background image

Ćwiczenie nr 5 
 

Regulacja ekspresji genów na przykładzie rozwoju bakteriofaga T4. 
Prowadząca ćwiczenie: 
mgr Michalina Filipiak office A/236 
 

Bakteriofag  T4  należy  do  grupy  fagów  zjadliwych.  Fagi  zjadliwe  są  zdolne  tylko  do 

cyklu litycznego, kończącego się zawsze lizą komórki gospodarza i uwolnieniem potomstwa 
fagowego.  Drugą  grupę  bakteriofagów  stanowią  fagi  łagodne,  które  w  zależności  od 
warunków wzrostu komórek gospodarza, mogą wybrać pomiędzy cyklem litycznym a cyklem 
lizogenicznym,  podczas  którego  dochodzi  do  integracji  genomu  faga  z  chromosomem 
bakteryjnym  w  formie  profaga.  Profag  jest  przekazywany  do  komórek  potomnych  i  w 
określonych  warunkach  może  rozpocząć  cykl  lityczny,  prowadzący  do  lizy  komórki 
gospodarza.  

Typowy cykl infekcyjny bakteriofaga T4 kończy się tzw. lizą od wewnątrz (LI, ang. 

lysis  from  within),  która  prowadzi  do  uwolnienia  od  100  do  200  fagów  potomnych  w  25-30 
min po infekcji, jeśli bakterie są hodowane w 37°C w bogatej pożywce. W procesie tym biorą 
udział  dwa  główne  białka:  holina  T  i  endolizyna  E  o  aktywności  lizozymu.  Endolizyna  E 
akumuluje się w cytoplazmie, natomiast holina T jest umiejscowiona w błonie wewnętrznej. 
W odpowiednim momencie holina T oligomeryzuje, tworząc pory, przez które endolizyna E 
przedostaje  się  do  periplazmy  i  trawi  ścianę  komórkową.  Powoduje  to  lizę  komórki 
gospodarza  i  uwolnienie  potomstwa  fagowego.  Jeśli  bakteriofag  T4  zakazi  bakterie,  które 
rosną  bardzo  wolno  albo  wcale,  to  hamuje  swój  cykl  rozwojowy  do  momentu,  aż  komórki 
bakteryjne  zaczną  się  dzielić.  Dopiero  wtedy  kontynuuje  swój  rozwój  i  następuje  liza 
komórek  gospodarza.  Mechanizm  ten  nazwano  pseudolizogenią.  Jest  to  jeden  z  procesów 
umożliwiających  opóźnienie  i  dostosowanie  czasu  lizy  do  warunków  wzrostu  komórek 
gospodarza.  

Kolejnym  przystosowaniem  jest  inhibicja  lizy  (LIN,  lysis  inhibition).  Polega  ona  na 

tym, że jeśli po 3 minutach (lub więcej) od rozpoczęcia cyklu rozwojowego faga T4, dojdzie 
do adsorpcji kolejnych fagów T4 do tej samej bakterii, następuje przesunięcie momentu lizy 
nawet o kilka godzin. W tym czasie tworzą się potomne cząstki fagowe, co powoduje, oprócz 
opóźnienia lizy w czasie również wzrost plonu fagowego z 100-200 wirionów do nawet 1000. 
Do  indukcji  LIN  niezbędne  jest  funkcjonalne  białko  RI,  będące  antyholiną,  które 
oddziaływuje  bezpośrednio  z  holiną  T,  uniemożliwiając  otwarcie  porów  w  błonie 
wewnętrznej  i  przejście  endolizyny  E  z  cytoplazmy  do  periplazmy,  dzięki  czemu  chroni 
ś

cianę  komórkową  przed  trawieniem  i  blokuje  lizę.  Białko  RI  zbudowane  jest  z  97 

aminokwasów, a jego masa wynosi 11,1 kDa. Uważa się, ze domena N-końcowa zawiera 16 
aminokwasowy  peptyd  sygnałowy,  odpowiadający  za  transport  RI  do  periplazmy,  który 
prawdopodobnie  ulega  odcięciu  między  24  a  25  aminokwasem.  Domena  C-końcowa  pełni 
funkcję  antyholiny.  Kolejnym  białkiem  biorącym  udział  w  LIN  jest  białko  RIII  o  masie  9,3 
kDa, zbudowane z 82 aminokwasów. Występuje w cytoplazmie i prawdopodobnie stabilizuje 
oddziaływania  białka  RI  z  holiną  T  przez  oddziaływanie  z  cytoplazmatyczną  N-końcową 
domeną  holiny  T.  Transkrypcja  genów  rI  (koduje  białko  RI)  oraz  rIII  (koduje  białko  RIII) 
zachodzi z wczesnych i późnych promotorów, genu t (koduje holinę T) z promotora późnego, 
a genu e (koduje endolizynę E)- mimo obecności promotora wczesnego i późnego- efektywna 
translacja zachodzi tylko na bazie transkryptu z promotora późnego. Z wczesnego transkryptu 
nie dochodzi do translacji, ponieważ jest zablokowana przez strukturę szpilki, powstającą na 
końcu 5’ tego transkryptu.  

Nadal  nieznany  jest  sygnał  powodujący  inhibicję  lizy,  jak  i  sygnał  powodujący 

synchroniczny  zanik  LIN  (LIN  collapse),  co  prowadzi  do  równoczesnej  lizy  zakażonych 
komórek bakteryjnych. 

Mechanizm  LIN  chroni  potomstwo  fagowe  przed  zakażeniem  bakterii  już 

zainfekowanych  innym  fagiem  T4.  Adsorpcja  nowego  bakteriofaga  T4  do  powierzchni 
zainfekowanej komórki jest dla niego samobójstwem, ponieważ jego DNA jest uwalniany do 
przestrzeni periplazmatycznej i tam degradowany przez nukleazy.  

background image

Jest  to  strategia  ekologiczna,  przypominająca  „zmysł  zagęszczenia”  bakterii,  która 

daje  najkorzystniejszy  efekt  dla  całej  populacji  bakteriofagów  T4,  szczególnie  w  warunkach 
naturalnego występowania, tj. w jelicie ssaków, gdzie prawdopodobieństwo adsorpcji do już 
zakażonej bakterii jest duże. 

Doświadczenie  będzie  polegało  na  porównaniu  profilu  lizy  i  określeniu  czasu  lizy 

hodowli bakteryjnej szczepu E. coli MG1655 po zakażeniu fagiem T4D (wt) lub T4rI (fag T4 
z mutacja w genie rI). 

 

 
Materiały: 
- szczep E. coli MG1655, - hodowla nocna 
- lizat faga T4D (wt) i T4rI (mutacja w genie rI) ( przygotowany wcześniej), 
- pożywka LB, 
 
Wyposażenie: 
- wytrząsarka 
- spektrofotometr 
- stoper 
 
Wykonanie: 

1.

 

Odmłodzić hodowlę nocną szczepu MG1655 w 30 ml pożywki LB (1:50) 

2.

 

Hodować z wytrząsaniem w 37°C do OD

600

=0,1 

3.

 

Dodać do hodowli bakteryjnej lizat faga T4D lub T4rI do m.o.i.=1 i włączyć stoper. 

4.

 

Co  10  min  przez  2h  pobierać  1ml  hodowli  i  mierzyć  gęstość  optyczną  bakterii  przy 
OD

600

. Uzyskane wartości zapisać i umieścić na wykresie. 

 
Zagadnienia do samodzielnego przygotowania: 

1.

 

Budowa faga T4 i funkcje poszczególnych elementów budowy. 

2.

 

Cechy charakterystyczne genomu faga T4 i jego replikacji. 

3.

 

Gospodarze faga T4. 

4.

 

Rodzaje transkryptów faga T4 i modyfikacje polimerazy RNA E. coli. 

5.

 

Etapy infekcji bakterii przez faga T4. 

6.

 

Przebieg cyklu litycznego. 

7.

 

Definicje  pojęć:  inhibicja  lizy,  liza  od  wewnątrz,  liza  z  zewnątrz,  pseudolizogenia, 
lizogenia. 

8.

 

Liczenia  miana  faga  (PFU-  plague  forming  units)  oraz  M.O.I  (multiplicity  of 
infection). 

9.

 

Zadania obliczeniowe, ile komórek bakteryjnych znajduje się w hodowli o OD

600

=0,1 

w objętości 1ml? 

 

Literatura obowiązkowa: 

1.

 

Figura  Grzegorz,  Budynek  Paulina,  Dąbrowska  Krystyna,  Bakteriofag  T4: 
molekularne aspekty infekcji komórki bakteryjnej, rola białek kapsydowych. 

 

Publikacja jest dostępna na stronie: http://www.phmd.pl/fulltxt.php?ICID=910880

 

 
Proszę  o  przyniesienie  kalkulatorów  oraz  papieru  milimetrowego.  Korzystanie                      
z  kalkulatorów  w  telefonie  komórkowym  będzie  zabronione.  Przypominam  również                
o konieczności posiadania fartucha.