  tego,  że  im  gęstość  cieczy  jest 
większa tym zanurzenie areometru jest mniejsze i odwrotnie. Działanie areometru opiera się na 
prawie  Archimedesa.  Areometr  ma  stałą  masę,  a  objętość  wypieranej  cieczy  jest  zmienna 
i zależna  od  gęstości.  Dokładność  pomiaru  areometrem  jest  dość  duża,  może  wynosić  ± 
0,0005. Dokładność areometru wiąże się z błędem skalowania, błędem skali termometrycznej, 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 8 

błędem  popełnionym przy odczytywaniu wyniku. Błąd zależy od szerokości podziałki skali co 
wiąże się z budową areometru. W przybliżeniu można przyjąć, że ciężar areometru jest równy 
ciężarowi wypartej przez niego cieczy co można zapisać równaniem: 

 

(

)

d

s

h

V

m

+

=

 

gdzie: m – masa areometru, 
V – objętość bańki areometru, 
h – wysokość zanurzonej w cieczy części trzpienia, 
d – gęstość cieczy. 

Miernikiem czułości areometru jest jego zanurzenie 

d

h

Biorąc pod uwagę sposób skalowania areometry dzieli się na dwie grupy: 

  wyskalowane w wartościach liczbowych gęstości, 

  wyskalowane w stopniach umownych. 

Najczęściej stosowane są areometry: Gay-Lussaca, Oechsle, Baumé, Ballinga, Briexa, Trallesa  
i  laktodensymetr.  Laktodensymetr  służy  do  oznaczania  gęstości  mleka.  Zakres  skali 
laktodensymetru obejmuje 20÷40°Ld. Rozwodnienie mleka obniża w pewnym stopniu gęstość, 
a  odtłuszczenie  powoduje  pewne  podwyższenie  gęstości.  Temperatura  normalna  wskazań 
laktodensymetrów  wynosi  20°C.  W  przypadku  dokonywania  pomiarów  w  innych 
temperaturach  niż  20°C  koryguje  się  wskazania  laktodensymetrów  o  odpowiednie  poprawki, 
które  oblicza  się  przyjmując  0,2°  Ld  na  każdy  1°C  rozbieżności  temperatury  od  20°C  lub 
odczytuje z odpowiednich tabel. Przy pomiarach w temperaturach niższych niż 20°C poprawki 
dodaje się, przy wyższych odejmuje. 

Areometr  Gay-Lussaca  obejmuje  zakres  0,6÷1,9  i  wskazuje  bezpośrednio  gęstość.  Aby 

odczyt  był  dokładniejszy  zakres  ten  dzieli  się  na  0,6÷1,0  i  1,0÷1,9  lub  jeszcze  mniejsze. 
Temperatura skalowania wynosi 15°C, a w nowszych typach 20°C. 

Areometr  Baumé  (°Bé)  stosowany  jest  do  pomiaru  gęstości  syropu  ziemniaczanego, 

melasy,  zasady  sodowej,  kwasu  siarkowego  itp.  Stopnie  Baumé  odpowiadają  w  przybliżeniu 
procentowej  zawartości  NaCl  w  roztworach  wodnych  przy  czym  pomiędzy  wskazaniami 
areometru i gęstością istnieje zależność liczbowa: 

1000

1

15

15

Oe

d

°

+

=

 

Areometr  Ballinga  zwany  cukromierzem  wskazuje  w  roztworach  sacharozy  procentową 

zawartość  tego  cukru  w  temperaturze  normalnej  20°C.  W  przypadku  roztworów 
zawierających  inne  substancje  np.  białka,  kwasy,  barwniki  itp.  wskazania    areometru 
odpowiadają  zawartości  tzw.  ekstraktu.  Składniki  te  wpływają  na  podwyższenie  gęstości 
roztworów wodnych w stosunku do gęstości wody. 

Występujący  w  niektórych  produktach  alkohol  etylowy  obniża  gęstość.  W  takich 

przypadkach wskazania areometru Ballinga odpowiadają zawartości tzw. ekstraktu pozornego, 
w odróżnieniu od rzeczywistego, którego zawartość jest oznaczana po odparowaniu alkoholu. 
Zakres  skali  areometru  Ballinga  obejmuje  0÷70  °Blg.  Jeżeli  roztwór  zawiera  kilkanaście 
procent alkoholu i niewielkie ilości ekstraktu możliwe są stopnie ujemne. 

Cukromierze  są  stosowane  w  różnych  przemysłach  np.  spirytusowym,  gdzie  używa  się 

nazwy areometr Brixa. 

Areometr  Oschle  stosowany  jest  do  pomiaru  gęstości  moszczu  gronowego.  Określa  ile 

gramów  alkoholu  może  wytworzyć  się  w  1000  cm

3

  wina  po  całkowitym  odfermentowaniu 

zawartego  w  moszczu  cukru.  Temperatura  normalna  dla  wskazań  tego  areometru  wynosi 
15°C. 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 9 

Aerometr  Trallesa  wskazuje  procenty  objętościowe  alkoholu  etylowego  w  roztworach 

wodnych.  100  cm

3

  alkoholu  etylowego o x °Tr zawiera w 100 cm

3

 wodnego roztworu x cm

3

 

absolutnego alkoholu etylowego i nieco więcej niż (100 – x) cm

3

 wody. Temperatura normalna 

wskazań  termometru  Trallesa  wynosi  15°C.  Pomiar  jest  możliwy  tylko  w  czystych,  wodnych  
roztworach  alkoholu etylowego. Zakres skali termometru wynosi 0÷100°Tr. Pomiar powinien 
być  wykonywany  w  temperaturze  normalnej.  W przypadku innej wynik należy sprowadzić do 
temperatury normalnej za pomocą odpowiednich tabel. 
 

 

 

Rys. 1. Aerometr [2, s. 205] 

 
Pomiar hydrostatyczny 

Zasada  pomiaru  gęstości  metodą  hydrostatyczną  (rys.  2)  opiera  się  na  prawie 

Archimedesa.  Do  pomiarów  stosowana  jest waga Mohra-Westphala,  która pozwala oznaczyć 
gęstość z dokładnością do czterech miejsc po przecinku. 

 

 

Rys. 2. Waga  hydrostatyczna Mohra-Westphala . Koniki o zróżnicowanych masach: A, A

– po 5g;  

 B 2,–

 

0,5g; C – 0,005g i D – 0,005g [2, s. 221] 

 

Waga  jest  bezszalkowa,  składa  się  z  podstawy  i  przymocowanego  do  niej  statywu,  na 

którym  zawieszona  jest  belka.  Belka  ma  z  jednej  strony  przeciwwagę,  a  z  drugiej  jest 
wyskalowana,  od zera  w  miejscu zawieszenia do 10 w miejscu nakładania nurnika. Waga jest 
wyposażona w nurnik  o masie 15 g  i objętości 5 cm

oraz zestaw koników o masach: 5; 0,5; 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 10 

0,05  i  0,005  g.  Nurnik  zawieszony    w  pozycji  10  jest  równoważony  przeciwciężarem.  Jeżeli 
nurnik  zanurzony  w  badanym  roztworze  wyprze    5  cm

  roztworu,  dla  ponownego 

zrównoważenia  wagi  należy  na  wyskalowanej  belce  zawiesić  koniki.  Konik  5-gramowy 
zawieszony  w  pozycji  10  wskazuje  gęstość  1  g/cm

3

,  w  pozycji  9  wskazuje  0,9  g/cm

3

  itd. 

Koniki  o  masach  0,5;  0,05  i  0,005  g  wskazują  kolejne  miejsca  po  przecinku.  W  przypadku 
gęstości  roztworu 1,2834 g/cm

3

 położenie koników będzie następujące: 

5-gramowy  w  pozycji  10,  drugi  5-  gramowy  w  pozycji  2,  0,5-gramowy  w  pozycji  8,  0,005-
gramowy  w  pozycji  4.  Waga  skalowana  jest  w  temperaturze  15°C  i  wskazuje  gęstość  d

15

15 

Wagi skalowane są również na gęstość bezwzględną d

20

Pomiar piknometryczny 

Zasada oznaczania piknometrycznego opiera się na definicji gęstości 

3

dm

g

V

m

d

=

. Masa 

pewnej objętości roztworu badanego porównywana jest z masą tej samej objętości wody o tej 
samej  temperaturze.  W  użyciu  znajdują  się  piknometry:  Reischauera,  Geisslera  i próżniowy 
przedstawione na rysunku 3. 
 

 

Rys. 3. Typy piknometrów spotykanych w pracowniach analitycznych  a) Reischauera, b) Geisslera, c) 

próżniowy [2, s. 222] 

 

Wykonując  starannie  oznaczenie  można  uzyskać  dokładność  do  5  miejsca  dziesiętnego. 

Piknometr powinien być dostatecznie duży o pojemności 10 – 30cm

3

. Im objętość piknometru 

jest większa tym oznaczenie jest dokładniejsze. Dokładność zależy także od temperatury, która 
powinna być stała. Piknometr należy utrzymywać w stanie bardzo czystym. 
 

4.1.2. Pytania sprawdzające 

 

Odpowiadając na pytania, sprawdzisz, czy jesteś przygotowany do wykonania ćwiczeń. 

1.  Jakie definicje i wzory potrzebne są do obliczeń gęstości ciała? 
2.  Jakich przyrządów używa się do mierzenia gęstości cieczy w analizie żywności? 
3.  Jak zbudowany jest areometr? 
4.  Od czego zależy dokładność pomiaru areometrem? 
5.  Jakie znasz typy areometrów i jaka jest ich zasada działania? 
6.  Jakie prawo wykorzystane jest w metodzie pomiaru gęstości wagą hydrostatyczna? 
7.  Jak działa waga hydrostatyczna? 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 11 

8.  Jak wykonać pomiar gęstości za pomocą piknometru? 
 

4.1.3. Ćwiczenia

 

 
Ćwiczenie 1
 

Porównaj 

wskazania 

areometrów: 

Ballinga, 

Trallesa, 

Gay-Lussaca, 

Baumé 

i laktodensymetru.  

 
Sposób wykonania ćwiczenia 

 

Aby wykonać ćwiczenie powinieneś: 

1)  napełnić czyste i suche cylindry otrzymanymi od nauczyciela płynami, 
2)  wlewać po ściance cylindra, aby uniknąć ich spienienia, 
3)  opisać zachowanie się przyrządów, 
4)  zaproponować tabelę do zapisania obserwacji, 
5)  sporządzić zestawienie tabelaryczne wyników obserwacji. 
 

Wyposażenie stanowiska pracy: 

 

areometr Ballinga o zakresie skali 0÷15°Blg, 

 

areometr Trallesa o zakresie skali 5÷10°Tr, 

 

areometr Gay-Lussaca o zakresie gęstości 1,0÷1,2 g/dm

3

 

areometr Baumé o zakresie skali 0÷15°Bé, 

 

laktodensymetr o zakresie skali 20÷40°Ld. 

 

cylindry miarowe o pojemności 250 cm

3

 – 5 sztuk, 

 

roztwór alkoholu ok.10-procentowy, 

 

roztwór cukru ok. 10-procentowy, 

 

mleko, 

 

woda destylowana. 

 
Ćwiczenie 2 

Oznacz ilość sacharozy w próbce za pomocą areometru. 
 
Sposób wykonania ćwiczenia 

 

Aby wykonać ćwiczenie powinieneś: 

1)  przenieść ilościowo otrzymaną (ok.20g) próbkę sacharozy do zlewki i zadać 150cm

3

 wody 

destylowanej, 

2)  rozpuścić cukier mieszając zawartość bagietką, 
3)  przenieść  roztwór  ilościowo  za  pomocą  lejka i  bagietki  do  kolby  miarowej o pojemności 

250 cm

3

 popłukując zlewkę wodą destylowaną, 

4)  uzupełnić zawartość kolby wodą destylowaną do kreski, wymieszać, 
5)  przelać zawartość kolby miarowej do cylindra, unikając spienienia, 
6)  zanurzyć ostrożnie areometr Ballinga, 
7)  odczytać wskazania areometru według górnej linii menisku, 
8)  odczytać temperaturę, 
9)  sprowadzić  wskazania  areometru  Ballinga  do  temperatury  normalnej  (20°C),  a  następnie 

obliczyć masę próbki sacharozy otrzymanej do analizy. 

 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 12 

Wyposażenie stanowiska pracy: 

 

areometr Ballinga o zakresie skali 0÷15 Blg, 

 

termometr o zakresie temperatury 0÷150°C, 

 

zlewka o pojemności 250cm

3

 

lejek szklany, 

 

bagietka szklana, 

 

kolba miarowa o pojemności 250cm

3,

 

 

cylinder miarowy o pojemności 250cm

3

 

próbka sacharozy ok. 20g. 

 
Ćwiczenie 3 

Oznacz stężenie alkoholu za pomocą areometru Trallesa. 

 

Sposób wykonania ćwiczenia 
 
Aby wykonać ćwiczenie powinieneś: 

1)  popłukać  pipetę  o  pojemności  20cm

3

  niewielką  ilością  alkoholu  otrzymanej  próbki 

i odmierzyć nią 20cm

3

 badanej próbki, 

2)  przenieść próbkę do kolby miarowej o pojemności 200cm

3

3)  uzupełnić kolbę miarową wodą destylowaną do kreski i wymieszać, 
4)  przelać roztwór do cylindra, po uprzednim popłukaniu go niewielką ilością tego roztworu, 
5)  zanurzyć w roztworze areometr Trallesa, 
6)  odczytać  po  ustaleniu  się  stanu  równowagi  wskazania  areometru  według  dolnej  linii 

menisku, 

7)  odczytać temperaturę roztworu, 
8)  sprowadzić wskazania areometru do temperatury 15°C, 
9)  obliczyć stężenie alkoholu w próbce pierwotnej, 
10)  podać wynik w procentach objętościowych. 
 

Wyposażenie stanowiska pracy: 

 

areometr Trallesa o zakresie skali 5÷10°Tr, 

 

termometr o zakresie skali 0÷150°C, 

 

pipeta jednomiarowa o pojemności 20cm

3

 

kolba miarowa o pojemności 200cm

3

 , 

 

cylinder miarowy o pojemności 200cm

3

 

próbka alkoholu. 

 

Ćwiczenie 4 

Oznacz za pomocą piknometru gęstość syropu wysokosłodzonego. 

 

Sposób wykonania ćwiczenia 
 
Aby wykonać ćwiczenie powinieneś: 

1)  umieś  w  szafce  wagi  piknometr  na  30  minut  przed  ważeniem  w  celu  uzyskania 

temperatury otoczenia, 

2)  zważyć piknometr z dokładnością 0,001g i zanotować jego masę jako m, 
3)  napełnić  piknometr  wodą  destylowaną  przy  użyciu  specjalnego  lejka,  nadmiar  wody 

zebrać bibułą, 

4)  zanotować temperaturę wody w piknometrze, 
5)  zważyć piknometr z wodą i zanotować jego masę jako m

1

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 13 

6)  wylać wodę z piknometru i przepłukać go kilkakrotnie badaną cieczą, 
7)  napełnić  piknometr  badaną  cieczą  zwracając  uwagę,  by  badany  płyn  nie  zawierał 

pęcherzyków powietrza, 

8)  doprowadzić ciecz do temperatury badania wody, 
9)  zważyć i zanotować masę piknometru z badaną cieczą jako m

2

10)  obliczyć gęstość względną cieczy badanej ( w temperaturze badania) według wzoru: 
11)  umyć piknometr. 

 

m

m

m

m

d

t

t

=

1

2

 

Wyposażenie stanowiska pracy: 

– 

piknometr, 

– 

waga analityczna, 

– 

lejek, 

– 

termometr, 

– 

ciecz do badania. 

 

Ćwiczenie 5 

Oznacz gęstość płynu przy użyciu wagi hydrostatycznej. 

 

Sposób wykonania ćwiczenia 
 
Aby wykonać ćwiczenie powinieneś: 

1)  sprawdzić punkt zerowy wagi wodą destylowaną w temperaturze 15°C i osuszyć pływak, 
2)  wlać ostrożnie wymieszany płyn do cylindra, 
3)  zebrać pianę bibułą, 
4)  zanurzyć pływak w badanym płynie do takiej głębokości do jakiej był zanurzony w wodzie 
5)  odczytać gęstość z położenia koników na odpowiednich podziałkach ramienia wagi. 

 

Wyposażenie stanowiska pracy: 

– 

waga hydrostatyczna, 

– 

woda destylowana, 

– 

płyn do badania, 

– 

bibuła. 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 14 

4.1.4. Sprawdzian postępów 

 

Czy potrafisz: 

 

Tak 

 

Nie 

1)  zdefiniować pojęcia gęstości ciał? 

 

 

2)  dokonać pomiaru gęstości różnymi typami areometrów? 

 

 

3)  obliczyć stężenia roztworów na podstawie pomiarów gęstości/? 

 

 

4)  porównać wskazania areometrów różnych typów? 

 

 

5)  wyjaśnić działanie wagi hydrostatycznej? 

 

 

6)  określić  zasadę działania piknometru? 

 

 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 15 

4.2. Pomiary 

refraktometryczne 

,polarymetryczne 

i kolorymetryczne 

 

4.2.1. Materiał nauczania 
 

Pomiary refraktometryczne 
Metody  refraktometryczne  opierają  się  na  zjawisku  załamania  światła.  Promień  świetlny 

przechodząc  z  ośrodka  optycznie  rzadszego  (A)  do  ośrodka  optycznie  gęstszego  (B) zostaje 
częściowo odbity, a częściowo załamany (rys. 4) 

 

Rys. 4. Załamanie promienia świetlnego na granicy dwóch ośrodków 

α

 - kąt padania, 

β

 - kąt załamania, A – środowisko optycznie rzadsze, B – środowisko optycznie gęstsze 

[2, s.257] 

 

Stosunek sinusa kąta padania ( 

α

) do sinusa kata załamania (

β

) nosi nazwę współczynnika 

załamania  światła,  a  jego  wartość  zależy  od  rodzaju  padającego  światła  oraz  od  rodzaju 
substancji  i  jej  stężenia  w  badanym  środowisku.  Współczynnik  refrakcji  odnosi  się  do 
temperatury  20°C  oraz  jednobarwnego  światła  żółtego  które  odpowiada  linii  widma 
słonecznego, o długości fali 589,3 nm. 

 

β

α

sin

sin

20

=

D

n

 

 
W analizie żywności częściej dokonuje się pomiarów stężeń roztworów cukru niż wartości 

współczynników  refrakcji.  Wykorzystywany  jest  fakt,  że  z  wartościami  współczynników 
refrakcji są skorelowane stężenia roztworów cukru. Wartość współczynnika refrakcji dla wody 
wynosi  n

D

20

  =  1,333,  natomiast  dla  kryształu  cukru  sacharozy  n

D

20

  =  1,57.  Wynika  stąd,  że 

różnym  stężeniom  roztworów  wodnych  sacharozy  odpowiadają  wartości  liczbowe 
współczynników refrakcji mieszczące się w zakresie 1,333 ÷ 1,57. Wodny roztwór  cukru nie 
wykazuje  wartości  współczynnika  refrakcji,  która  byłaby  sumą  wartości  współczynników 
refrakcji  obydwu  składników  wody  i  cukru  lecz  ich  wypadkową.  Do  pomiarów  stężeń 
wodnych  roztworów  cukru  oraz  ich  współczynników  refrakcji  służy  refraktometr,  którego 
zasada działania oparta jest na kącie granicznym załamania. 

Refraktometr  Abbego  składa  się  z  dwóch  pryzmatów  szklanych  o  jednakowych 

współczynnikach  załamania,  między  którymi  umieszcza  się  cienką  warstewkę  badanej  cieczy. 
Światło  odbite  od  lusterka    przechodzi przez pierwszy pryzmat i ulega rozproszeniu na jego 
matowej  powierzchni.  Dalej  przechodzi  przez  warstewkę  badanej  cieczy  i  przenika  przez 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 16 

pryzmat  (jeżeli  pada  pod  kątem  mniejszym  niż  90°C)  oświetlając  jasną  część  pola  widzenia 
w lunetce.  Linia  rozgraniczająca  pole  widzenia  na  jasną  i  ciemną  część  odpowiada  kątowi 
granicznego  załamania.  Pomiar  sprowadza  się  do  sprawdzenia,  za  pomocą  dźwigni, 
skrzyżowania  nici  pajęczych  lub  niekiedy  trzech  ruchomych  kresek  na  granicy  pól  jasnego 
i ciemnego  oraz  odczytania  na  skali  wartości  współczynnika  refrakcji  oraz  stężenia  cukru 
w roztworze.  Refraktometry  wyposażone  są  w  pryzmaty  kompensacyjne,  dzięki  czemu 
odczyty  mogą  być  dokonywane  przy  użyciu  światła  dziennego  lub  sztucznego.  Odczyty  są 
prawidłowe  jeśli  odczyty  są  wykonywane  w  temperaturze  skalowania  przyrządu  (20°), 
w przeciwnym  wypadku  należy  je  korygować odpowiednimi  poprawkami.  Dla  skali cukrowej 
poprawka  wynosi  0,065  na  każdy  1°C,  a  dla  skali  współczynnika  refrakcji  0,00013  na  1°C 
temperatury różnej od 20°C. Przy odczytach w temperaturach wyższych od 20°C poprawki się 
dodaje, a przy niższych odejmuje. 

Refraktometr zanurzeniowy 
Składa  się  z  jednego  pryzmatu,  podlegającego  zanurzeniu  w  badanej  cieczy.  Zasada 

działania  jest  podobna  do  refraktometru  Abbego.  Skalowane  są  w  zakresie  –  5  do  105 
podziałek, a na noniuszu odczytuje się dziesiąte części. Odczytane wartości podziałek przelicza 
się  na  wartości  współczynników  refrakcji  lub  procentową  zawartość  składników  w badanych 
środowiskach. W takim przypadku należy korzystać z tabel przeliczeniowych. 

Metody polarymetryczne 
W  metodach  polarymetrycznych  wykorzystywana  jest  zdolność cukrowców  do  skręcania 

płaszczyzny  światła  spolaryzowanego.  Drgania  światła  spolaryzowanego  zachodzą  tylko 
w jednej płaszczyźnie (rys. 5) 
 

 

Rys. 5. Zasada rozchodzenia się światła [2,s.262] 

a) zwykłego, b) spolaryzowanego 1- płaszczyzna drgań, 2 – płaszczyzna polaryzacji 

 

Zdolność  skręcania  płaszczyzny  światła  spolaryzowanego  mają  związki  zawierające  tzw. 

atomy  asymetryczne.  Wielkością  charakterystyczną  dla  związków  optycznie  czynnych  jest 
skręcalność właściwa. Jest to kąt o jaki skręcona zostaje płaszczyzna światła spolaryzowanego 
przez  roztwór  substancji  optycznie  czynnej,  o  stężeniu  1  g  w  1cm

3

,  przy  grubości  warstwy 

1dm, w określonej temperaturze i przy określonej długości fali światła. Skręcalność odnosi się 
do linii D widma słonecznego, o długości fali 589,3 nm. Skręcenie może być w prawą stronę, 
czyli  dodatnie  i  w  lewą  czyli  ujemne.  Pomiary  polarymetryczne  wykonywane  są  
w urządzeniach zwanych polarymetrami. 
 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 17 

 

Rys. 6. Schemat budowy polarymetru [2, s.265] 

 

W  polarymetrach  wykorzystywane  jest jednobarwne  światło  monochromatyczne.  Światło 

podlega polaryzacji w pryzmacie Nicola. Pryzmat Nicola to specjalnie przycięty szpat islandzki 
sklejony    balsamem    kanadyjskim.  Promień  świetlny,  padając  na  pryzmat  Nicola  ulega 
rozszczepieniu  na  dwie  frakcje:  promień  zwyczajny  i  nadzwyczajny.  Pierwszy  ulega 
całkowitemu  wewnętrznemu  odbiciu,  a  drugi  przechodzi  przez  pryzmat  jako  promień 
spolaryzowany (rys. 7). 
 

 

Rys. 7.  Podział promienia świetlnego na zwyczajny (zw) i nadzwyczajny (nzw) w pryzmatach Nicola   

[2, s. 265] 

 
 

 

Rys. 8. Równoległe ustawienie nicoli [2, s. 266] 

 
 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 18 

 

 

Rys. 9. Nikole skrzyżowane [2, s. 266] 

 

Polarymetr  składa  się  z  dwóch  nicoli  (dwa  pryzmaty  Nicola).  Jeden  jest  nieruchomy, 

a drugi  obraca  się  wokół  własnej  osi  w  analizatorze.  W  zależności  od  kierunku  ustawienia 
płaszczyzn  dwóch  nikoli  względem  siebie  w  okularze  otrzymuje  się  ciemne  (rys.  9)  lub 
rozjaśnione pole widzenia (rys. 8). Skrzyżowanie płaszczyzn nikoli względem siebie powoduje 
całkowite  wygaszenie.  Pole  widzenia  jest  ciemne, a  pole  jasne pojawia się tylko w przypadku 
pokrycia się płaszczyzn obydwu nikoli. Jeżeli pole widzenia w okularze zostanie ustawione na 
pewien  stan  oświetlenia  lub  zaciemnienia,  a  pomiędzy  nikole  wstawi  się  roztwór  substancji 
optycznie  czynnej,  nastąpi  skręcenie  światła  spolaryzowanego.  W  celu  przywrócenia 
poprzedniego  stanu  oświetlenia  pola  widzenia  potrzebna  jest  zmiana  położenia  nikola 
analizatora.  Kąt  o  jaki  zostanie  obrócony analizator odpowiada kątowi  skręcenia płaszczyzny 
polaryzacji. 

Zasada  półcienia  wykorzystywana  jest  w  polarymetrach  nowszych  typów.  Obok  nikola 

polaryzatora  umieszcza  się  mały  polaryzator  dodatkowy,  którego  płaszczyzna  jest  skręcona 
o  10  ÷  20°  w  stosunku  do  płaszczyzny  nikola polaryzatora. Pole widzenia zostaje podzielone 
na  część  jasna  i  ciemną.  Kąt  skręcenia  płaszczyzny  światła  spolaryzowanego  przez  badany 
roztwór substancji czynnej należy odczytać doprowadzając nikol do położenia, w którym obie 
połówki pola widzenia są jednakowo oświetlone. Sytuację powyższą obrazuje rysunek 10. 
 

 

 

Rys. 10. Powstawanie półcieni w polarymetrze Lippicha [2, s. 267] 

1- oś krystalizacji nikola polaryzatora, 2 – oś krystalizacji małego nikola, 3 – oś 

krystalizacji nikola analizatora.

 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 19 

W  polarymetrach  klasycznych  odczyt  dokonywany  jest  w  stopniach  kątowych 

Sacharymetry,  które  posiadają  kompensację  klinową  (rys.  11)  są  wyskalowane  w  stopniach 
Ventzkego. Skala Ventzkego wywodzi się stąd, że roztwór sacharozy, który zawiera 26 g tego 
cukru  w  100  cm

3

,  przy  grubości  warstwy  roztworu  równej  2  dm  wykazuje  skręcenie 

płaszczyzny polaryzacji o 100° Ventzkego. 
 

 

 

Rys. 11. Kompensacja klinowa stosowana w sacharymetrach [2, s. 268] 

a) kompensacja pojedyńcza, b) kompensacja podwójna 

 

Metody  polarymetryczne  oznaczania  zawartości  cukrowców  mogą  być  stosowne  tylko 

w przypadku  rozpuszczenia  ich  w  wodzie  oraz  gdy  dają  one  roztwory  klarowne  i  możliwie 
bezbarwne. 

Oznaczenia kolorymetryczne 
Metody kolorymetryczne oparte są na działaniu promieniowania elektromagnetycznego na 

badane  substancje  a  głównie  na  absorpcji  promieniowania  w  zakresie  widzialnego  światła 
białego  o  zakresie  długości  fali  380  ÷  780  nm.  Światło  padając  na  jakiś  układ  absorpcyjny 
zostaje  częściowo  rozproszone,  częściowo  pochłonięte  i  częściowo  przepuszczone.  Zdolność 
absorpcji  pewnych  frakcji promieniowania elektromagnetycznego przez różne ciała  zależy od 
ich  budowy  cząsteczkowej.  Strumień  światła  I

padając  ulega  częściowemu  odbiciu  (I

odb

), 

częściowemu rozproszeniu (I

r

) i częściowej absorpcji (I

a

) i tylko w części przechodzi przez ten 

ośrodek (I

t

)  jak pokazuje rys. 12 

 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 20 

 

 

 

 

 

 

 

 

Rys. 12.  Podział strumienia światła na frakcje przy przechodzeniu przez badany roztwór [2, s. 227] 

I

0

 – natężenie światła padającego, (I

odb

) – natężenie światła odbitego, I

– natężenie światła podlegającego 

absorpcji, I

r

 – natężenia światła polaryzującego rozproszenie, I

t

 – natężenie światła przechodzącego przez 

roztwór 

 

Zapisać to można wzorem: 
I

0

 = I

odb

 + I

r

 + I

a

 +I

t

 

Oznaczenia  kolorymetryczne  prowadzone  są  na  klarownych  roztworach  substancji  barwnych 
oraz  przy  użyciu  tych  samych  kuwet.  wartości  natężeń  promieniowania  odbitego 
i rozproszonego można pominąć i wówczas: 
I

0

 = I

+ I

t

 

Stosunek 

T

I

I

t

=

0

nosi  nazwę  przepuszczalności  lub  transmisji.  Informuje  on  jaka  część 

promieniowania świetlnego zostaje przepuszczona przez roztwór. Przepuszczalność wyrażana 
jest  w  procentach.  Innym  wskaźnikiem  jest  absorpcja,  której  wyrażenie  liczbowe  stanowi 
absorbancja. 

W  praktyce  do  przeliczania  wartości  liczbowych  służą  tabele  przeliczeniowe  określające 

zależności liczbowe pomiędzy przepuszczalnością (transmisją) roztworu (T) i absorbancją (A). 
Do  oznaczania  ilościowego  składników  barwnych  zawartych  w  badanych  roztworach  można 
stosować  metodę  algebraiczną  i  graficzną,  ale  tylko  w  przypadku,  gdy  spełnione  jest  prawo 
Lamberta - Beera, mówiące, że absorpcja światła przez roztwór jest wprost proporcjonalna do 
grubości warstwy roztworu i jego stężenia, co można wyrazić równaniem: 

A = k · l · c 
Gdzie:  k-  współczynnik  absorpcji,  którego  wartość  jest  stała  dla  danej  substancji 

i rozpuszczalnika, przy określonej długości fali światła, 

l- grubość warstwy roztworu, 
c- stężenie roztworu. 
W  metodzie  algebraicznej  stężenie  roztworu  oblicza  się  ze  wzoru  będącego 

przekształceniem równania obrazującego prawo Lamberta-Beera: 
 

l

k

A

c

c

l

k

I

I

A

t

=

=

=

0

log

 

 

I

I

odb. 

I

I

I

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 21 

W  metodzie  graficznej  należy  wykreślić  krzywą  wzorcową  w  układzie  współrzędnych, 

nanosząc  na  oś  odciętych  (x)  wartości  liczbowe  stężenia,  a  na  oś  rzędnych  (y)  wartości 
liczbowe absorbancji. Zależności przedstawia rys. 13. 

 

 

Rys. 13. Wykres zależności absorpcji roztworu od jego stężenia [2, s. 231] 

 

 

 

Rys. 14. Wykres zależności absorpcji roztworu od jego stężenia 1,2 – odchylenia od prawa Lamberta-

Beera [2,s.231] 

 

Odchylenia od prawa Lamberta-Beera są wynikiem zmian zachodzących w roztworach np. 

asocjacja cząsteczek, polimeryzacja. 

Stężenia  roztworów  związków  barwnych  można  określać  metodą  porównania 

z roztworami  barwnymi  o  znanych  stężeniach.  Porównywania  barwy  roztworów  badanych 
z wzorcowymi można dokonywać w cylindrach Hehnera rys. 14 lub w kolorymetrze Dubosqa 
rys. 15. 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 22 

 

 

Rys. 15. Cylindry Hehnera [2, s. 239] 

 

Cylindry  Hehnera  posiadają  kurki  spustowe  oraz  wyskalowane  podziałki.  Dokonując 

pomiaru  należy  wlać  do  cylindrów  jednakowe  ilości  roztworów:  badanego  i  wzorcowego. 
Z roztworu  o  silniejszym  zabarwieniu  należy  odlewać go    przez kran  spustowy    do momentu 
zrównania  intensywności  zabarwień  w  obu  cylindrach.  Po  tej  czynności  należy  odczytać  na 
wyskalowanych podziałkach równoważne grubości warstw obydwu roztworów. 

 

 

Rys. 16.  Kolorymetr Dubosqa [2, s. 239] 

1,2 -  naczynia szklane, 3,4 – pręty zanurzeniowe, 5, 6 – śruby, 7 – okular, 8 – pole widzenia, 9,10, - skale 

 

Kolorymetr  Dubosqa składa  się z dwóch cylindrów o płaskich dnach, które wykonane są  

z  przezroczystego  szkła.  Cylindry  są  umieszczone  w  ruchomych  metalowych  uchwytach. 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 23 

Przekładnia  zębata  pozwala  na  przesuwanie  cylindrów  w  kierunku  pionowym.  W  tym  czasie 
pręty szklane zanurzają się w cylindrach na odpowiednią głębokość. Po osiągnięciu położenia, 
przy  którym  zabarwienie  roztworów  jest  jednakowe należy odczytać  na  skalach  równoważne 
grubości warstw roztworów badanego i wzorcowego. 

Urządzeniami,  w  których  absorpcję  światła  mierzy  się  za  pomocą  fotokomórek, 

a natężenie  fotoprądu  za  pomocą  wyskalowanego  w  wartościach  liczbowych  absorbancji 
galwanometru  jest  elektrofotokolorymetr.  Elektrofotokolorymetr  jednokomórkowy  posiada 
jedną  kuwetę,  którą  należy  napełnić  tzw.  ślepą  próbą  lub  rozpuszczalnikiem,  a  drugą 
identyczną  roztworem  badanym.  Po  nastawieniu  odpowiedniego  filtru  kuwetę  z  próbą  ślepą 
należy  wstawić  do  gniazda  elektrofotokolorymetru.  Wskazania  galwanometru  należy  ustawić 
na 100% transmisji przez pokrętła sprzężone z przesłoną lub opornikiem. Następnie po wyjęciu 
ślepej  próby  wstawić  należy  w  to samo miejsce kuwetę z badanym roztworem i odczytać na 
skali galwanometru wskazania absorbancji lub transmisji. 

 

Rys. 17. Schemat elektrofotokolorymetru jednokomórkowego [2, s. 242] 

1 – żarówka, 2 – probówka z badanym roztworem, 3 – filtr, 4 – fotokomórka, 5 – oporniki, 6 – 

galwanometr 

 

 

Rys. 18. Schemat elektrofotokolorymetru dwukomórkowego [2, s. 243] 

1 – źródło prądu, 2 – żarówka, 3 – soczewka, 4 – filtr, 5 – kuwety, 6 – fotokomórki, 7 – opornik, 8 – 

galwanometr 

 

W  elektrokolorymetrze  dwukomorowym  kuwety  wstawia  się  jednocześnie  i  sprowadza 

ruchomą  skalę  absorbancji  do  takiego  położenia,  przy  którym  galwanometr  nie  wskazuje 
przepływu prądu. 
 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 24 

 

 

Rys. 19. Kolorymetr fotoelektryczny SPEKOL 1300 [http://pl.wikipedia.org/]

 

 

Kolorymetr  fotoelektryczny  wykorzystywany  w  laboratoriach  chemicznych  działa 

następująco:  Wiązka  światła  białego  z  żarówki,  pada  na  odbiciową  siatkę  dyfrakcyjną,  która 
rozszczepia światło na różne długości fal (barwy). Siatka jest sprzężona z bardzo precyzyjnym 
mechanizmem

 

pozwalającym  obracać  ją  tak,  aby  dokładnie  skierować  promień  określonej 

barwy  do  układu  optycznego,  a  następnie  na  badane  ciało  (najczęściej  jest  to,  umieszczona 
w specjalnej  kuwecie  szklanej  lub  kwarcowej,  ciecz).  Po  przejściu  przez  badaną  substancję 
światło  pada  na  fotoogniwo,  w  którym  powstaje  napięcie,  zależne  od  natężenia  padającego 
światła.  Do  pomiaru  ekstynkcji  nie  wystarcza  jeden  pomiar,  gdyż  nie  jest  znane  natężenie 
wiązki  padającej  na  substancję  (które  jest  zresztą  różne  dla  różnych  długości  fal  i  zależy  od 
charakterystyki  oświetleniowej  danej  żarówki).    Pomiarów  przy  pomocy  SPEKOLA  należy 
dokonywać    przy  wykorzystaniu  substancji  wzorcowej,  którą  najczęściej  jest  woda 
destylowana.  Najpierw  dla  wody  destylowanej  ustawiane  jest  wskazanie  przyrządu  na  zero 
ekstynkcji  (czyli  100%  transmisji),  a  następnie  dla  tych  samych  ustawień  umieszcza  się  na 
drodze  wiązki  świetlnej  zamiast  wody  badaną  substancję.  Teraz  już  można  bezpośrednio  ze 
skali  odczytać  ekstynkcję  bądź  transmisję.  Stosując  powyższą  metodę  eliminujemy 
pochłanianie światła przez sam rozpuszczalnik (wodę). 

Aby  z  kolei  określić  stężenie  danego  roztworu,  należy  najpierw  sporządzić  zależność 

ekstynkcji roztworu od jego stężenia. W tym celu sporządza się roztwory wzorcowe o znanych 
stężeniachc , mierzy ich ekstynkcje E dla wybranej długości fali (przeważnie dla tej, przy której 
absorpcja  jest  maksymalna)  i  sporządza  wykres  zależności  E(c).  Teraz  mierząc  ekstynkcję 
roztworu o nieznanym stężeniu można w prosty sposób odczytać z wykresu jej stężenie. 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 25 

 

Rys. 20. Schemat działania fotokolorymetru SPECOL 1300 [http://pl.wikipedia.org/]

 

 
 

4.2.2.Pytania sprawdzające 
 

Odpowiadając na pytania, sprawdzisz, czy jesteś przygotowany do wykonania ćwiczeń

 

1.  Jakie zjawiska fizyczne wykorzystywane są w pomiarach refraktometrycznych? 
2.  Jak działa refraktometr Abbego? 
3.  Kiedy odczyty refraktometryczne są prawidłowe? 
4.  Jak działa refraktometr zanurzeniowy Zeissa? 
5.  Jakie roztwory sacharozy mogą być badane za pomocą refraktometrów? 
6.  Jaka jest zasada działania polarymetrów? 
7.  Na czym polega zasada półcienia wykorzystywana w nowszych polarymetrach? 
8.  Jakie roztwory mogą być oznaczane polarymetrycznie? 
9.  Jakich  przyrządów należy użyć do oznaczeń kolorymetrycznych i jak z nich korzystać? 
 

4.2.3. Ćwiczenia 
 

Ćwiczenie 1 

Oznacz zawartość wody w galaretkach. 
 
Sposób wykonania ćwiczenia 
 
Aby wykonać ćwiczenie powinieneś: 

1)  przygotować  refraktometr:  nastawić  na  temperaturę  20°C,  sprawdzić  wartość 

współczynnika  załamania  światła  dla  wody  destylowanej,  w  przypadku  odchyleń  skalę 
odpowiednio poprawić, 

2)  wytarować zlewkę, 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 26 

3)  odważyć 25 g galaretki, 
4)  dodać  20  cm

wody  destylowanej  i  podgrzewać  stale  mieszając  do  całkowitego 

rozpuszczenia produktu, 

5)  wystudzić do temperatury pokojowej, zważyć i dodać wody destylowanej tyle, aby ogólna 

masa zawartości zlewki wynosiła 50 g (dokładność ważenia 0,01g), 

6)  zawartość zlewki dokładnie wymieszać, 
7)  przenieść kroplę roztworu na pryzmat, odczekać 30s, docisnąć obydwa pryzmaty, 
8)  wyregulować okulary na ostrość pola widzenia, 
9)  pryzmat refraktometru nastawić tak, aby trzy przerywane kreski (w refraktometrze Zeissa) 

stanowiły  linię  graniczną  oddzielającą  jasną  część  pola  widzenia  od  ciemnej 
(w refraktometrze  Abbego  linia  graniczna  powinna  przechodzić  dokładnie  przez  punkt 
skrzyżowania) 

10)  odczytać na skali procentowej zawartość ekstraktu badanego roztworu, 
11)  wykonać obliczenie wg wzoru: x = 100 – 2E, w którym x – procentowa zawartość wody, 

 E  –  odczytana  zawartość  ekstraktu  w  %,  odejmujemy  podwójną  odczytaną  zawartość 
ekstraktu 2E, ponieważ galaretka została rozcieńczona dwukrotnie wodą. 

 

Wyposażenie stanowiska pracy 

 

waga techniczna, 

 

refraktometr z instrukcją obsługi, 

 

ultratermostat Höpplera (warunkowo), 

 

zlewka o pojemności 100cm

3

 

bagietka, 

 

trójnóg, 

 

palnik, 

 

próbka galaretki 

 

Ćwiczenie 2 

Oznacz skręcalność miodu za pomocą polarymetru. 

 

Sposób wykonania ćwiczenia 
 
Aby wykonać ćwiczenie powinieneś: 

1)  użyć do oznaczenia 20-procentowego roztworu podstawowego miodu, 
2)  rozpuścić 20g miodu w ciepłej wodzie destylowanej, 
3)  przenieść  ilościowo  po  oziębieniu  do  kolby  miarowej  o  pojemności  100cm

3

  i  uzupełnić 

wodą destylowaną do kreski, 

4)  wlać 25cm

3

 roztworu podstawowego do kolby o pojemności 50cm

3

 dodać 2cm

3

 roztworu 

zasadowego  octanu  ołowiu,  4cm

3

  nasyconego  roztworu  fosforanu  dwusodowego  i  1-2 

krople amoniaku, 

5)  wymieszać zawartość kolbki  i dopełnić do kreski wodą destylowaną, 
6)  wymieszać zawartość kolby i po 30 minutach przesączyć, 
7)  określić w przesączu polaryzację, w rurce 200mm, 
8)  odczytać wynik, 
9)  pomnożyć  wynik  przez  2,  ponieważ  otrzymasz  w  ten  sposób  skręcalność  roztworu  

20-procentowego. 

 

 
 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 27 

Wyposażenie stanowiska pracy: 

– 

kolba miarowa o pojemności 100cm

3

– 

kolba miarowa o pojemności 50cm

3

– 

20-procentowy roztwór podstawowy miodu , 

– 

zasadowy octan ołowiu, 

– 

fosforan dwusodowy roztwór nasycony, 

– 

amoniak, 

– 

polarymetr z instrukcją obsługi. 

 
Ćwiczenie 3 

Oznacz zawartość żelaza metodą kolorymetryczną. 

 

Sposób wykonania ćwiczenia 
 
Aby wykonać ćwiczenie powinieneś: 
przygotować wzorcowy roztwór żelaza zawierający 0,1mg Fe w 1cm

3

 roztworu: 

1)  odważyć  na  wadze  analitycznej  0,8634g  ałunu  żelazowo-amonowego  i  zadać  go  10cm

3

 

roztworu kwasu siarkowego, 

2)  przenieść  zawartość  naczyńka  do  kolby  miarowej  o  pojemności  200cm

3

,  popłukując 

naczyńko, lejek i bagietkę wodą destylowaną, 

3)  uzupełnić zawartość kolby wodą destylowaną i dokładnie wymieszać, 
4)  pobrać  pipetą  20cm

3

  przygotowanego  roztworu,  przenieść  do  kolby  miarowej 

o pojemności  100  cm

3

  ,  uzupełnić  do  kreski  wodą  destylowaną  i  dokładnie  wymieszać 

(roztwór zawiera 0,1g Fe w 1cm

3

), 

sporządzić krzywą wzorcową: 

5)  odmierzyć  do  sześciu  kolb  miarowych o pojemności 100 cm

3

 kolejno 1, 2, 3, 4, 5 i 6cm

3

 

wzorcowego roztworu żelaza, 

6)  dodać po 2 cm

roztworu kwasu solnego o stężeniu 2 mol/dm

3

, po 2cm

3

 wody utlenionej 

i po 5cm

3

  5 % tiocyjanianu potasu, 

7)  uzupełnić zawartość kolb wodą destylowaną do 100 cm

3

 i dokładnie wymieszać, 

8)  oznaczyć  absorbancję  każdego  z  roztworów  w  fotokolorymetrze  przy  filtrze 

niebieskozielonym, nastawiając 100% przepuszczalności na wodę destylowaną, 

9)  sporządzić  wykres  krzywej  wzorcowej  w  układzie  współrzędnych  nanosząc  wartości 

liczbowe  absorbancji  na  oś  rzędnych  (y),  a  na  oś  odciętych  (x)  stężenie  żelaza 
w miligramach na 100cm

3

 kolorymetrowanych płynów, 

wykonać oznaczenia: 

10)  odmierzyć  pipetą  10cm

3

  badanego  roztworu  żelaza    do  kolby  miarowej  o  pojemności 

100cm

3

11)  dodać  2cm

3

  roztworu  kwasu  solnego o stężeniu 2mol/dm

3

, 2cm

 wody utlenionej i 5cm

3

  

5-procentowego roztworu rodanku potasu (tiocyjanian potasu), 

12)  uzupełnić do kreski zawartość kolby wodą destylowaną i dokładnie wymieszać, 
13)  użyć płyn do oznaczenia absorbancji, 
14)  nastawić elektrofotokolorymetr na 100% przepuszczalności przy filtrze niebieskozielonym 

na wodę destylowaną, 

15)  oznaczyć absorbancję zabarwionego płynu, przygotowanego z badanego roztworu żelaza 
16)  obliczyć wyniki posługując się krzywą wzorcową. 
 

 
 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 28 

Wyposażenie stanowiska pracy: 

 

elektrofotokolorymetr z instrukcją obsługi, 

 

kolby miarowe o pojemności 100 i 200cm

3

 

 

pipety jednomiarowe o pojemności 2, 5, 10 i 20cm

3

 

pipeta wielomiarowa o pojemności 10cm

3

 

naczyńko wagowe, 

 

bagietka szklana, 

 

waga analityczna, 

 

badany roztwór żelaza  o zawartości 5÷20mg w 1000cm

3

 

wzorcowy roztwór żelaza o zawartości 0,1mg Fe w 1cm

3

 

kwas solny, roztwór o stężeniu 2mol/ dm

3

 

 

kwas siarkowy, roztwór rozcieńczony w stosunku objętościowym 1:1 

 

rodanek potasu, roztwór 5-procentowy, 

 

nadtlenek wodoru, roztwór 3-procentowy, 

 

ałun żelazowo-amonowy, krystaliczny. 

 
4.2.4. Sprawdzian postępów

 

 

Czy potrafisz: 

 

Tak 

 

Nie 

1)  zdefiniować współczynnik załamania światła, i kąt graniczny? 

 

 

2)  zdefiniować prawo Lamberta-Beera,? 

 

 

3)  wykonać oznaczenia używając refraktometru Abbego? 

 

 

4)  wyjaśnić  budowę  i  zasadę  działania  refraktometrów:  Abbego, 

zanurzeniowego i ręcznego? 

 

 

5)  wyjaśnić zasadę działania polarymetru? 

 

 

6)  określić wielkość charakterystyczną dla związków optycznie czynnych? 

 

 

7)  posłużyć się kolorymetrem Dubosqa? 

 

 

8)  wykonać oznaczenia w cylindrach Hehnera? 

 

 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 29 

4.3. Oznaczenia potencjometryczne i chromatograficzne 

 
4.3.1. Materiał nauczania 

 

Potencjometria 
Analiza  potencjometryczna  polega  na  określeniu  stężenia  jonów  w  roztworze  na 

podstawie pomiaru potencjału elektrody zanurzonej do roztworu. 

W  laboratoriach  analitycznych  bardzo  często  oznaczana  jest  kwasowość  artykułów 

spożywczych.  Z  chemicznego  punktu  widzenia  kwasowość  można  podzielić  na  potencjalną 
czyli  bierną  i  na  aktywną  zależną  od  stężenia  lub  aktywności  jonów  wodorowych  H

  lub 

hydroniowych  H

3

O

+

.  Kwasowość  potencjalna  informuje  o  zawartości  kwasu  lub  kwasów 

w środowisku.  Przy  oznaczaniu  kwasowości  potencjalnej  nie  można  oznaczyć  absolutnej 
zawartości  poszczególnych  kwasów  występujących  w  surowcach i  produktach roślinnych  lub 
zwierzęcych.  Oznaczenie  sprowadza  się  więc  do  umownego  wyrażania  kwasowości 
środowiska  w  przeliczeniu  na  jeden  z  kwasów  tam  występujących,  reguły  w  największych 
ilościach.  Z  tego  względu  podając  wynik  oznaczenia  kwasowości  podajemy,  że  jest  to 
kwasowość w przeliczeniu na kwas mlekowy, jabłkowy, cytrynowy. 

Kwasowość  aktywna  podaje  faktyczne  stężenie  jonów  wodorowych  lub  hydroniowych. 

Uzależniona jest ona od rodzaju kwasu zawartego w roztworze. Kwasowość aktywną wyraża 
się  jako  wykładnik  wodorowy  (pH),  którego  wartość  liczbowa  jest  równa  ujemnemu 
logarytmowi  dziesiętnemu  ze  stężenia  jonów  wodorowych.  W  analizie  spożywczej  wyróżnia 
się także kwasowość lotną,  kwasowość związaną oraz kwasowość całkowitą, która jest sumą 
kwasowości potencjalnej i związanej. 

Potencjometryczny  pomiar  wykładnika  wodorowego  (pH)jest  dokładniejszy  niż 

oznaczenie  kolorymetryczne.  Do  przeprowadzenia  tego  oznaczenia  potrzebna  jest  elektroda, 
której potencjał zależy od stężenia jonów wodorowych w roztworze, np. elektroda wodorowa, 
określana  jako  wskaźnikowa.  W  celu  wykonania potencjometrycznego  pomiaru pH elektrodę 
wskaźnikową wraz z elektrodą porównawczą, która ma stały potencjał zanurza się w badanym 
roztworze.  W  ten  sposób  otrzymuje  się  ogniwo,  które  można  zapisać  w  postaci:elektroda 
wskaźnikowa roztwór badany elektroda kalomelowa. 

Siła  elektromotoryczna  utworzonego  w  ten  sposób  ogniwa  jest  równa  różnicy 

potencjałów poszczególnych elektrod: kalomelowej i wskaźnikowej. 

 

Rys. 21. Konstrukcja elektrody szklanej; 1 – membrana szklana, 2 - roztwór wewnętrzny np. 0,1 molowy HCl, 

3 - przewód wyprowadzajacy, 4 – Ag/AgCl [2, s. 333] 

 
 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 30 

Elektroda kalomelowa 
Elektroda  kalomelowa  należy  do  elektrod,  których  potencjał  zależy  od  stężenia  anionu. 

Jest  elektrodą  drugiego  rodzaju.  Zbudowana  jest  z  metalu  pokrytego  warstwą  jego  trudno 
rozpuszczalnej  soli  oraz  roztworu  zawierającego  anion tej soli. Elektroda złożona jest z rtęci, 
warstwy kalomelu (Hg

2

Cl

2

) i wodnego roztworu chlorku potasu (KCl). 

 

Rys.22. Elektroda kalomelowa [2, s. 330] 

 

Reakcja przedstawiająca działanie elektrody kalomelowej jest następująca: 
Hg

2

Cl

2(s) 

+ 2 e

-

 2 Hg

(c)

 + 2 Cl

-

 

Zaletą  elektrody  kalomelowej  jest  stałość  jej  potencjału  wynikająca  z  faktu,  że  gdy 

odbijemy z niej elektrony odpowiednia ilość rtęci przechodzi do roztworu. 

2 Hg 

 Hg

2

2+ 

+ 2e

-

 

Wobec  stałości  iloczynu  rozpuszczalności kalomelu i przy nadmiarze jonów chlorkowych 

wytrąca się osad kolonelu, zgodnie z reakcja: 

Hg

2

2+

 + 2Cl

 Hg

2

 Cl

2(s) 

Jeżeli  elektrony  zostaną  doprowadzone  do  układu,  jony  rtęci  przechodzą  w  rtęć 

metaliczną, a w to miejsce odpowiednia ilość kalomelu ulega rozpuszczeniu: 

Hg

2

2+

 + 2 e

 2 Hg 

Hg

2

Cl

2

 

 Hg

2

2+

 + 2 Cl

-

 

W obydwu przypadkach stężenie jonów rtęciawych i chlorkowych pozostają stałe, a więc 

potencjał nie ulega zmianie. Potencjał elektrody kalomelowej  z 1-molowym roztworem KCl w 
temperaturze  20°C  wynosi  +0,2812  wolta,  a  potencjał  elektrody  kalomelowej    z  nasyconym 
roztworem  KCl  w  tej  samej  temperaturze  wynosi + 0,2476 wolta. Elektroda kalomelowa jest 
powszechnie stosowana jako elektroda porównawcza. 

Elektroda  szklana  składa  się  z  banieczki  wypełnionej  roztworem  HCl  o  stężeniu  0,1 

mol/dm

3

, w którym zanurzony jest drucik pokryty chlorkiem srebra. Potencjał elektrody zależy 

od  stężenia  jonów  wodorowych  w  roztworze  oraz  od  składu  jakościowego  i ilościowego 
szkła, a także grubości banieczki szklanej. Ponieważ nie udaje się produkować banieczek o tej 
samej  grubości  oraz  ze  szkła  o  tym  samym  składzie  ilościowym  ilościowego jakościowym, 
dlatego  wartość  potencjału  zależna  od  rodzaju  szkła    i  grubości  banieczki  jest  zmienna  dla 
różnych  elektrod.  Należy  ją  wyznaczyć  doświadczalnie  dla  każdej  elektrody,  poddając  ją 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 31 

cechowaniu 

na 

roztworach 

znanych 

roztworach 

buforowych 

o  znanych  wartościach  pH.  Bufory  to  mieszaniny  słabych  kwasów  i  ich  soli  z  mocnymi 
kwasami.  Zachowują  one  w  pewnym  zakresie  stałe  wartości  pH  mimo  rozcieńczania  wodą 
oraz  podczas  dodawania  do  nich  pewnych  ilości  mocnych  kwasów  lub  mocnych  zasad. 
Przykładem roztworu buforowego jest mieszanina kwasu octowego i octanu sodu. 

Elektroda szklana znajduje powszechne zastosowanie jako elektroda wskaźnikowa. Może 

być  stosowana  do  pomiarów  wartości  wykładnika  wodorowego  mieszczących  się  w  zakresie 
od 1÷ 9. 

Przed użyciem elektroda wymaga 10-godzinnego moczenia w wodzie destylowanej. 
Do  wyznaczania  pH  roztworu  (odczynu  roztworu  wodnego)  służy  pehametr.  Jest  to 

woltomierz elektroniczny służący w codziennej praktyce laboratoryjnej, badaniach naukowych 
lub  zastosowaniach  polowych.  Wartość  pH  jest  określana  na  podstawie  pomiaru  siły 
elektromotorycznej ogniwa (SEM). Pehametr wyposażony jest najczęściej w elektrodę szklaną, 
lub kombinowaną. 

 

Rys.23. Pehametr przenośny IQ 140 

 
Metody chromatograficzne 
Chromatografia  to  metoda  analizy  stosowana  do  wydzielania,  rozdzielania  i  identyfikacji 

substancji  o  podobnych  właściwościach  chemicznych.  Proces  chromatograficzny  może  być 
prowadzony  z  dowolnego  układu  wieloskładnikowego,  w  którym  faza  rozpraszająca  jest 
gazem  lub  cieczą  o  nieograniczenie  małych  stężeniach.  Analiza  chromatograficzna  pozwala 
rozdzielić  składniki  mieszaniny  o  bardzo  zbliżonych właściwościach  chemicznych.  Oparta  jest 
na  zjawisku  sorpcji.  Sorpcja  to  zjawisko  samorzutnej  zmiany  stężenia  składnika  w układach 
złożonych  heterofazowych  wskutek  oddziaływania  drugiego  składnika  znajdującego  się  w 
odmiennej fazie. 

Składnik, który zmienia swoje stężenie wskutek oddziaływania drugiego składnika nazywa 

się  sorptywem.  Składnik,  który  wywołuje  zmianę  stężenia  sorptywu  nosi  nazwę  sorbenta. 
Urządzenie, w którym zachodzi sorpcja nazywa się sorberem. 

Szczególne  zastosowanie  sorpcja  znajduje  w  procesach  chromatograficznych. 

Sprowadzają  się  one  do  wykorzystania  zjawisk  sorpcyjnych  przy  rozdzielaniu  układów 
złożonych. 

Układ chromatograficzny składa się z trzech elementów: fazy nieruchomej, fazy ruchomej 

i substancji rozpuszczonej w tej ostatniej. Proces chromatograficzny sprowadza się do podziału 
substancji  rozpuszczonej  między  fazę  ruchomą  i  nieruchomą.  Biorąc  pod  uwagę  mechanizm 
podziału  rozdzielanych  substancji  pomiędzy  fazę  ruchomą  i  nieruchomą  rozróżnia  się  cztery 
rodzaje chromatografii: 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 32 

 

chromatografię adsorpcyjną, 

 

chromatografię jonowymienną 

 

chromatografię podziałową, 

 

chemichromatografię. 
Chromatografia kolumnowa 
Chromatografia  kolumnowa  prowadzona  jest  w  naczyniach  cylindrycznych  o  różnych 

wymiarach  od  kilku  milimetrów  do  kilku  metrów,  najczęściej  o  jednostronnym  przewężeniu,  
w których wmontowane są różnego rodzaju zawory regulujące. 

 

Rys. 24. Różne typy kolumn chromatograficznych [1. s. 99] 

 

 

Rys. 25. Wypełniona kolumna chromatograficzna [1, s. 100] 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 33 

 

Rys.26. Zestawy do chromatografii kolumnowej [ 1, s.100] 

1 – wata, 2 – Al

2

O

3

, 3 – szlif szklany, 4 – szkło piankowe 

 

 

Wypełnienie  kolumny  chromatograficznej  musi  być  równomierne  i  bardzo  dokładne,  aby 

eliminowało  powstawanie  rys  i  pęknięć  w  sorbencie,  które  mogą  doprowadzić  do 
niewłaściwego  rozdziału  substancji.  Sorbent  należy  wprowadzać  wraz  z  rozpuszczalnikiem 
małymi  porcjami  tak,  aby  zapewnić  usunięcie  wszystkich  ewentualnych  pęcherzyków 
powietrza. 

W  opisywanej  chromatografii  kolumnowej  fazą  ruchomą  są  mieszaniny  ciekłe  roztwory. 

W  przypadku  gdy  fazą  ruchomą  są  gazy,  mimo  że  proces  zachodzi  w  kolumnach  metodę 
wyodrębnia się i nazywa chromatografią gazową. 

Roztwór  przeznaczony  do rozdziału chromatograficznego wprowadza się na wierzchołek 

kolumny  wypełnionej  odpowiednim  sorbentem  i  rozpuszczalnikiem  tak,  aby  cała  górna 
powierzchnia  sorbentu  została  nakryta  nim  równocześnie  i  równomiernie.  Podczas 
przemieszczania  się  roztworu  rozdzielanego  przez  kolumnę,  pierwsze  porcje  składnika 
o większym  powinowactwie  sorpcyjnym  ulegają  sorpcji  tuż  na  jej  powierzchni.  Roztwór 
przechodzący  do  dalszych  warstw  kolumny  jest  uboższy  w  składnik  o  większym 
powinowactwie  sorpcyjnym  do  sorbentu.  Nadchodzące  nowe  warstwy  sorbentu  o  stężeniu 
początkowym,  dosycają  powierzchnie  sorbentu  w  składnik  o  większym  powinowactwie 
sorpcyjnym  do  stanu  równowagi  według  stosunku  podziału  dla  danego  składnika 
rozdzielanego.  Czołowe  porcje  roztworu  zawierające  „nadmiar”  składnika  rozdzielanego 
w warstewce  powierzchniowej  przemieszczają  się  w  głąb  kolumny.  Napotykają  nowe 
powierzchnie  sorbentu,  które  wchłaniają  rozpatrywany  składnik.  Jeżeli  nowo  napotkane 
warstwy  sorbentu  są  wypełnione  innym  sorptywem  o  mniejszym  powinowactwie  sorpcyjnym 
to  przemieszczający  się  składnik  wypiera  z  poszczególnych  powierzchni  napotkany  sorptyw 
i zajmuje  jego  miejsce.  W  ten  sposób  z  roztworu  przechodzi  całkowicie  na  sorbent  składnik 
o większym powinowactwie sorpcyjnym do sorbentu już w pierwszych warstwach. Tuż za nim 
przechodzi  na  tych  samych  zasadach  składnik  o  mniejszym  powinowactwie  sorpcyjnym  itd. 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 34 

Trwa  to  do  momentu,  aż  wychodzące  porcje  o  stężeniu  początkowym  nie  wysycą  całego 
wypełnienia kolumny. 

Chromatografia  bibułowa  to  rodzaj  chromatografii  cieczowej.  Metoda  głównie 

analityczna,  lecz    służąca  do  oczyszczania  i  identyfikacji  mieszanin  substancji  chemicznych. 
Fazę  rozdzielczą,  czyli  fazę  stacjonarną  stanowi  bibuła.  Zwykła  filtracyjna  lub 
chromatograficzna,  o  wysokiej  czystości  i  określonych  parametrach.  Prędkość  ruchu 
poszczególnych  składników  rozdzielanej  mieszaniny  jest  uzależniona  od  oddziaływań 
międzycząsteczkowych  między  związkami  chemicznymi  tworzącymi  analizowaną  próbkę, 
a fazą  rozdzielczą  i  eluentem.  Substancje  rozdzielane  nakrapia  się  punktowo  przy  dolnej 
krawędzi bibuły, po czym umieszcza się ją w komorze chromatograficznej zanurzoną na kilka 
milimetrów  w  eluencie  (zwanym  często  tu,  i  w  chromatografii  cienkowarstwowej  (TLC), 
układem rozwijającym), tak by nakropione substancje nie zostały zanurzone. Eluent stopniowo 
wznosi się po bibule (przy udziale sił kapilarnych) powodując ruch substancji rozdzielanych w 
górę  („rozwijanie  się”  chromatogramu).  Gdy  czoło  eluenta  dotrze  do  górnej  krawędzi  bibuły 
rozdział  jest  zakończony.  Jest  to  tak  zwana  chromatografia  bibułowa  wstępująca.  Istnieje 
jeszcze  chromatografia  bibułowa  zstępująca,  gdzie  w  komorze  chromatograficznej  o  nieco 
innej  budowie,  ruch  eluentu  następuje  w  kierunku  dolnej  krawędzi  bibuły  (mieszanina 
rozdzielana  umieszczona  jest  wtedy  przy  górnej  krawędzi).  Zależnie  od  swojej  natury 
fizykochemicznej - składniki rozdzielanej mieszaniny dotarły na różną wysokość (współczynnik 
Rf). W przypadku, gdy nie są naturalnie barwne, ich obecność można wizualizować używając 
zależnie  od  ich  właściwości  światła  UV,  roztworów  wywołujących  (w  których  bibuła  jest 
zanurzana  lub  nimi  spryskiwana  reagują  one  specyficznie  i  barwnie  z  rozdzielanymi 
substancjami)  lub  innych  metod  (np.  wywoływanie  w parach  jodu).  W  celu  odzyskania 
rozdzielonych  substancji  można  je  wymyć  z  określonego  fragmentu  bibuły.  Obecnie  rzadko 
stosowana metoda. Zwykle stosowana do substancji naturalnie barwnych. Jej nowocześniejszą 
wersją jest TLC. 
Metody  technik  chromatograficznych  stosowane  są  w  analizie  żywności  między  innymi  do 
wykrywania  oznaczania  mieszaniny  związków  konserwujących  w  produktach  spożywczych, 
wykrywania  zafałszowań  wina  np.  czerwienią  Bordeaux,  wykrywania  i  oznaczania  kwasu 
propionowego,  który  bywa  używany  jako środek przeciwpleśniowy  w  produktach  mącznych, 
pieczywie, ciastach itp. 
 

4.3.2. Pytania sprawdzające 

Odpowiadając na pytania, sprawdzisz, czy jesteś przygotowany do wykonania ćwiczeń

 

1.  W jaki sposób przygotowywane są roztwory buforowe? 
2.  Jaką rolę pełni elektroda kalomelowa w oznaczeniach i jak jest zbudowana? 
3.  Jakie jest znaczenie elektrody szklanej? 
4.  Jak działa potencjometr? 
5.  Jakie oznaczenia  można wykonywać metodami chromatograficznymi? 
6.  Jak obsłużyć kolumnę chromatograficzną? 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 35 

4.3.3. Ćwiczenia 
 

Ćwiczenie 1 

Oznacz wykładnik wodorowy (pH) soku owocowego. 

 

Sposób wykonania ćwiczenia 
 
Aby wykonać ćwiczenie powinieneś: 

1)  przygotować próbkę do soku owocowego do badania, 
2)  sprawdzić uziemienie pehametru, 
3)  podłączyć  pehametr  do  sieci  elektrycznej  i  odczekać  15  minut  (nie  dotyczy  pehametrów 

tranzystorowych), 

4)  zanurzyć elektrody do zlewki z roztworem buforowym o pH ok. 3, 
5)  sprowadzić wskazania miernika skali dokładnie do wartości pH buforu, 
6)  odstawić zlewkę z roztworem buforowym, 
7)  popłukać elektrody wodą destylowaną z tryskawki, 
8)  osuszyć paskiem bibuły, 
9)  zanurzyć elektrody w zlewce z próbą badanego soku owocowego, 
10)  dokonać odczytu, zlewkę odstawić, popłukać elektrody i osuszyć je bibułą, 
11)  wyskalować pehametr na bufor o pH ok.6. 

 

Wyposażenie stanowiska pracy: 

– 

pehametr wraz z elektrodami (szklaną i kalomelową), 

– 

kolby miarowe o pojemności 100cm

– 2 sztuki, 

– 

zlewki o pojemności 25cm

3

 – 4 sztuki, 

– 

kolba stożkowa o pojemności 100cm

3

 z doszlifowanym korkiem, 

– 

zlewki o pojemności 30cm

3

 – 3 sztuki, 

– 

bagietki szklane, 

– 

lejki szklane, 

– 

cylinder miarowy o pojemności 100cm

3

– 

tryskawka z wodą destylowaną, 

– 

roztwory buforowe o wartościach pH 3 i 6, 

– 

sok owocowy. 

 
Ćwiczenie 2. 

Oznacz potencjometryczną wartość pH wina czerwonego. 

 

Sposób wykonania ćwiczenia 
 
Aby wykonać ćwiczenie powinieneś: 

1)  przygotować próbkę wina do badania, 
2)  wyzerować aparat przed pomiarem, 
3)  wyskalować  pehametr  w  temperaturze  20ºC  stosując  roztwory  buforowe  o  pH  =  6,88  

i  pH=3,57.  Do  sprawdzenia  kalibracji  skali  użyć  roztworu  buforowego  opH  =  4,00  
o temperaturze 20º, 

4)  zanurzyć elektrodę w badanej próbce, której temperatura wynosi od 20º÷25ºC, 
5)  odczytać wartość pH na skali pehametru, 
6)  wykonać co najmniej dwa równolegle oznaczenia badanej próbki, 
7)  obliczyć wynik końcowy jako średnią arytmetyczną z dwóch oznaczeń, 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 36 

8)  wartość pH wina podać z dokładnością do dwóch miejsc po przecinku. 

 
Wyposażenie stanowiska pracy: 

 

pehametr wyskalowany w jednostkach pH, 

 

elektrody; szklana przechowywana w wodzie destylowanej, 

 

kalomelowa  nasycona  elektroda  odniesienia  przechowywana  w  nasyconym  roztworze 
chlorku potasowego, 

 

ewentualnie elektroda kombinowana, przechowywana w wodzie destylowanej, 

 

roztwory  buforowe:  nasycony  roztwór  wodorowinianu  potasu,  0,05-molowy  roztwór 
wodoroftalanu potasu, 

 

wzorcowy roztwór buforowy. 

 
Ćwiczenie 3 

Oznacz wykładnik wodorowy (pH) mięsa. 

 

Sposób wykonania ćwiczenia 
 
Aby wykonać ćwiczenie powinieneś: 

1)  przygotować  próbkę  mięsa  do  badania:  odważyć  w  zlewce  50cm

3

  25g  drobno 

rozdrobnionej  (w  maszynce  do  mięsa)  próbki  mięsa.  Naważkę  przenieść  ilościowo  do 
kolby  stożkowej  o  pojemności  100cm

popłukując  zlewkę  25cm

świeżo  przegotowanej 

i ostudzonej  wody  destylowanej.  Kolbę  zamknąć  doszlifowanym  korkiem  i  wytrząsać  15 
minut.  Zawiesinę  przesączyć  przez  sączek  z  bibuły  filtracyjnej.  Przesącz  użyć  do 
oznaczenia pH, 

2)  odważyć  w  suchej  zlewce  o  pojemności  50cm

3

  na  wadze  technicznej  25g  rozdrobnionej 

próbki mięsa, 

3)  przenieść naważkę do kolby stożkowej o pojemności 100cm

3

4)  popłukać  zlewkę  25cm

świeżo  przegotowanej  i  ochłodzonej  wody  destylowanej, 

popłuczyny dodać do kolby z oznaczoną próbką mięsa, 

5)  wytrząsać zamkniętą kolbę przez 15 minut, 
6)  sączyć zawiesinę przez sączek z bibuły filtracyjnej, 
7)  wykonać oznaczenie na pehametrze jak w poprzednim ćwiczeniu. 

 

Wyposażenie stanowiska pracy: 

 

pehametr wraz z elektrodami (szklaną i kalomelową), 

– 

kolby miarowe o pojemności 100cm

– 2 sztuki, 

– 

zlewki o pojemności 25cm

3

 – 4 sztuki, 

– 

kolba stożkowa o pojemności 100 cm

3

 z doszlifowanym korkiem, 

– 

zlewki o pojemności 30cm

3

 – 3 sztuki, 

– 

bagietki szklane, 

– 

lejki szklane, 

– 

cylinder miarowy o pojemności 100cm

3

– 

waga techniczna, komplet odważników, 

– 

tryskawka z wodą destylowaną, 

– 

roztwory buforowe o wartościach pH 3 i 6. 

 
 
 
 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 37 

Ćwiczenie 4 

Wprowadź roztwór z liści na kolumnę chromatograficzną i zaobserwuj przebieg procesu. 

 

Sposób wykonania ćwiczenia 
 
Aby wykonać ćwiczenie powinieneś: 

1)  przygotować roztwór z liści przeznaczony do rozdziału chromatograficznego, 
2)  rozetrzeć w moździerzu kilka młodych liści z odrobiną piasku, 
3)  mieszaninę przenieść do kolby i dodać trochę acetonu i odstawić na kilka minut, 
4)  przygotować  kolumnę,  koniec  szklanej  rurki  o  długości  ok.  20cm  zatkać  z  jednej  strony 

korkiem z rurką, na dno włożyć mały zwitek waty, 

5)  wypełnić rurkę cukrem pudrem, do wysokości 15cm 
6)  przesączyć mieszaninę przez bibułę, 
7)  wprowadzić roztwór na wierzchołek kolumny, 
8)  wlewać kolejne niewielkie porcje acetonu kiedy roztwór z liści spłynie w dół kolumny, 
9)  prowadzić  obserwację  do  momentu  kiedy  wychodzące  porcje  roztworu  o  stężeniu 

początkowym nie wysycą całego wypełnienia kolumny, 

10)  wyjaśnić zjawiska zachodzące w kolumnie chromatograficznej. 
 

Wyposażenie stanowiska pracy 

 

kolumna chromatograficzna, 

 

zwitek waty, cukier puder do wypełnienia kolumny, 

 

liście dowolnego warzywa, 

 

aceton, 

 

lejek, bibuła. 

 
Ćwiczenie 5 

Wykryj pary jonów Cu

2+ 

 i Cd

2+ 

lub inne pary jonów. 

 
Sposób wykonania ćwiczenia 
 
Aby wykonać ćwiczenie powinieneś: 

1)  wyciąć paski bibuły rozmiaru 1x13cm, 
2)  nanieść na bibułę (w odległości 1cm od brzegu) kroplę badanego roztworu, 
3)  wysuszyć otrzymaną plamę, 
4)  nalać  na  dno  probówki  (długości  ok.  12cm)  0,5÷1cm

3

  mieszaniny  eluenta:  alkoholu  

n-butylowego i kwasu solnego w stosunku 4:1, 

5)  zanurzyć  pasek  bibuły  w  eluencie  na  głębokość  około 5mm  i  zamknąć  probówkę  (plama 

badanego  roztworu  znajduje  się  tuż  nad  eluentem)  korkiem  w  ten  sposób,  aby  korek 
przytrzymywał pasek bibuły, wymywać około dwóch godzin, 

6)  wysuszyć bibułę i wywołać chromatogram, 
7)  spryskiwać  bibułę  roztworem  siarczku  amonowego  (z  rozpylacza),  miedź  tworzy  czarne 

pasmo u dołu, a kadm żółte w górze chromatografu 

8)  podać skład jakościowy badanego roztworu na podstawie wywołanego chromatogramu. 

Uwaga:  Chromatograf  można  wywołać  inaczej.  W  odległości  około  4,5  cm  od  dolnego 

brzegu  nanieść  kroplę  roztworu  żelazicyjanku  potasowego  –  w  obecności  miedzi  powstanie 
czerwono-brunatna  plama  .  W  odległości  około  8,5cm  od  dolnego  brzegu  nanieść  kroplę 
roztworu siarczku amonowego – w obecności kadmu powstanie żółta plama. 

Możliwości dalszego rozwinięcia ćwiczenia: 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 38 

Opracować  rozdzielenie  w  tych  samych  warunkach  mieszanin:  Fe

3+

  -  Co

2+

,  Hg

2+ 

-  Pb

2+

Hg

2+ 

- Ni

2+

, Hg

2+ 

- Cu

2+

, Ni

2+ 

- Bi

3+

, i sposób identyfikacji plam. 

 
Wyposażenie stanowiska pracy: 

 

alkohol n-butylowy, 

 

kwas solny, stężony, 

 

siarczek  amonowy:  nasycić  roztwór  amoniaku  o  stężeniu  2mol/dm

  gazowym 

siarkowodorem  (do  chwili,  gdy  dodanie  tego  roztworu  do  roztworu  MgCl

2   

nie  wywoła 

powstania osadu) i rozcieńczyć go równą objętością amoniaku o stężeniu 2mol/dm

3

 

żelazicyjanek potasowy, roztwór nasycony. 

 

4.3.4. Sprawdzian postępów 
 

Czy potrafisz: 

 

Tak 

 

Nie 

1)  zdefiniować pojęcie buforu i pojemności buforowej ? 

 

 

2)  zdefiniować pojęcie metod elektrometrycznych? 

 

 

3)  określić działanie elektrod? 

 

 

4)  oznaczyć wartość wykładnika wodorowego (pH)? 

 

 

5)  określić zastosowanie metod chromatograficznych? 

 

 

6)  wyjaśnić zasady procesu chromatograficznego? 

 

 

7)  wyjaśnić budowę i zasadę działania kolumny chromatograficznej? 

 

 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 39 

5. SPRAWDZIAN OSIĄGNIĘĆ 

 

INSTRUKCJA DLA UCZNIA 

1.  Przeczytaj uważnie instrukcję. 
2.  Podpisz imieniem i nazwiskiem kartę odpowiedzi. 
3.  Zapoznaj się z zestawem pytań testowych. 
4.  Udzielaj odpowiedzi tylko na załączonej karcie odpowiedzi. 
5.  Pracuj  samodzielnie,  pamiętaj,  że  w  przyszłej  pracy  nie  możesz  liczyć  na  podpowiedzi 

kolegów. 

6.  Na udzielenie odpowiedzi masz 45 minut. 

Powodzenia! 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 40 

ZESTAW ZADAŃ TESTOWYCH 

 
1.  W analizie żywności do mierzenia gęstości cieczy używa się: 

a)  polarymetru. 
b)  refraktometru. 
c)  areometru. 
d)  kolorymetru. 
 

2.  Badania kolorymetryczne wykorzystuje się do oznaczania: 

a)  masy ciał. 
b)  stężeń roztworów. 
c)  pH roztworów. 
d)  gęstości ciał. 
 

3.  Metody refraktometryczne stosowane są do: 

a)  oznaczania zawartości cukrów i wody. 
b)  wykrywania zafałszowań. 
c)  identyfikacji tłuszczów. 
d)  do wszystkich trzech oznaczeń. 
 

4.  Do kolorymetrycznych pomiarów stężeń służą urządzenia: 

a)  cylindry Hehnera. 
b)  spektrofotometr. 
c)  absorpcjometr. 
d)  wszystkie wyżej wymienione. 
 

5.  W oznaczeniach piknometrycznych wykorzystywany jest piknometr: 

a)  próżniowy. 
b)  Geisslera. 
c)  Reischauera. 
d)  wszystkie odpowiedzi są prawdziwe. 
 

6.  Dobra waga hydrostatyczna pozwala określić gęstość z dokładnością do: 

a)  0,0001. 
b)  0,001. 
c)  0,01. 
d)  0,1. 
 

7.  Na jakość oznaczeń polarymetrycznych ma wpływ: 

a)  ciśnienie. 
b)  gęstość. 
c)  objętość. 
d)  temperatura. 
 

8.  Do oznaczania gęstości mleka używa się: 

a)  laktodensymetru. 
b)  piknometru. 
c)  wagi hydrostatycznej. 
d)  sacharymetru. 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 41 

9.  Waga  Mohra-Westphala  służąca  do hydrostatycznego  pomiaru gęstości  wyskalowana  jest 

w temperaturze: 
a)  5°C. 
b)  10°C. 
c)  15°C. 
d)  25°C. 
 

10. Gęstość ciała określa się jako: 

a)  iloczyn masy ciała i objętości. 
b)  stosunek masy ciała do objętości. 
c)  stosunek objętości do ciężaru ciała. 
d)  iloczyn ciężaru i gęstości. 
 

11. Zasada działania areometru oparta jest na prawie: 

a)  Ballinga. 
b)  Trallesa. 
c)  Gay-Lussaca. 
d)  Archimedesa. 
 

12. W celu uniknięcia spieniania płynów należy przelewać je: 

a)  szybko. 
b)  ostrożnie po ściance do zlewki. 
c)  bardzo szybko. 
d)  jakkolwiek. 
 

13. Elektrodę szklaną można stosować w roztworach o pH: 

a)  0÷12. 
b)  0÷12,5. 
c)  0÷13. 
d)  0÷14. 
 

14. Refraktometr zanurzalny posiada: 

a)  jeden pryzmat. 
b)  dwa pryzmaty. 
c)  trzy pryzmaty. 
d)  cztery pryzmaty. 
 

15. Dokładność pomiaru piknometrem zależy od: 

a)  temperatury. 
b)  wielkości piknometru. 
c)  czystości piknometru. 
d)  wszystkich wymienionych czynników. 
 

16. Miody pitne mają skręcalność: 

a)  3,0÷5,0°. 
b)  1,40÷ 1,43°. 
c)  2,0÷2,5°. 
d)  3,0÷4,0º. 
 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 42 

17. Oznaczenia spektrofotometryczne pozwalają: 

a)  charakteryzować substancje jakościowo. 
b)  oznaczać ilościowo stężenie substancji. 
c)  wnioskować o charakterze substancji. 
d)  spełniać wymienione wyżej funkcje. 
 

18. Elektroda szklana może być stosowana do pomiaru pH w zakresie: 

a)  0÷5. 
b)  0÷7. 
c)  0÷10. 
d)  0÷12. 
 

19. Punktem zerowym polarymetru jest pozycja analizatora dla której: 

a)  obydwa pola widzenia są jasne. 
b)  obydwa pola widzenia są najbardziej ciemne. 
c)  pola widzenia są podzielone na trzy części. 
d)  pola widzenia są lekko przyciemnione. 
 

20. Chromatografia kolumnowa obejmuje metody, w których fazą ruchomą są: 

a)  substancje stałe. 
b)  substancje jednorodne. 
c)  mieszaniny ciekłe, roztwory. 
d)  substancje gazowe. 

 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 43 

KARTA ODPOWIEDZI 

 

Imię i nazwisko........................................................................................ 

 
Wykonywanie instrumentalnej analizy żywności

 

 
Zakreśl poprawną odpowiedź, wpisz brakujące części zdania lub wykonaj rysunek.
 

 

Nr 

zadania 

Odpowiedź 

Punkty 

1. 

 

2. 

 

3. 

 

4. 

 

5. 

 

6. 

 

7. 

 

8. 

 

9. 

 

10. 

 

11. 

 

12. 

 

13. 

 

14. 

 

15. 

 

16. 

 

17. 

 

18. 

 

19. 

 

20. 

 

Razem: 

 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

background image

„Projekt współfinansowany ze środków Europejskiego Funduszu Społecznego” 

 44 

6.  LITERATURA

 

 

1.  Budsławski J., Drabant Z.: Metody analizy żywności. WNT, Warszawa 1999 
2.  Drzazga B.: Analiza techniczna w przemyśle spożywczym. WSiP, Warszawa 1992 
3.  Jarosz  M.,  Malinowska    E.:  Pracownia  chemiczna.  Analiza  instrumentalna.  WSiP,  

Warszawa 200 

4.  Łada  Z.  Różyczki  C.:  Pracownia  chemii  analitycznej  analiza  techniczna  i  insrymentalna 

WSiP 1984 

5.  Witkiewicz Z.: Podstawy chromatografii. WNT, Warszawa 2000 
6.  http://pl.wikipedia.org/