background image

FILTRACJA ŻELOWA, CHROMATOGRAFIA JONWYMIENNA, 

CHROMATOGRAFIA ODDZIAŁYWAŃ HYDROFOBOWYCH, 

CHROMATOGRAFIA POWINOWACTWA

Karolina Boik

Małgorzata Gałdyszyńska

Marta Owczarek

background image

Czym jest?

Faza stacjonarna

Faza ruchoma

background image

Wykorzystuje różną wielkość cząsteczek

Stosowane żele: dekstran, aragoza lub poliakryloamid 
(typowa średnica ziaren 100µm=0,1mm).

Mieszaninę białek w 

małej objętości nakłada 

się na kolumnę 

wypełnioną porowatymi 

ziarnami żelu. Duże 

białka wypływają 

wcześniej od małych, 

ponieważ nie mogą 

wniknąć do wnętrza 

ziaren żelu.

background image
background image

Wykorzystuje różnicę w ładunku wypadkowym odmiennych 
cząsteczek

background image

Etapy eksperymentów 

jonowymiennych

1.Równoważenie

2.Aplikacja i oczyszczanie

3.Eluacja

4.Regeneracja

background image

Ogólna charakterystyka

• Oddziaływania 

elektrostatyczne

•  Prawo Coulomba

Wartość siły zależy od:
1.

Wartości wypadkowego 

powierzczniowego ładunku 

biomolekuły oddziałującej 

z gr. funkcyjnymi złoża

2.

Gęstości ładunku 

jonowymieniacza

3.

Siły jonowej środowiska

4.

Rodzaju jonów obecnych w 

środowisku

background image

Siła jonowa

Rodzaj jonu lub jonów wypierających

Wartość pH

Rola w procesie retencji białek na 
jonowymiennych kolumnach 
chromatograficznych.

background image

Wartość pH przy której wypadkowy ładunek 

cząsteczki białka wynosi zero.

pH<pI uprotonowanie grup aminowych   

polikation

pH>pI odczepienie protonów grupy 

karboksylowej   polianion

background image

Oddziaływania różnych białek ze złożem 
jonowymiennym są zróżnicowane, wynika 
to z niewielkich zmian ładunków na 
powierzchni cząsteczki białek.

W roztworze o pH=pI, wypadkowy ładunek 
białka wynosi 0, lecz różna lokalizacja 
zjonizowanych reszt aminokwasowych 
wewnątrz polipeptydu może wywołać 
różnice w potencjale elektostatycznym na 
jego powierzchni

background image

Wąski zakres siły jonowej, powyżej której 
ma miejsce desorpcja wszystkich białek ze 
złoża chromatograficznego powoduje 
powszechne polecanie stosowania 
gradientu elucyjnego (0,5 mol/l lub 1mol/l 
stężenie soli) w celu efektywnego 
rozdzielenia mieszaniny białek.

background image

Dość duży problem

Należy eksperymentalnie określić 
specyficzność kationów i anionów względem 
izolowanego białka

Porównanie czasów retencji tego białka 
uzyskanych podczas jego elucji roztworami 
zawierającymi różne przeciwjony.

background image

Słaby anionit

Silny anionit

Słaby kationit

Silny kationit

Pojęcie silny/słaby oznacza jedynie 

wpływ pH na stan jonizacji grup 
funkcyjnych.

background image

Uniwersalne złoże chromatograficzne 

stosowane w chromatografii 

jonowymiennej

Charakteryzuje się wysoką selektywnością

Katonit zawierający sulfopropylowe grupy 

funkcyjne

Wydajny rozdział białek o charakterze 

zarówno zasadowym i 

obojetnym(trypsynogen, cytochrom c, 

lizozym), jak i o charakterze kwasowym 

(oksydaza łuszczowa, beta-amylaza)

background image

Ważny czynnik określający retencję białek 
na jonowymiennych kolumnach 
chromatograficznych

Obok siły jonowej buforu

Zaleca się stosować rozpuszczalniki 
organiczne (20%) aby zredukować 
oddziaływania hydrofobowe.

background image

Słabe (LiCl, NaF)

Pośrednie NH4Cl)

Silne (NaBr, MgCl2)

Preferowane pośrednie w celu uzyskania 
wydajnego procesu oczyszczenia białek.

background image

Hydrfobic Interaction Chromatography, HIC

background image

HIC polega na indukowaniu 

interakcji (wysoką siłą 

jonową fazy ruchomej) 

pomiędzy powierzchnią 

białka a słabo hydrofobowym 

ligandem złoża

Niedenaturujące warunki w 

trakcie elucji pozwalają 

zachować strukturę 

trzeciorzędową białka

background image

Ligand fazy stałej (złoże krzemionkowe) 
powinien być dobierany pod kątem 
rozdzielanych białek

Siła adsorpcji białek wzrasta zgodnie z 
kolejnością ligandów złoża:

Hydroksypropyl <propyl <benzyl <izopropyl 
<fenyl <pentyl

background image

Sorpcja białek zależy od charakteru 
liotropowego jonów fazy ruchomej 
(warunkujących precypitację)
i ich 
stężenia

Przy doborze soli należy się kierować 
także jej właściwościami fizycznymi i 
chemicznymi

Charakter liotropowy soli zmniejsza się 
zgodnie z kolejnością ligandów:

Na

2

SO

4

 > K

2

SO

4

 > (NH

4

)

2

SO

4

 > NaCl > NH

4

Cl > 

NaBr > NaSCN

background image

Wartość pH wpływa na jonizację grup 
aminokwasowych, która to z kolei wpływa 
na siłę oddziaływań hydrofobowych. Grupy 
te posiadając ładunek wiążą cząstki wody, 
co jest równoznaczne ze zwiększeniem 
hydrofilności białka. Gdy ładunek 
wypadkowy spada, wzrasta siła adsorpcji 
białek do złoża.

Dodanie do fazy mobilnej rozpuszczalnika 
organicznego sprzyja desorpcji białek.

background image

1. Równoważenie fazy stacjonarnej do 
pożądanych startowych warunków (poprzez 
dodawanie odpowiedniej soli do fazy 
mobilnej)

2. Dodawanie próbki i wymywanie 
Celem w tym etapie jest 
wiązanie cząsteczek docelowych i 
wypłukanie całego niezwiązanego 
materiału. Wiązanie jest promowane przez 
umiarkowanie wysokie stężenie soli.

background image

3. Elucja cząstki uwalniane są z 
hydrofobowej powierzchni przez zmianę 
składu buforu. Najczęstszą drogą jest 
obniżanie gradientu stężenia soli w buforze

4. Regeneracja usuwanie wszystkich 
molekuł wciąż związanych. Zapewnia to 
pełną zdolność fazy stacjonarnej i 
dostępność do następnego użycia.

background image

http://www.gelifesciences.com/aptrix/upp01
077.nsf/AttachmentsByTitle/HIC/$FILE/GE_Hy
drophobic+Interaction.swf

GE_Hydrophobic+Interaction.swf

background image
background image

Reversed- Phase Chromatography, RPC

background image

Podobnie jak HIC wykorzystuje 
oddziaływania hydrofobowe między cząstką 
białka a ligandem hydrofobowej fazy stałej, 
siła oddziaływań jest jednak większa (ligand 
jest bardziej hydrofobowy).

Faza mobilna używana w wymywaniu w 
wielu przypadkach niszczy strukturę 
trzeciorzędową białka (tracą aktywność)

background image

Najczęściej stosowane- wypełnienie 
siloksanowe (faza związana typu Si-O-Si-C) 
z podstawnikiem C

8

-C

18

.

Długość łańcucha dobierana jest do 

substancji rozdzielanej, przy dłuższych 
ligandach i w obecności denaturującej fazy 
ruchomej może dojść do nieodwracalnej 
adsorpcji białka do złoża.

background image

acetonitryl (preferowany, oprócz 

rozdzielania protein o charakterze 

silnie hydrofobowym)

izopropanol

background image

1.

T – wzrost wydajności 

rozdziału w temp 20-60°C 

2.

pH- niskie przyczynia się 

do denaturacji białek, co 

zwiększa efektywność 

rozdziału 

wysokocząsteczkowych i 

hydrofobowych białek

3.

Związki chaotropowe- (np. 

mocznik, chlorowodorek 

guanidyny) denaturują i 

rozpuszczają białka, 

zwiększają wydajność i 

efektywność rozdzielania

1.

Rybonukleza, 
Papaina, 
Syntetyczne 
peptydy, Kolagen

2.

Papaina, 
Cytochrom C

3.

Glikopeptyd

background image

Ion-pairing środki, są często stosowane w RPC 

do blokowania ładunku przez co ładunek 
cząsteczek próbki jest mniej hydrofobowy.

Kwas fosforowy- powszechnie stosowany w RP-
HPLC, względnie słaby odczynnik typu ion-pairing

Kwas trifluorooctowy (TFA)- pośrednie właściwości 
ion-pairing

Kwas mrówkowy- zalecany do stosowania dla 
białek trudno rozpuszczalnych, kiedy to TFA jest 
nieskuteczne

background image

1. Równoważenie-kolumna 

hydrofobowa jest 

przygotowywana poprzez 

zastosowanie specyficznego 

buforu próbki; 

2. Dodawanie próbki i 

wymywanie- białka próbki 

są nanoszone na kolumnę. 

Białka w mieszaninie które 

mają wysoki procent 

eksponowanych 

hydrofobowych reszt 

aminokwasów będą 

absorbowane do 

hydrofobowej fazy 

stacjonarnej. Inne białka w 

mieszaninie będą wymyte; 

background image

3. Elucja- Najczęstszym sposobem na to 

jest użycie gradientu, który powoli zwiększa 

hydrofobowość za pomocą organicznego 

rozpuszczalnika. Kolejność, w której białka 

są desorbowane jest zazwyczaj relatywna 

do liczby zewnętrznych reszt 

hydrofobowych każdego białka;

 4. regeneracja- Ten etap polega na 

zmyciu pozostałych białek z fazy 

stacjonarnej i powrót do warunków, jakie 

były na początku procesu. 

4

background image

http://www.gelifesciences.com/aptrix/upp0
1077.nsf/AttachmentsByTitle/RPC/$FILE/GE_
Reversed+Phase.swf

GE_Reversed+Phase (1).swf

background image
background image

Jedna z wielu technik chromatograficznych

Unikatowa – wykorzystuje specyficzne 
powinowactwo dwóch substancji 
biologicznie czynnych

Zmniejszona liczba procedur

Wyodrębnienie białek – zwłaszcza 
enzymatycznych

Użyteczna przy białkach których 
oczyszczenie jest trudne lub niemożliwe.

background image

ziarno z 
kowalencyjnie 
związanym 
substratem

związana 
cząsteczka 
białka

inne nie wiązane 
białka

background image

bisorbent

Ligand

Specyficznoś

ć

NAD, NADP

Dehydrogenaz

y

Białko G

Przeciwciała

Arginina

Fibronektyna, 

protrombina

Heparyna

Lipoproteiny 

background image

W tej chromatografii duże znaczenie ma 

nośnik, który jest stosowany. Wypełniacz 
kolumn powinien mieć następujące 
właściwości:

Hydrofilowość

Strukturę makroporowatą

Sztywność struktury

Obojętność chemiczną

Stabilność chemiczną 

background image

NOŚNIK

NIEAKTYWOWANY

AKTYWOWANY

może być 
przystosowan
y do celów 
chromatografi
i we własnym 
zakresie

spotykana w 
handlu, obejmuje 
nośniki specjalnie 
przygotowane do 
wiązania z 
ligandem

background image

Aktywność bisorbentu można znacznie 

podwyższyć przez zmianę odległości miedzy 

ligandem i nośnikiem

Długość tego wiązania ma 

znaczenie dla małych ligandów

Duży ligand wiązany z małym białkiem nie 

wymaga takiej grupy dystansowej

Przy dużym białku obecność takiej grupy jest 

wskazana

Grupy takie eliminują efekty steryczne nośnika

background image

PRZYŁĄCZANIE LIGANDU

Należy zwrócić uwagę na efekty steryczne i 
grupę dystansową

Stężenie ligandu

Wielkość ligandu

stabilność

USUNIĘCIE NADMIARU LIGANDU 

Tris lub etanoloamina

Kwas octowy

PRZEMYCIE BUFOREM

background image

Na tak przygotowaną kolumnę możemy 
nałożyć próbkę

Białka są rozpuszczone w buforze 
fosforanowym lub w 0,1-0,2M Tris

Jest to zazwyczaj też bufor elucyjny

Obecność 0,1-0,5M NaCl jest wskazana w 
buforze elucyjnym

background image

Jeden z rodzajów chromatografii 
powinowactwa

Szybkie i wydajne oczyszczanie białek

Mechanizm opiera się na oddziaływaniach 
pomiędzy grupami funkcyjnymi 
aminokwasów (-OH, -NH

2

, -SH) i 

immobilizowanym jonem metalu.

Znaczenie niektórych aminokwasów

Zastosowanie tej techniki do frakcjonowania 
białek

background image
background image

Najczęstsze wypełniacze to:

Agaroza

Krzemionka 

Związki polimerowe o charakterze 
hydrofilowym

Do nich przyłączone są

  związki chelatujące

background image

IDA 

–kwas iminodioctowy

TED 

–tris(karboksymetylo)etyleno-diamina

NTA 

–kwas nitrylotrioctowy

W tej chromatografii ważny jest też 
dobór metalu. Najczęściej stosowane 
to: Cu(II),Ni(II), Ca(II), Zn(II), Fe(II), 
Fe(III), a także Al(III), Ga(III), In(III), 
Tl(III)

background image

Możliwość usunięcia chelatowanego metalu z 
kolumny i zastąpienie go innym wyróżnia tą 
chromatografię spośród innych chromatografii 
powinowactwa. Usunięcie tego metalu 
zachodzi przy użyciu EDTA 

–kwas 

etylenodiaminotetraoctowy

background image

Selektywność wiązania białek z jonami 

metali zależy od pH fazy ruchomej

Mapy retencji w celu określenia 

optymalnego pH

Dodanie związku adsorbującego do 

koordynacyjnego miejsca na powierzchni 

białka lub substancji konkurujących z 

białkami

pH=7

pH>7

pH<7

Ni(II) może 
preferować 
siarkę 
cysteiny i 
azot 
histydyny

Fe(III) ma 
tendencję 
do wiązania 
się z siarką i 
z tlenem 
grup -COOH

background image

Stosuje się roztwory wodne zawierające 
sole, związki powierzchniowo czynne, 
mocznik, rozpuszczalniki organiczne

Obecność NaCl w fazie ruchomej powoduje 
wzrost adsorpcji i selektywności

Rozpuszczalniki organiczne wykazują 
właściwości wzmacniające silne 
oddziaływania i osłabiające słabe

background image

Białko

Metal

Kolagenaza

Zn(II)

Fibrynogen ludzki

Zn(II)

Somatotropina

Cu(II)

Perforyna

Co(II)

Białka wyizolowane techniką IMAC

background image

Document Outline