background image

 

 

Fermentacyjne technologie

wytwarzania enzymów i białek 

terapeutycznych wysokiej wartości

background image

 

 

Porównanie  cech  preparatów  enzymatycznych  o  niskiej  czystości, 

produkowanych  w  dużych  ilościach  i  preparatów  o  wysokim  stopniu 

oczyszczenia 

 
Enzymy  do  celów  technologicznych, 

wytwarzane w dużych ilościach (bulk) 

Enzymy wysokiej czystości 

 

Niewielki  koszt  jednostkowy,  cena 

kalkulowana na jednostki masy 

 

Surowe  preparaty,  często  poniżej  10% 

białka 

Obecność innych enzymów 

 

Preparaty  otrzymane  w  wyniku  suszenia 

rozpyłowego lub stężone roztwory 

Brak stabilizatorów 

Niewiele etapów oczyszczania 

 

Próbki dostępne nieodpłatnie 

Minimalne zamówienie 1-2 kg 

 

Wysoki 

koszt 

jednostkowy, 

cena 

kalkulowana  na  jednostki  aktywności 

enzymu 

Wysoka czystość, często powyżej 90% 

 

Inne enzymy nieobecne, lub ich obecność 

określona ilościowo 

Liofilizaty  lub  zawiesiny  w  roztworze 

siarczanu amonu 

Obecne stabilizatory 

Wiele  etapów  oczyszczania,  w  tym 

techniki chromatograficzne 

Brak takich próbek 

Szeroki 

zakres 

dostępnych 

ilości 

(poczynając od bardzo niewielkich) 

 

Produkcja enzymów

background image

 

 

Warunki wytwarzania enzymu rekombinowanego

1. Producent bakteryjny– zwykle szczep E. coli zawierający plazmid 
      kodujący enzym w wektorze z markerem oporności na antybiotyk 
      i obszar induktorowy.

Fermentacja okresowa z zasilaniem. Wzrost początkowy w pożywce

      minimalnej (glukoza + ekstrakt drożdżowy + sole + antybiotyk).
      W fazie początkowej wzrostu dodawanie składników odżywczych
      w kontrolowany sposób. Źródło azotu – sole amonowe, mocznik.
      Po osiągnięciu fazy intensywnego wzrostu – dodanie induktora.

Proces trwający 24 – 48 h w temperaturze 24 – 28 C.

Osiąga się do 50% ogólnej puli białek, z wydajnością 10 – 15 g/L

2.   Alternatywni producenci – drożdże (S. cerevisiae, Pichia pastoris),
      grzyby – Aspergillus, Fusarium
. Gen zintegrowany z chromosomalnym 
      DNA + efektywny promotor. Pożywki z tanimi źródłami węgla i azotu.
      Fermentacja 4 – 8 dni. Enzymy często wydzielane poza komórkę,
      co obniża koszty izolacji.

background image

 

 

Schemat technologiczny wytwarzania enzymu

background image

 

 

Przykłady enzymów stosowanych w diagnostyce

Enzym

Źródło (oryginalne)

Stosowany do oznaczania

----------------------------------------------------------------------------------------------------------------
Oksydaza cholesterolowa   Nocardia erythropolis

Cholesterol

    lub Brevibacterium spp.

Kreatynaza

    Pseudomonas spp.

Kreatyna

Kreatyninaza

    j.w.

Kreatynina

-galaktozydaza

    E. coli

jony Na

+

, ELISA

Oksydaza glukozowa     Aspergillus niger

Glukoza

Dehydrogenaza Glc-6-P

    Leuconostoc mesenteroides

Glukoza

-glukozydaza

    S. cerevisiae

aktywność -amylazy

Oksydaza glicerolo-3-P

    Aerococcus viridians

Triacyloglicerole

Heksokinaza

    S. cerevisiae

Glukoza

Peroksydaza

    Chrzan

Enzym wskaźnikowy,
testy ELISA

Oksydaza pirogronianowa  Pediococcus spp.

Pirogronian, transami-

nazy

Oksydaza kwasu 
moczowego

    Arthrobacter protopharmiae

Kwas moczowy

Ureaza

    Klebsiella aerogenes

Mocznik

    

background image

 

 

Białka rekombinowane terapeutyczne

Białko

Leczona choroba

Rok zaakceptowania

------------------------------------------------------------------------------------------------------------------
Insulina

Cukrzyca

1982

Ludzki hormon wzrostu

Karzełkowatość

1985

Interferon alfa

Wirusowe zapalenie wątroby

niektóre nowotwory

1986

Szczepionka przeciwko wiru-
sowemu zap. wątroby typu B

Zapobieganie WZW typu B 1986

Aktywator plazminogenu

Zawał serca, zator naczyniowy

1987

Erytropoetyna

Anemia związana z niewydolnoś-

cią nerek

1989

Interferon gamma

Chroniczna granulomatoza 1990

Czynnik stymulujący granulocyty Neutropenia, stany po przesz-

czepach szpiku

1991

Czynnik krzepliwości VIII

Hemofilia A

1992

Interferon beta

Stwardnienie rozsiane

1993

DNaza

Zwłóknienie torbielowate

1994

Glukocerebrozydaza

Choroba Gauchera

1994

Czynnik krzepliwości IX

Choroba Christmasa

1997

Interleukina-10

Zapobieganie trombocytopenii

1997

background image

 

 

 

Białka, które są glikoproteinami nie mogą być wytwarzane
w komórkach bakteryjnych. Komórki grzybów wytwarzają 
glikoproteiny o innej budowie niż komórki ssacze.

background image

 

 

Pierwsze białko terapeutyczne wytwarzane 

przez zwierzę transgeniczne 

Atryn, pierwszy lek pochodzący od zmodyfikowanego 
genetycznie zwierzęcia został dopuszczony do użytku 
w Europie przez Europejską Agencję do spraw Leków 
(EMEA)  w roku 2006.  
Atryn jest uzyskiwany z mleka genetycznie 
zmodyfikowanych kóz, które mają gen kodujący 
antyrombinę – białko hamujące patologiczne 
krzepnięcie krwi. 
Niedobór antytrombiny – choroba o podłożu 
genetycznym (1 raz na 5 tys. osób). 

Jedna koza może zastąpić 90 000 ludzkich dawców krwi.

background image

 

 

 

 

Naturacja białek z ciał inkluzyjnych

1. Liza komórek; 2. Wydzielenie ciał inkluzyjnych poprzez wirowanie; 3. Rozpuszczenie w
roztworze 6-8 M mocznika (+ mieszania zredukowanego i utlenionego glutationu, w razie 
potrzeby); 4. Powolne usuwanie czynnika denaturującego – rozcieńczanie, dializa

Problem tworzenia
agregatów podczas
fałdowania białek

background image

 

 

Białka terapeutyczne rekombinowane I generacji

Insulina

Genentech, Eli Lilly

1. Osobna ekspresja łańcuchów A i B w E. coli jako białek fuzyjnych 

z  syntazą tryptofanową i -galaktozydazą;

2. Rozszczepienie bromocyjanem;
3. Połączenie łańcuchów przez chemiczną reoksydację

Novonordisk

Ekspresja proinsuliny w E. coli, potem usunięcie enzymatyczne

 

background image

 

 

Gensulin (BIOTON)

Konstrukcja genu: 

sekwencja kodująca Peptyd B-dipeptyd-Peptyd A-peptyd nośnikowy

Ekspresja w Escherichia coli

 

Produkt:

 

białko fuzyjne w ciałach inkluzyjnych

Etapy izolacji wstępnej:

 rozbicie komórek, izolacja ciał inkluzyjnych, naturacja

Półprodukt:

 prekursor z mostkami disiarczkowymi

Obróbka:

 rozcięcie hydrolityczne – oddzielenie peptydu nośnikowego oraz 

przecięcie wiązania peptydowego pomiędzy dipeptydem a peptydem A

Oczyszczanie:

 chromatografia kolumnowa

Dalsza obróbka:

 usunięcie dipeptydu przy użyciu karboksypeptydazy

Produkt:

 insulina identyczna z ludzką, o czystości około 95%

Dalsze oczyszczanie:

 HPLC, ekstrakcja, krystalizacja

Produkt:

 insulina identyczna z ludzką, o czystości ponad 99,9%

Białka terapeutyczne rekombinowane I generacji

 


Document Outline