ZESZYTY PROBLEMOWE POSTĘPÓW NAUK ROLNICZYCH 2009 z. 534: 151-161
WYKORZYSTANIE METODY in vitro
W GENERATYWNYM I WEGETATYWNYM
ROZMNAśANIU DERENIA JADALNEGO (Cornus mas L.)
Włodzimierz
Lech
, Ewa
Dziedzic
, Monika
Bieniasz
, Roman
Rduch
Katedra Sadownictwa i Pszczelnictwa, Uniwersytet Rolniczy im. H. Kołłątaja w Krakowie
Wstęp
W grupie mniej znanych gatunków roślin, które cieszą się obecnie zwiększonym
zainteresowaniem jest dereń jadalny
[K
AWECKI
,
B
IENIEK
2005].
Gatunek ten znany jest od
dawna, wg źródeł archeologicznych ślady derenia sprzed 10 000 lat p.n.e. znaleziono w
pobliŜu Urfy, na południu Turcji. W stanie naturalnym występuje w środkowej i
południowej Europie, na Kaukazie oraz w zachodniej Azji
[S
ENETA
1973].
Dereń jest dobrze przystosowany do niekorzystnych warunków środowiska
i jednocześnie mało podatny na choroby i szkodniki. Odporny na niskie temperatury,
polecany jest na wilgotne, Ŝyzne gleby, stanowiska słoneczne. Nadaje się na szpalery i
Ŝ
ywopłoty, jest miododajną rośliną, a drewno jest wykorzystywane w tokarstwie.
Owoce derenia jadalnego mogą być czerwone, róŜowe lub Ŝółte, okrągłego lub
wydłuŜonego kształtu. Średnia masa owocu waha się od 5-8 gramów. Pestka stanowi od
7,5 do 11,0% całkowitej masy owocu
[S
ENETA
1973]
. Owoce odznaczają się wysokimi
właściwościami leczniczymi i dietetycznymi
[G
ÜLÇIN
i in. 2005].
Zawartość cukrów
wynosi od 8,0 do 1,0%, kwasów organicznych od 1,3 do 1,9%, witaminy C waha się od
101 to 193 mg%. W skórce owoców zawartość antocyjanów wynosi od 670 do 850
mg%, podczas gdy w miąŜszu od 36 do 121 mg%. Wśród antocyjanów przewaŜa
cyjanidino-3-glukozyd, którego zawartość wynosi 223 mg w 100 g św.m. owocu
[P
ANTELIDIS
i in. 2007].
Owoce nadają się na róŜnego typu przetwory, dŜemy, nalewki.
Znany takŜe w medycynie ludowej dereń stosowany jest w celu obniŜenia gorączki, a
ostatnie badania wykazały równieŜ jego aktywność antybiotyczną w odniesieniu do
bakterii: Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa, Proteus vulgaris,
Micrococcus luteus
[D
ULGER
,
D
ONUZ
2004]
. Obecnie w wielu ośrodkach na świecie
prowadzone są systematyczne prace nad tworzeniem kolekcji, odbudową zasobów
genowych i selekcją wielkoowocowych odmian tego gatunku
[K
LIMIENKO
2004; E
RCÝSLÝ
2004; G
ÜLERYÜZ
i in. 1998].
RozmnaŜanie generatywne derenia, podobnie jak innych gatunków drzew
i krzewów owocowych, napotyka na duŜe trudności. Kiełkowanie nasion derenia po
samoistnym wysianiu następuje po 2 lub 3 latach, a otrzymane w ten sposób rośliny
zaczynają owocować dopiero po 20 latach. Przyczyną niekiełkowania nasion wielu
gatunków roślin zaraz po zbiorze są czynniki fizyczne i fizjologiczne. Łupina nasienna
moŜe być stwardniała i nie przepuszczać wody i gazów, moŜe teŜ zawierać inhibitory,
które hamują kiełkowanie nasion. Nasiona mogą cechować się fizjologicznym
bezwzględnym spoczynkiem wewnętrznym (płytkim, pośrednim lub głębokim). Ten
rodzaj spoczynku jest regulowany przez zarodek lub łupiny nasienne. Istnieją teŜ
W. Lech i inni
152
nasiona o podwójnym spoczynku, powodowanym zarówno przez łupiny nasienne, jak i
zarodek. Chcąc zmusić nasiona do kiełkowania przeprowadza się odpowiednie zabiegi,
które przyspieszają kiełkowanie
[R
EJMAN
, M
AKOSZ
1995]
. Najczęściej jest to stratyfikacja
ciepło-zimna. Stosuje się równieŜ skaryfikację, traktowanie nasion gorącą wodą,
działanie środkami chemicznymi (gibereliny, cytokininy, etylen, azotan potasu,
tiomocznik). Traktowanie stęŜonym kwasem siarkowym (5 min) nasion Cornus
capitata zwiększyło procent kiełkujących nasion i znacznie skróciło czas kiełkowania
[A
IRI
i in. 2005].
W przypadku rozmnaŜania wegetatywnego derenia dobre efekty moŜna uzyskać
przy wykorzystaniu sadzonek półzdrewniałych, wykonanych w drugiej połowie
czerwca, z zastosowaniem ukorzeniacza Rhizopon AA 1% lub 2% w podłoŜu z
mieszaniny torfu wysokiego i perlitu w stosunku objętościowym 1:1, pH w H
2
O - 5,0
[K
ORSZUN
,
K
OLASIŃSKI
2002].
MoŜliwa jest teŜ okulizacja na siewkach derenia oczkami z
juŜ owocujących drzew. Metoda ta często jest stosowana przy rozmnaŜaniu
szlachetnych odmian derenia.
Podejmowane są teŜ próby zastosowania kultur sterylnych w rozmnaŜaniu
derenia. Metoda otrzymywania siewek derenia w krótkim czasie, dzięki przełamaniu
spoczynku nasion w warunkach in vitro mogłaby znaleźć zastosowanie w produkcji
szkółkarskiej. Prowadzone dotychczas badania wskazują, Ŝe warunki in vitro
umoŜliwiają przełamanie spoczynku i kiełkowanie nasion wielu gatunków roślin.
Głęboki spoczynek zarodkowy nasion jabłoni został przełamany i stymulacja
kiełkowania izolowanych zarodków następowała w wyniku krótkotrwałego traktowania
ich cyjanowodorem (1 mM, 6 godz.)
[B
OGATEK
i in. 1991].
Ostatnio stwierdzono, Ŝe w
regulacji kiełkowania nasion róŜnych gatunków roślin bierze udział tlenek azotu.
Zastosowanie donorów tlenku azotu (S-nitrozo-N-acetylopenicyloaminy oraz
nitroprusydku sodu) wywołuje efekt podobny jak uŜycie cyjanowodoru
[G
NIAZDOWSKA
,
B
OGATEK
2007].
Szczegółowo opisana technologia rozmnaŜania w warunkach in vitro moŜe
znaleźć zastosowanie do otrzymywania wielkoowocowych odmian derenia, co
przyczyniłoby się do popularyzacji uprawy tego gatunku. Opracowano juŜ metodykę
regeneracji całych roślin z pąków bocznych w kulturze siewek Cornus florida L.
[K
AVERIAPPA
i in. 1997]
, jak równieŜ somatyczną embriogenezę i kiełkowanie zarodków
somatycznych
[T
RIGIANO
i in. 1989]
. Przykładem odmiany derenia jadalnego, dla której
została opracowana metodyka rozmnaŜania z wykorzystaniem kultur tkankowych, jest
odmiana ‘Macrocarpa’
[Ď
URKOVIČ
2008].
Materiał i metody
Kiełkowanie nasion derenia jadalnego na poŜywkach w warunkach in vitro
Z dojrzałych owoców derenia typu lokalnego wydobywano pestki, z których
usunięto resztki miąŜszu. Bardzo twardy endokarp przecinano w poprzek ostrym
narzędziem, a następnie wydobywano ostroŜnie nasiona. Nasiona poddano dezynfekcji
w 1% roztworze podchlorynu wapnia przez 5 min i kolejno kilkakrotnie przepłukano
wodą sterylną. Tak przygotowane nasiona wykładano na poŜywki w celu pobudzenia
ich do kiełkowania. Zastosowano poŜywki wykonane według składu mineralnego
poŜywki
M
URASHIGE
i
S
KOOG
[1962].
Zestalone 0,6% agarem poŜywki zawierały 3,0%
sacharozy oraz substancje wzrostowe o podanych kombinacjach i stęŜeniach (tab. 1).
Odczyn poŜywki ustalono na poziomie pH=5,7.
Tabela 1; Table 1
WYKORZYSTANIE METODY in vitro ...
153
Skład poŜywek do kiełkowania nasion derenia
Media composition for germination of cornelian cherry seeds
Lp.
No.
PoŜywka
Media
Rodzaj i stęŜenie substancji wzrostowych
Type and concentration of hormonal substances
1
Murashige i Skoog (1962)
Murashige and Skoog (1962)
0,2 mg
⋅
dm
-3
BA
2
0,2 mg
⋅
dm
-3
BA+0,5 mg
⋅
dm
-3
GA
3
3
0,2 mg
⋅
dm
-3
BA+5,0 mg
⋅
dm
-3
GA
3
Przy wykładaniu na poŜywki zastosowano dwa sposoby traktowania nasion.
Część nasion wykładano z nietkniętą łupiną nasienną, a u części delikatnie łupinę
nacinano. Doświadczenie załoŜono w czterech powtórzeniach, jedno powtórzenie
stanowiła jedna kolba, zawierająca cztery nasiona. Kolby z nasionami umieszczono w
fitotronie, w warunkach 16-godzinnego fotoperiodu przy oświetleniu 92,8
µ
mol
⋅
m
-2
⋅
s
-1
oraz w temperaturze 23 ±1
°
C. Obserwacje i pomiary prowadzone były po 7, 14, 21, 36
oraz 66 dniach od wyłoŜenia nasion na poŜywki.
Kultura pąków derenia w warunkach in vitro
Kultury dwóch odmian derenia jadalnego ‘Devin‘ oraz ‘Titus’ załoŜono
z pobranych jesienią oraz wiosną pąków kątowych. Po zdjęciu brązowych okryw pąki
poddano dezynfekcji, którą przeprowadzono według schematu: 70% alkohol - 1 min,
12% podchloryn wapnia - 10 min 3-krotne przemycie wodą sterylną, a następnie
krótkotrwałe przepłukanie 1% roztworem podchlorynu wapnia. Po dezynfekcji pąki
wyłoŜono na inicjującą poŜywkę
M
URASHIGE
i S
KOOG
[1962]
z dodatkiem IBA w stęŜeniu
0,1 mg
⋅
dm
-3
oraz BA w stęŜeniu 1,0 mg dm
-3
. Po uzyskaniu stabilnej kultury załoŜono
doświadczenie, mające na celu znalezienie właściwej poŜywki namnaŜającej dla pędów
derenia. Na tym etapie doświadczenia wykorzystano poŜywki sporządzone w oparciu o
skład poŜywki
L
LOYD
i
M
C
C
OWN
[1980].
Skład badanych poŜywek podano w tab. 2.
Tabela 2; Table 2
Skład poŜywek do namnoŜenia pędów derenia jadalnego
Media composition for multiplication of cornelian cherry shoots
Lp.
No.
PoŜywka
Media
Rodzaj i stęŜenie substancji wzrostowych
Type and concentration of hormonal substances
1
Lloyd i McCown (1980)
Lloyd and McCown (1980)
0,6 mg
⋅
dm
-3
BA+2% sacharozy; 0.6 mg
⋅
dm
-3
BA+2% saccharose
2
0,6 mg
⋅
dm
-3
BA+2% glukozy; 0.6 mg
⋅
dm
-3
BA+2% glucose
3
0,6 mg
⋅
dm
-3
BA+0,05 mg
⋅
dm
-3
IBA+2% sacharozy
0.6 mg
⋅
dm
-3
BA+0.05 mg
⋅
dm
-3
IBA+2% saccharose
4
0,6 mg
⋅
dm
-3
BA+0,05 mg
⋅
dm
-3
IBA+2% glukozy
0.6 mg
⋅
dm
-3
BA+0.05 mg
⋅
dm
-3
IBA+2% glucose
Odczyn poŜywek ustalono na poziomie pH=5,7; poŜywki zestalono 0,6% agarem.
Kolby z pędami utrzymywano w warunkach fotoperiodu 16 h/8 h, dzień/noc przy
oświetleniu 92,8
µ
mol
⋅
m
-2
⋅
s
-1
oraz w temperaturze 23 ±1
°
C. Obserwacje i pomiary
przeprowadzono pod koniec kaŜdego z czterech pasaŜy, wykonywanych w
czterotygodniowych odstępach. Doświadczenie załoŜono w pięciu powtórzeniach
(kolbach), w kolbie wysadzano pięć sztuk pędów.
Wyniki uzyskane w kolejnych etapach doświadczenia poddane zostały obli-
W. Lech i inni
154
czeniom statystycznym w oparciu o analizę wariancji, z uwzględnieniem wielokrotnego
testu Duncana przy poziomie prawdopodobieństwa
α
=0,05.
Wyniki i dyskusja
Kiełkowanie nasion derenia jadalnego na poŜywkach w warunkach in vitro
Ś
rednie wymiary nasion wykładanych na poŜywki wynosiły 1,06 cm
×
0,3 cm.
Stwierdzono, Ŝe w zaleŜności od wielkości pestki znajdowało się w niej 1-3 nasion. Po
siedmiu dniach od wyłoŜenia nasion na poŜywki zaobserwowano róŜnice w tempie
kiełkowania zarodków, w zaleŜności od rodzaju poŜywki oraz sposobu traktowania
nasion (tab. 3).
Tabela 3; Table 3
Procent kiełkujących nasion derenia jadalnego z naciętą i nienaciętą okrywą nasienną
po 7, 14, 21, 36 oraz 66 dniach od wyłoŜenia na poŜywki
Percent of germinating cornelian cherry seeds with cut and non-cut coat 7, 14, 21, 36, 66 days
after placing on the media
Obiekt
Object
Dni od wyłoŜenia nasion na poŜywki
Days after placing of seeds on the media
7
14
21
36
66
Rodzaj i stęŜenie substancji wzrostowych w poŜywce
Type and concentration of hormonal substances
0,2 mg
⋅
dm
-3
BA
14,6 b
14,6 a
19,6 a
22,2 a
28,8 a
0,2 mg
⋅
dm
-3
BA+0,5 mg
⋅
dm
-3
GA
3
12,4 b
14,6 a
37,1 a
59,8 b
60,0 b
0,2 mg
⋅
dm
-3
BA+5,0 mg
⋅
dm
-3
GA
3
0,4 a
22,2 a
30,9 a
77,8 b
80,0 b
Sposób traktowania nasion; Method od seed treatment
Okrywa nienacięta; Non-cut seed coat
0,2 a
0,8 a
10,3 a
21,3 a
28,8 a
Okrywa nacięta; Cut seed coat
23,1 b
47,8 b
52,2 b
75,8 b
82,0 b
ś
rednie oznaczone tymi samymi literami nie róŜnią się statystycznie przy
α
=0,05; means followed by the
same letters do not differ at
α
=0.05
Nacięcie łupiny nasiennej spowodowało szybsze kiełkowanie zarodków na
poŜywce z mniejszą zawartością gibereliny oraz na poŜywce bez tego hormonu. Na
poŜywce z dodatkiem gibereliny w stęŜeniu 5,0 mg
⋅
dm
-3
kiełkowanie zarodków z
nasion z naciętą łupiną zaobserwowano po dalszych siedmiu dniach kultury. Po trzech
tygodniach od załoŜenia doświadczenia odnotowano kiełkowanie zarodków na
wszystkich poŜywkach dla obydwu sposobów traktowania nasion, z tym, Ŝe w
przypadku nasion z naciętą łupiną procent kiełkujących nasion był istotnie wyŜszy
(52,2%) w porównaniu do nasion z łupiną nienaciętą (10,3%). Po przeszło dwóch
miesiącach trwania doświadczenia stwierdzono, Ŝe zarówno nacięcie łupiny, jak i
dodatek gibereliny do poŜywki przyczyniło się do statystycznie większej liczby
kiełkujących zarodków. Nasiona, które zostały połoŜone bez nacinania łupiny na
poŜywkę pozbawioną gibereliny po dwóch miesiącach doświadczenia zamarły. W
efekcie stwierdzono, Ŝe dodatek gibereliny do poŜywek istotnie wpłynął na procent
kiełkujących nasion, niezaleŜnie od zastosowanego stęŜenia gibereliny.
SpostrzeŜenia dokonane w przeprowadzonym doświadczeniu, a dotyczące
korzystnego wpływu gibereliny na kiełkowanie zarodka, są zgodne z sugestiami
WYKORZYSTANIE METODY in vitro ...
155
B
EWLEY
’
A
[1997]
, który szeroko omawia znaczenie i rolę, jaką odgrywają gibereliny w
przełamywaniu spoczynku nasion. Wydaje się, Ŝe gibereliny nie są samodzielnie
zaangaŜowane w kontrolę spoczynku nasion, ale odgrywają waŜną rolę w podtrzymaniu
kiełkowania i działają w chwili, gdy spoczynek nasion powodowany przez ABA zostaje
przełamany. Współdziałanie ABA oraz giberelin moŜe być wzajemnie powiązane, o
czym świadczy fakt, Ŝe w mutantach Arabidopsis aba oraz do2, obniŜonemu
spoczynkowi nasion towarzyszy niŜsze zapotrzebowanie na gibereliny do kiełkowania
[L
ÉON
-K
LOOSTERZIEL
i in.
1996]
.
Tabela 4; Table 4
Cechy morfologiczne siewek derenia jadalnego uzyskanych po 66 dniach od wyłoŜenia nasion na
poŜywki w warunkach in vitro
Morphological features of cornelian cherry seedlings obtained 66 days after placing
the seeds on the media in in vitro conditions
Obiekt
Object
Wysokość
siewek (cm)
Height of
seedling (cm)
Długość korzenia
siewek (cm)
Length of seed-
ling root (cm)
Szerokość
liścia siewek
(cm); Width
of seedling
leaf (cm)
Długość liścia
siewek (cm)
Length of seed-
ling leaf (cm)
Rodzaj i stęŜenie substancji wzrostowych w poŜywce
Type and concentration of hormonal substances
0,2 mg
⋅
dm
-3
BA
2,4 a
0,3 a
0,6 n.s.
2,8 a
0,2 mg
⋅
dm
-3
BA+0,5 mg
⋅
dm
-3
GA
3
5,8 b
0,5 a
1,1 n.s.
5,4 ab
0,2 mg
⋅
dm
-3
BA+5,0 mg
⋅
dm
-3
GA
3
6,9 b
3,0 b
1,5 n.s.
7,9 b
Sposób traktowania nasion; Methods of seed treatment
Okrywa nienacięta
Non-cut seed coat
2,5 a
0,7 a
0,9 n.s.
4,2 a
Okrywa nacięta; Cut seed coat
7,7 b
1,9 b
1,2 n.s.
6,5 a
n.s.
zróŜnicowanie nieistotne przy
α
=0,05; differentiation non-significant at
α
=0.05
ś
rednie oznaczone tymi samymi literami nie róŜnią się statystycznie przy
α
=0,05; means followed by the
same letters do not differ at
α
=0.05
Stwierdzono istotne zróŜnicowanie w wysokości siewek uzyskanych z nasion z
nienaciętą i naciętą łupiną nasienną (tab. 4). Średnia wysokość siewek otrzymanych z
tych ostatnich nasion wynosiła 7,7 cm, podczas gdy średnia wysokość siewek z nasion,
na których łupina nie została nacięta - 2,5 cm. Na poŜywkach zawierających giberelinę
uzyskane siewki cechowały się istotnie większą wysokością w porównaniu do siewek z
nasion wyłoŜonych na poŜywkę bez gibereliny.
RównieŜ w długości korzeni siewek stwierdzono istotne zróŜnicowanie na
korzyść siewek z nasion z naciętą łupiną (średnia długość korzenia wynosiła 1,9 cm)
oraz poŜywki, zawierającej giberelinę w stęŜeniu 5,0 mg
⋅
dm
-3
(średnia długość korzenia
wynosiła 3,0 cm). Po dwóch miesiącach kultury siewki wytworzyły średnio 5-6 liści.
Liście siewek z poŜywek zawierających giberelinę odznaczały się statystycznie większą
długością, ale nie róŜniły się pod względem szerokości (tab. 4).
Kultury pąków derenia w warunkach in vitro
Wyniki dotyczące skuteczności zabiegu dezynfekcji pąków kątowych dwóch
odmian derenia jadalnego ‘Devin’ i ‘Titus’ zamieszczono w tabeli 5.
W. Lech i inni
156
Tabela 5; Table 5
Efektywność zabiegu odkaŜania pąków kątowych derenia jadalnego
Effectiveness of cornelian cherry axial buds sterilization
Obiekt
Object
Liczba pąków
poddanych odka-
Ŝ
aniu; Number of
sterilized buds
Procent pąków
zakaŜonych
Percent of infected
buds
Procent pąków
zamarłych
Percent of dead buds
Procent pąków
Ŝ
ywych
Percent of survived
buds
Termin pobrania pąków - jesień; Time of bud collecting - Autumn
Devin
24
41,7
41,6
16,7
Titus
33
6,1
84,8
9,1
Termin pobrania pąków - wiosna; Time of bud collecting - Spring
Devin
43
0
79,1
20,9
Titus
44
0
79,5
20,5
Tabela 6; Table 6
Liczba oraz długość pędu dwóch odmian derenia jadalnego
Number and length of two cultivars cornelian cherry shoots
Obiekt
Object
PoŜywki wg tabeli 2; Media according to Table 2.
1
2
3
4
ś
rednia
liczba
pędów
mean
number
of shoots
ś
rednia
długość
pędu
mean
length of
shoot
(cm)
ś
rednia
liczba
pędów
mean
number
of shoots
ś
rednia
długość
pędu
mean
length of
shoot
(cm)
ś
rednia
liczba
pędów
mean
number
of shoots
ś
rednia
długość
pędu
mean
length of
shoot
(cm)
ś
rednia
liczba
pędów
mean
number
of shoots
ś
rednia
długość
pędu
mean
length of
shoot
(cm)
Devin
3,8 a
2,6 a
4,0 a
2,6 a
4,3 ab
2,8 ab
4,8 b
3,1 b
Titus
4,6 b
2,8 a
4,7 b
2,7 a
4,3 ab
2,9 ab
3,8 a
2,7 a
ś
rednie oznaczone tymi samymi literami nie róŜnią się statystycznie przy
α
=0,05; means followed by the
same letters do not differ at
α
=0.05
Spośród dwóch terminów pobierania pąków i zakładania kultury derenia,
korzystniejszym okazał się termin wiosenny, ze względu na większy procent uzys-
kanych Ŝywych i zdrowych pąków odmiany ‘Devin’ (20,9%) oraz odmiany ‘Titus’
(20,5%), (tab. 5).
W etapie namnaŜania odmiany róŜniły się współczynnikiem namnoŜenia pędów
oraz reakcją na składy poŜywek (tab. 6).
Odmiana ‘Titus’ cechowała się wyŜszym współczynnikiem namnaŜania pędów
na poŜywkach nr 1 i 2, w porównaniu do odmiany ’Devin’. Współczynniki namnoŜenia
pędów odmiany ‘Titus’ wynosiły 1:4,6 na poŜywce nr 1 oraz 1:4,7 na poŜywce nr 2
(tab. 6). Na poŜywce nr 3 współczynniki namnoŜenia obu odmian były jednakowe,
natomiast na poŜywce nr 4 odmiana ‘Devin’ cechowała się istotnie większą liczbą
wytworzonych pędów. Uzyskane wyniki wskazują, Ŝe brak w poŜywce auksyny
wywiera korzystny wpływ na zdolność pobudzania pąków kątowych odmiany ‘Titus’
do wybijania w nowe pędy, natomiast dla odmiany ‘Devin’ dodatek do poŜywek
auksyny był korzystny.
WYKORZYSTANIE METODY in vitro ...
157
W badaniach
Ď
URKOVIČ
[2008]
dotyczących derenia jadalnego odmiany
‘Macrocarpa’ za najbardziej przydatną uznano poŜywkę
L
LOYD
i
M
C
C
OWN
[1980]
.
Kombinacja cytokininy BA w stęŜeniu 0,7 mg
⋅
dm
-3
oraz auksyny NAA w stęŜeniu 0,05
mg
⋅
dm
-3
okazała się najkorzystniejszą biorąc pod uwagę wysoki współczynnik
namnaŜania pędów wynoszący 1: 6,2, przy średniej długości pędów 1,55 cm. Tak
wysoki współczynnik namnoŜenia jest zadowalający i z punktu widzenia opłacalności
produkcji uzasadnia celowość tego rodzaju badań.
E
DSON
i in.
[1994]
przy namnaŜaniu
derenia ‘Ascona’
(Cornus nuttallii Audubon)
na poŜywce
L
LOYD
i
M
C
C
OWN
[1980]
uzyskał współczynnik namnoŜenia pędów 3,1 w
obecności w poŜywce cytokininy BA w stęŜeniu 1,0 mg
⋅
dm
-3
. W namnaŜaniu Cornus
florida spośród stosowanych siedmiu poŜywek o róŜnym składzie mineralnym
najkorzystniejszą okazała się poŜywka
L
LOYD
i M
C
C
OWN
[1980]
z dodatkiem BA w
stęŜeniu 0,5 mg
⋅
dm
-3
oraz IBA w stęŜeniu 1,0 mg
⋅
dm
-3
[D
ECLERCK
, K
ORBAN
1994].
W
innych badaniach dotyczących tego gatunku wysoki współczynnik namnoŜenia pędów
wynoszący od 1:5,5 do 1:6,0 został osiągnięty po zastosowaniu cytokininy BA w
stęŜeniu 1,0 mg
⋅
dm
-3
[K
AVERIAPPA
i in. 1997].
W przeprowadzonych badaniach rodzaj zastosowanego cukru (sacharoza,
glukoza) nie wywarł znaczącego wpływu na współczynnik namnoŜenia ani na długość
pędów (tab. 6).
Obserwacje te są zgodne z wynikami innych autorów
[B
ORKOWSKA
i in. 1994]
,
którzy wykazali dla wiśni odmiany ‘Łutówka’ podobny wzrost kultur pędowych na
poŜywce z sacharozą lub glukozą. Ci sami autorzy wykazali, Ŝe 2% stęŜenie cukru w
poŜywce, niezaleŜnie od rodzaju tego cukru, zabezpiecza zapotrzebowanie tkanek
roślinnych na źródło energii i tworzenie biomasy. Dodatkowa jednoprocentowa
zawartość cukru (w przypadku najczęściej stosowanego 3% stęŜenia cukru w poŜywce)
jest zuŜytkowywana na regulację ciśnienia osmotycznego. RównieŜ dla kilku odmian
Ŝ
urawiny i brusznicy wykazano korzystny wpływ 2% stęŜenia sacharozy w poŜywce, ze
względu na efektywność namnaŜania pędów
[D
EBNATH
2005].
Wyniki dotyczące długości pędów były porównywalne dla obydwu odmian
derenia na poŜywkach nr 1, 2 oraz 3 i jedynie na poŜywce nr 4 pędy odmiany ‘Devin’
były statystycznie dłuŜsze (3,1 cm) w porównaniu do odmiany ‘Titus’ (2,7 cm), (tab. 6).
W prezentowanych badaniach duŜy problem stanowiło występowanie objawów
„szklistości pędów” (tab. 7).
W najniŜszym nasileniu to zaburzenie fizjologiczne odnotowano na poŜywce nr 1
dla obydwu odmian (43,1% szklistych pędów odmiany ’Devin’ i 49,0% szklistych
pędów odmiany ‘Titus’) oraz na poŜywce nr 4 dla odmiany ‘Devin’ (44,0% szklistych
pędów), (tab. 7).
Tabela 7; Table 7
Procent pędów szklistych dwóch odmian derenia jadalnego
Percent of cornelian cherry vitrified shoots
Obiekt
Object
PoŜywki wg tabeli 2
Media according to Table 2
1
2
3
4
Devin
43,1
80,0
67,4
44,0
Titus
49,0
68,2
66,7
62,1
Prawdopodobną przyczyną tego zjawiska mógł być zbyt niski odczyn poŜywki
W. Lech i inni
158
wynoszący pH=5,7-5,8.
Ď
URKOVIČ
[2008]
w swoich badaniach nad odmianą
‘Macrocarpa’ uzyskał bardzo korzystny współczynnik namnoŜenia pędów wynoszący
1:6,6 po podniesieniu odczynu poŜywki do poziomu pH=6,2. Autor ten nie podaje
Ŝ
adnych informacji o występowaniu szklistości pędów.
Tabela 8; Table 8
Procent i wielkość kalusa u podstawy pędów derenia
Percent and size of callus at the base of cornelian cherry shoots
Obiekt
Object
PoŜywki wg tabeli 2
Media according to Table 2
1
2
3
4
a
b
c
a
b
c
a
b
c
a
b
c
Devin
69,5
26,3
4,2
85,0
15,0
0
75,8
22,1
2,1
78,9
20,0
1,1
Titus
67,8
23,4
8,8
60,0
34,2
5,8
71,6
23,1
5,3
67,4
24,2
8,4
Wielkość tkanki kalusa według skali, gdzie: a=
∅
1-2 mm, b=
∅
3-5 mm, c=
∅
6 mm i więcej; Size of callus
according to scale, where: a=
∅
1-2 mm, b=
∅
3-5 mm, c=
∅
6 mm and more
W trakcie namnaŜania obserwowano duŜą skłonność odmiany ‘Titus’ do
tworzenia na wszystkich poŜywkach u podstawy pędów duŜej masy kalusa (tab. 8).
Obecność obfitej tkanki kalusa często jest przyczyną pojawiania się pędów
przybyszowych z niezorganizowanej tkanki kalusa lub z liści, które mają bezpośredni
kontakt z poŜywką. O tym ostatnim zjawisku donosi w swojej pracy
Ď
URKOVIČ
[2008].
Zagadnienie powstawania pędów przybyszowych oraz konsekwencje tego zjawiska w
przypadku borówki wysokiej zostały szeroko i dogłębnie omówione przez
L
ITWIŃCZUKA
[2007].
Autor wskazuje, jak przebiega indukowanie tego typu niepoŜądanych pędów
oraz jakie związki hormonalne dodawane do poŜywek stymulują ten proces. Podkreśla
znaczenie prawidłowo przeprowadzanej analizy i eliminacji pędów przybyszowych w
trakcie procesu namnaŜania, aby uniknąć wprowadzania ich do dalszych etapów
produkcji roślin.
Wnioski
1.
Nacięcie łupiny nasiennej oraz dodanie gibereliny w stęŜeniu 0,5 lub 5,0 mg
⋅
dm
-3
przełamuje spoczynek bezwzględny nasion derenia jadalnego i ułatwia
kiełkowanie.
2.
PoŜywka Lloyd i McCown (1980) z dodatkiem BA w stęŜeniu 0,6 mg
⋅
dm
-3
indukuje namnaŜanie pędów derenia jadalnego w zadowalającym stopniu.
Literatura
A
IRI
S.,
R
AWAL
R.S.,
D
HAR
U. 2005.
Presowing treatment effects on germination of Cor-
nus capitata seeds. Seed Sci. and Technol. 33(1): 77-86.
B
EWLEY
J.D. 1997.
Seed germination and dormancy. The Plant Cell 9: 1055-1066.
B
OGATEK
R.,
D
ZIEWANOWSKA
K.,
L
EWAK
S. 1991.
Hydrogen cyanide and embryonal dor-
mancy in apple seeds. Physiol. Plant. 83: 417-421.
WYKORZYSTANIE METODY in vitro ...
159
B
ORKOWSKA
B.,
S
ZCZERBA
J.,
K
UBIK
M. 1994.
Gospodarka cukrami w kulturach pędowych
wiśni odm. Łutówka. I Ogólnopolska Konferencja „Zastosowanie kultur in vitro w
fizjologii roślin”. Kraków, 15-17 XII 1994: 11-17.
D
EBNATH
S.C. 2005.
Effect of carbon source and concentration on development of
lingonberry (Vaccinium vitis-idea L.) shoots cultivated in vitro from nodal explants. In
Vitro Cell. and Develop. Biol. Plant 41(2): 145-150.
D
ECLERCK
V.,
K
ORBAN
S.S. 1994.
Effects of source of macronutrients and plant growth
regulator concentrations on shoot proliferation of Cornus florida. Plant Cell, Tiss. and
Organ Cult. 38: 57-60.
D
ULGER
B.,
D
ONUZ
A. 2004.
Antimicrobial activity of some Turkish medicinal plants.
Pakistan J. of Biol. Sci. 7(9): 1559-1562.
Ď
URKOVIČ
J. 2008.
Micropropagation of mature Cornus mas ‘Macrocarpa’. Trees 22:
597-602.
E
DSON
J.L.,
W
ENNY
D.L.,
L
EEGE
-B
RUVEN
A.
1994.
Micropropagation of Pacific dogwood
Hort Science 29(11): 1231-1246.
E
RCÝSLÝ
S. 2004.
Cornelian cherry germplasm resources of Turkey. J. Fruit Ornam.
Plant Res. 92 Special ed. vol. 12: 87-92.
G
NIAZDOWSKA
A.,
B
OGATEK
R. 2007.
Regulacyjna rola tlenku azotu w kiełkowaniu na-
sion. Post. Biol. Kom. 34(3): 431-443.
G
ÜLÇIN
I.,
B
EYDEMIR
S.,
Ş
AT
G.,
K
ÜFREVIO
_
LU
Ö.I. 2005.
.
Evaluation of antioxidant activity
of cornelian cherry (Cornus mas L.). Acta Alimentaria 34: 193-202.
G
ÜLERYÜZ
M.,
B
OLAT
I.,
P
IRLAK
L. 1998.
Selection of table cornelian cherry (Cornus mas
L.) types in Çoruhv Valley. Tr. J. of Agriculture and Forestry 22: 357-364.
K
AVERIAPPA
K.M.,
P
HILLIPS
L.M.,
T
RIGIANO
R.N.
1997.
Micropropagation of flowering
dogwood (Comus florida) from seedlings. Plant Cell Reports 16: 485-489.
K
AWECKI
Z.,
B
IENIEK
A.
2005.
Cornelian cherry (Cornus mas L.) as a perspective or-
chard and ornamental plant. Zesz. Probl. Post. Nauk Rol. 507: 263-267.
K
LIMIENKO
S. 2004.
The cornelian cherry (Cornus mas L.): collection, preservation and
utilization of genetic resources. J. Fruit Ornam. Plant Res. 98 Special ed. 12: 93-98.
K
ORSZUN
S.,
K
OLASIŃSKI
M. 2002.
Alternatywna technologia rozmnaŜania derenia ja-
dalnego (Cornus mas L). Biulet. Ogrod. Botan. 11: 51-56.
L
ÉON
-K
LOOSTERZIEL
K.M.,
V
AN DE
B
UNT
G.A.,
Z
EEVAART
J.A.D.,
K
OORNNEEF
M. 1996.
Arabidopsis mutants with reduced seed dormancy. Plant Physiol. 110: 233-240.
L
ITWIŃCZUK
W. 2007.
RozmnaŜanie borówki wysokiej (Vaccinium corymbosum L.)
w kulturach in vitro. Wpływ mikrorozmnaŜania na wzrost i owocowanie krzewów.
Wydaw. Uniw. Rzeszowskiego, Rzeszów 2007. ISBN 978-83-7338-294-4.
L
LOYD
G.,
M
C
C
OWN
B. 1980.
Commercially feasible micropropagation of mountain
laurel Kalmia latifolia, by use of shoot-tip culture. Proc. Int. Plant. Prop. Soc. 30:
421-427.
M
URASHIGE
T.,
S
KOOG
F. 1962.
A revised medium for rapid growth and bioassays with
tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 473-497.
P
ANTELIDIS
G.E.,
V
ASILAKAKIS
M.,
M
ANGANARIS
G.A,
D
IAMANTIDIS
G
R
. 2007.
Antioxidant
capacity, phenol, anthocyanin and ascorbic acid contents in raspberries, blackberries,
red currants, gooseberries and cornelian cherries. Food Chemistry 102(3): 777-783.
R
EJMAN
A.,
M
AKOSZ
E.
1995.
Szkółkarstwo roślin sadowniczych. Plantpress, Kraków:
89-92.
W. Lech i inni
160
S
ENETA
W. 1973.
Dendrologia. PWN, Warszawa: 431-436.
T
RIGIANO
R.N.,
B
EATY
R.M.,
D
IETRICH
J.T. 1989.
Somatic embryogenesis and plantlet
regeneration in Cornus florida. Plant Cell Rep. 8: 270-273.
Słowa kluczowe:
giberelina, kultury in vitro, skaryfikacja, spoczynek nasion,
współczynnik namnoŜenia
Streszczenie
Metodę kultur tkankowych wykorzystano w generatywnym i wegetatywnym
namnaŜaniu derenia jadalnego. Poprzez wyłoŜenie nasion na poŜywki i zastosowanie
nacięcia łupiny nasiennej oraz dodanie gibereliny w stęŜeniu 0,5 lub 5,0 mg
⋅
dm
-3
do
poŜywek przełamano spoczynek bezwzględny nasion. Po okresie dwóch miesięcy
uzyskano prawidłowo wykształcone siewki derenia. Na podstawie załoŜonej kultury
odmian derenia ‘Devin’ oraz ‘Titus’ oceniono moŜliwość namnaŜania pędów derenia w
warunkach sterylnych. Uzyskano zadowalający współczynnik namnaŜania pędów,
wynoszący od 1:3,8 do 1:4,8; średnia długość pędu wahała się od 2,6 do 3,1 cm w
zaleŜności od odmiany i poŜywki.
APPLYING OF in vitro METHOD IN GENERATIVE
AND VEGETATIVE PROPAGATION
OF CORNELIAN CHERRY (Cornus mas L.)
Włodzimierz Lech, Ewa Dziedzic, Monika Bieniasz, Roman Rduch
Department of Pomology and Apiculture, Agricultural University, Kraków
Key words:
seed dormancy, in vitro culture, index of multiplication, ‘Devin’,
‘Titus’
Summary
In vitro method was applyed in generative and vegetative propagation of
cornelian cherry. Breaking of the seed dormancy was achieved after a gentle cut of seed
coat and the addition of GA
3
at the concentration of 0.5 lub 5.0 mg
⋅
dm
-3
into the me-
dium. After two months of culture the regular developed seedlings were obtained. The
shoot culture of two cornelian cherry cultivars ‘Devin’ and ‘Titus’ was established in in
vitro conditions. The multiplication index ranged from 1:3.8 to 1:4.8; mean length of
shoots ranged from 2.6 to 3.1 cm depending on the cultivar and medium.
Dr inŜ. Ewa Dziedzic
Katedra Sadownictwa i Pszczelnictwa
Wydział Ogrodniczy
Uniwersytet Rolniczy im. H. Kołłątaja
al. A. Mickiewicza 21
31-120 KRAKÓW
e-mail: ewa@ogr.ar.krakow.pl