background image

 

ZESZYTY PROBLEMOWE POSTĘPÓW NAUK ROLNICZYCH 2009 z. 534: 151-161 

 
 
 
 
 

 
 

WYKORZYSTANIE METODY in vitro 

 

W GENERATYWNYM I WEGETATYWNYM 

 

ROZMNAśANIU DERENIA JADALNEGO (Cornus mas L.)

 

 
 
Włodzimierz 

Lech

, Ewa 

Dziedzic

, Monika 

Bieniasz

, Roman

 Rduch

 

 

Katedra Sadownictwa i Pszczelnictwa, Uniwersytet Rolniczy im. H. Kołłątaja w Krakowie 

 
 
 
 

Wstęp

 

 

W grupie mniej znanych gatunków roślin, które cieszą się obecnie zwiększonym 

zainteresowaniem jest dereń jadalny

 [K

AWECKI

,

 

B

IENIEK

 2005].

 Gatunek ten znany jest od 

dawna, wg źródeł archeologicznych ślady derenia sprzed 10 000 lat p.n.e. znaleziono w 
pobliŜu  Urfy,  na  południu  Turcji.  W  stanie  naturalnym  występuje  w  środkowej  i 
południowej Europie, na Kaukazie oraz w zachodniej Azji 

[S

ENETA 

1973].

 

Dereń  jest  dobrze  przystosowany  do  niekorzystnych  warunków  środowiska 

i jednocześnie  mało  podatny  na  choroby  i  szkodniki.  Odporny  na  niskie  temperatury, 
polecany jest na wilgotne, Ŝyzne gleby, stanowiska słoneczne. Nadaje się na szpalery i 
Ŝ

ywopłoty,  jest  miododajną  rośliną,  a  drewno  jest  wykorzystywane  w tokarstwie. 

Owoce  derenia  jadalnego  mogą  być  czerwone,  róŜowe  lub  Ŝółte,  okrągłego  lub 
wydłuŜonego kształtu. Średnia masa owocu waha się od 5-8 gramów. Pestka stanowi od 
7,5  do  11,0%  całkowitej  masy  owocu 

[S

ENETA 

1973]

.  Owoce  odznaczają  się  wysokimi 

właściwościami  leczniczymi  i  dietetycznymi 

[G

ÜLÇIN

  i  in.  2005].

  Zawartość  cukrów 

wynosi od 8,0 do 1,0%, kwasów organicznych od 1,3 do 1,9%, witaminy C waha się od 
101  to  193  mg%.  W  skórce  owoców  zawartość  antocyjanów  wynosi  od  670  do  850 
mg%,  podczas  gdy  w  miąŜszu  od  36  do  121  mg%.  Wśród  antocyjanów  przewaŜa 
cyjanidino-3-glukozyd,  którego  zawartość  wynosi  223  mg  w  100  g  św.m.  owocu 

[P

ANTELIDIS

  i  in.  2007].

  Owoce  nadają  się  na  róŜnego  typu  przetwory,  dŜemy,  nalewki. 

Znany  takŜe  w  medycynie  ludowej  dereń  stosowany  jest  w  celu  obniŜenia  gorączki,  a 
ostatnie  badania  wykazały  równieŜ  jego  aktywność  antybiotyczną  w  odniesieniu  do 
bakterii:  Staphylococcus  aureus,  Pseudomonas  aeruginosa,  Proteus  vulgaris, 
Micrococcus  luteus
 

[D

ULGER

,

 

D

ONUZ

  2004]

.  Obecnie  w  wielu  ośrodkach  na  świecie 

prowadzone  są  systematyczne  prace  nad  tworzeniem  kolekcji,  odbudową  zasobów 
genowych i selekcją wielkoowocowych odmian tego gatunku

 [K

LIMIENKO

 2004; E

RCÝSLÝ

 

2004; G

ÜLERYÜZ

 i in. 1998].

 

RozmnaŜanie  generatywne  derenia,  podobnie  jak  innych  gatunków  drzew 

i krzewów  owocowych,  napotyka  na  duŜe  trudności.  Kiełkowanie  nasion  derenia  po 
samoistnym  wysianiu  następuje  po  2  lub  3  latach,  a  otrzymane  w  ten  sposób  rośliny 
zaczynają  owocować  dopiero  po  20  latach.  Przyczyną  niekiełkowania  nasion  wielu 
gatunków roślin zaraz po zbiorze są czynniki fizyczne i fizjologiczne. Łupina nasienna 
moŜe być stwardniała i nie przepuszczać wody i gazów, moŜe teŜ zawierać inhibitory, 
które  hamują  kiełkowanie  nasion.  Nasiona  mogą  cechować  się  fizjologicznym 
bezwzględnym  spoczynkiem  wewnętrznym  (płytkim,  pośrednim  lub  głębokim).  Ten 
rodzaj  spoczynku  jest  regulowany  przez  zarodek  lub  łupiny  nasienne.  Istnieją  teŜ 

background image

 

W. Lech i inni 

 
 

152 

nasiona o podwójnym spoczynku, powodowanym zarówno przez łupiny nasienne, jak i 
zarodek. Chcąc zmusić nasiona do kiełkowania przeprowadza się odpowiednie zabiegi, 
które przyspieszają kiełkowanie 

[R

EJMAN

, M

AKOSZ 

1995]

. Najczęściej jest to stratyfikacja 

ciepło-zimna.  Stosuje  się  równieŜ  skaryfikację,  traktowanie  nasion  gorącą  wodą, 
działanie  środkami  chemicznymi  (gibereliny,  cytokininy,  etylen,  azotan  potasu, 
tiomocznik).  Traktowanie  stęŜonym  kwasem  siarkowym  (5  min)  nasion  Cornus 
capitata
  zwiększyło  procent  kiełkujących  nasion  i  znacznie  skróciło  czas  kiełkowania 

[A

IRI

 i in. 2005].

  

W  przypadku  rozmnaŜania  wegetatywnego  derenia  dobre efekty  moŜna  uzyskać 

przy  wykorzystaniu  sadzonek  półzdrewniałych,  wykonanych  w  drugiej  połowie 
czerwca,  z  zastosowaniem  ukorzeniacza  Rhizopon  AA  1%  lub  2%  w  podłoŜu  z 
mieszaniny  torfu  wysokiego  i  perlitu  w  stosunku  objętościowym  1:1,  pH  w H

2

O  -  5,0

 

[K

ORSZUN

,

 

K

OLASIŃSKI

 2002].

 MoŜliwa jest teŜ okulizacja na siewkach derenia oczkami z 

juŜ  owocujących  drzew.  Metoda  ta  często  jest  stosowana  przy  rozmnaŜaniu 
szlachetnych odmian derenia.  

Podejmowane  są  teŜ  próby  zastosowania  kultur  sterylnych  w  rozmnaŜaniu 

derenia.  Metoda  otrzymywania  siewek  derenia  w  krótkim  czasie,  dzięki  przełamaniu 
spoczynku  nasion  w  warunkach  in  vitro  mogłaby  znaleźć  zastosowanie  w  produkcji 
szkółkarskiej.  Prowadzone  dotychczas  badania  wskazują,  Ŝe  warunki  in  vitro 
umoŜliwiają  przełamanie  spoczynku  i  kiełkowanie  nasion  wielu  gatunków  roślin. 
Głęboki  spoczynek  zarodkowy  nasion  jabłoni  został  przełamany  i  stymulacja 
kiełkowania izolowanych zarodków następowała w wyniku krótkotrwałego traktowania 
ich  cyjanowodorem  (1  mM,  6  godz.) 

[B

OGATEK

  i  in.  1991].

  Ostatnio  stwierdzono,  Ŝe  w 

regulacji  kiełkowania  nasion  róŜnych  gatunków  roślin  bierze  udział  tlenek  azotu. 
Zastosowanie  donorów  tlenku  azotu  (S-nitrozo-N-acetylopenicyloaminy  oraz 
nitroprusydku sodu)  wywołuje efekt podobny jak  uŜycie cyjanowodoru 

[G

NIAZDOWSKA

,

 

B

OGATEK

 2007]. 

 

  

Szczegółowo  opisana  technologia  rozmnaŜania  w  warunkach  in  vitro  moŜe 

znaleźć  zastosowanie  do  otrzymywania  wielkoowocowych  odmian  derenia,  co 
przyczyniłoby  się  do  popularyzacji  uprawy  tego  gatunku.  Opracowano  juŜ  metodykę 
regeneracji  całych  roślin  z  pąków  bocznych  w  kulturze  siewek  Cornus  florida  L.

 

[K

AVERIAPPA

  i  in. 1997]

, jak równieŜ somatyczną embriogenezę i kiełkowanie zarodków 

somatycznych

  [T

RIGIANO

  i  in.  1989]

.  Przykładem  odmiany  derenia  jadalnego,  dla  której 

została  opracowana  metodyka  rozmnaŜania  z  wykorzystaniem  kultur  tkankowych,  jest 
odmiana ‘Macrocarpa’

 [Ď

URKOVIČ

 2008].

 

 
 
 

Materiał i metody

 

 
Kiełkowanie nasion derenia jadalnego na poŜywkach w warunkach in vitro 
 

Z  dojrzałych  owoców  derenia  typu  lokalnego  wydobywano  pestki,  z  których 

usunięto  resztki  miąŜszu.  Bardzo  twardy  endokarp  przecinano  w  poprzek  ostrym 
narzędziem, a następnie wydobywano ostroŜnie nasiona. Nasiona poddano dezynfekcji 
w  1%  roztworze  podchlorynu  wapnia  przez  5  min  i  kolejno  kilkakrotnie  przepłukano 
wodą  sterylną.  Tak  przygotowane  nasiona  wykładano  na  poŜywki  w celu  pobudzenia 
ich  do  kiełkowania.  Zastosowano  poŜywki  wykonane  według  składu  mineralnego 
poŜywki 

M

URASHIGE 

i

 

S

KOOG

  [1962].

  Zestalone  0,6%  agarem  poŜywki  zawierały  3,0% 

sacharozy  oraz  substancje  wzrostowe  o  podanych  kombinacjach  i  stęŜeniach  (tab.  1). 
Odczyn poŜywki ustalono na poziomie pH=5,7. 

 

Tabela 1; Table 1 

 

background image

 

WYKORZYSTANIE METODY in vitro ... 

 
 

153 

Skład poŜywek do kiełkowania nasion derenia 

Media composition for germination of cornelian cherry seeds 

 

 

 

Lp. 

No. 

 

PoŜywka 

Media 

 

Rodzaj i stęŜenie substancji wzrostowych 

Type and concentration of hormonal substances 

 

 
Murashige i Skoog (1962) 
Murashige and Skoog (1962) 

 

0,2 mg

dm

-3

 BA  

 

 
 

 

0,2 mg

dm

-3

 BA+0,5 mg

dm

-3

 GA

3

 

 

 
 

 

0,2 mg

dm

-3

 BA+5,0 mg

dm

-3

 GA

3

 

 

 

Przy  wykładaniu  na  poŜywki  zastosowano  dwa  sposoby  traktowania  nasion. 

Część  nasion  wykładano  z  nietkniętą  łupiną  nasienną,  a  u  części  delikatnie  łupinę 
nacinano.  Doświadczenie  załoŜono  w  czterech  powtórzeniach,  jedno  powtórzenie 
stanowiła  jedna  kolba,  zawierająca  cztery  nasiona.  Kolby  z  nasionami  umieszczono  w 
fitotronie,  w  warunkach 16-godzinnego  fotoperiodu przy oświetleniu 92,8 

µ

mol

m

-2

s

-1

 

oraz w temperaturze 23 ±1

°

C. Obserwacje i pomiary prowadzone były po 7, 14, 21, 36 

oraz 66 dniach od wyłoŜenia nasion na poŜywki.  
 
Kultura pąków derenia w warunkach in vitro 
 

Kultury  dwóch  odmian  derenia  jadalnego  ‘Devin‘  oraz  ‘Titus’  załoŜono 

z pobranych  jesienią  oraz  wiosną  pąków  kątowych.  Po  zdjęciu  brązowych  okryw  pąki 
poddano  dezynfekcji,  którą  przeprowadzono  według  schematu:  70%  alkohol  -  1  min, 
12%  podchloryn  wapnia  -  10  min  3-krotne  przemycie  wodą  sterylną,  a następnie 
krótkotrwałe  przepłukanie  1%  roztworem  podchlorynu  wapnia.  Po  dezynfekcji  pąki 
wyłoŜono na inicjującą poŜywkę 

M

URASHIGE

 i S

KOOG

 [1962] 

z dodatkiem IBA w stęŜeniu 

0,1 mg

dm

-3

 oraz BA w stęŜeniu 1,0 mg dm

-3

. Po uzyskaniu stabilnej kultury załoŜono 

doświadczenie, mające na celu znalezienie właściwej poŜywki namnaŜającej dla pędów 
derenia. Na tym etapie doświadczenia wykorzystano poŜywki sporządzone w oparciu o 
skład poŜywki 

L

LOYD 

i

 

M

C

C

OWN

 [1980].

 Skład badanych poŜywek podano w tab. 2. 

 

Tabela 2; Table 2 

 

Skład poŜywek do namnoŜenia pędów derenia jadalnego  

Media composition for multiplication of cornelian cherry shoots 

 

 

 

Lp. 

No. 

 

PoŜywka  

Media 

 

Rodzaj i stęŜenie substancji wzrostowych 

Type and concentration of hormonal substances 

 

 
Lloyd i McCown (1980) 
Lloyd and McCown (1980) 

 
0,6 mg

dm

-3

 BA+2% sacharozy; 0.6 mg

dm

-3

 BA+2% saccharose 

 

 
 

 
0,6 mg

dm

-3

 BA+2% glukozy; 0.6 mg

dm

-3

 BA+2% glucose 

 

 
 

 
0,6 mg

dm

-3

 BA+0,05 mg

dm

-3

 IBA+2% sacharozy 

0.6 mg

dm

-3

 BA+0.05 mg

dm

-3

 IBA+2% saccharose 

 

 
 

 
0,6 mg

dm

-3

 BA+0,05 mg

dm

-3

 IBA+2% glukozy 

0.6 mg

dm

-3

 BA+0.05 mg

dm

-3

 IBA+2% glucose 

 

Odczyn poŜywek ustalono na poziomie pH=5,7; poŜywki zestalono 0,6% agarem. 

Kolby  z  pędami  utrzymywano  w  warunkach  fotoperiodu  16 h/8 h,  dzień/noc  przy 
oświetleniu  92,8 

µ

mol

m

-2

s

-1

  oraz  w  temperaturze  23  ±1

°

C.  Obserwacje  i  pomiary 

przeprowadzono  pod  koniec  kaŜdego  z  czterech  pasaŜy,  wykonywanych  w 
czterotygodniowych  odstępach.  Doświadczenie  załoŜono  w pięciu  powtórzeniach 
(kolbach), w kolbie wysadzano pięć sztuk pędów.  

Wyniki  uzyskane  w  kolejnych  etapach  doświadczenia  poddane  zostały  obli-

background image

 

W. Lech i inni 

 
 

154 

czeniom statystycznym w oparciu o analizę wariancji, z uwzględnieniem wielokrotnego 
testu Duncana przy poziomie prawdopodobieństwa 

α

=0,05.  

 
 
 

Wyniki i dyskusja

 

 
Kiełkowanie nasion derenia jadalnego na poŜywkach w warunkach in vitro 
 

Ś

rednie  wymiary  nasion  wykładanych  na  poŜywki  wynosiły  1,06  cm

×

0,3  cm. 

Stwierdzono, Ŝe w zaleŜności od wielkości pestki znajdowało się w niej 1-3 nasion. Po 
siedmiu  dniach  od  wyłoŜenia  nasion  na  poŜywki  zaobserwowano  róŜnice  w  tempie 
kiełkowania  zarodków,  w  zaleŜności  od  rodzaju  poŜywki  oraz  sposobu  traktowania 
nasion (tab. 3).  

 
 

Tabela 3; Table 3 

 

Procent kiełkujących nasion derenia jadalnego z naciętą i nienaciętą okrywą nasienną 

po 7, 14, 21, 36 oraz 66 dniach od wyłoŜenia na poŜywki 

 

Percent of germinating cornelian cherry seeds with cut and non-cut coat 7, 14, 21, 36, 66 days 

after placing on the media 

 

 

Obiekt 
Object 

 

Dni od wyłoŜenia nasion na poŜywki 

Days after placing of seeds on the media 

 
 

 

 

14 

 

21 

 

36 

 

66 

 

Rodzaj i stęŜenie substancji wzrostowych w poŜywce 

Type and concentration of hormonal substances 

 
0,2 mg

dm

-3

 BA 

 

14,6 b 

 

14,6 a 

 

19,6 a 

 

22,2 a 

 

28,8 a 

 
0,2 mg

dm

-3

 BA+0,5 mg

dm

-3

 GA

3

 

 

12,4 b 

 

14,6 a 

 

37,1 a 

 

59,8 b 

 

60,0 b 

 
0,2 mg

dm

-3

 BA+5,0 mg

dm

-3

 GA

3

 

 

0,4 a 

 

22,2 a 

 

30,9 a 

 

77,8 b 

 

80,0 b 

 
 

 

 

Sposób traktowania nasion; Method od seed treatment 

 
Okrywa nienacięta; Non-cut seed coat 

 

0,2 a 

 

0,8 a 

 

10,3 a 

 

21,3 a 

 

28,8 a 

 
Okrywa nacięta; Cut seed coat  

 

23,1 b 

 

47,8 b 

 

52,2 b 

 

75,8 b 

 

82,0 b 

 

ś

rednie  oznaczone  tymi  samymi  literami  nie  róŜnią  się  statystycznie  przy 

α

=0,05;  means  followed  by  the 

same letters do not differ at 

α

=0.05

 

 

Nacięcie  łupiny  nasiennej  spowodowało  szybsze  kiełkowanie  zarodków  na 

poŜywce  z  mniejszą  zawartością  gibereliny  oraz  na  poŜywce  bez  tego  hormonu.  Na 
poŜywce  z  dodatkiem  gibereliny  w  stęŜeniu  5,0  mg

dm

-3

  kiełkowanie  zarodków  z 

nasion z naciętą łupiną zaobserwowano po dalszych siedmiu dniach kultury. Po trzech 
tygodniach  od  załoŜenia  doświadczenia  odnotowano  kiełkowanie  zarodków  na 
wszystkich  poŜywkach  dla  obydwu  sposobów  traktowania  nasion,  z tym,  Ŝe  w 
przypadku  nasion  z  naciętą  łupiną  procent  kiełkujących  nasion  był  istotnie  wyŜszy 
(52,2%)  w  porównaniu  do  nasion  z  łupiną  nienaciętą  (10,3%).  Po  przeszło  dwóch 
miesiącach  trwania  doświadczenia  stwierdzono,  Ŝe  zarówno  nacięcie  łupiny,  jak  i 
dodatek  gibereliny  do  poŜywki  przyczyniło  się  do  statystycznie  większej  liczby 
kiełkujących  zarodków.  Nasiona,  które  zostały  połoŜone  bez  nacinania  łupiny  na 
poŜywkę  pozbawioną  gibereliny  po  dwóch  miesiącach  doświadczenia  zamarły.  W 
efekcie  stwierdzono,  Ŝe  dodatek  gibereliny  do  poŜywek  istotnie  wpłynął  na  procent 
kiełkujących nasion, niezaleŜnie od zastosowanego stęŜenia gibereliny.  

SpostrzeŜenia  dokonane  w  przeprowadzonym  doświadczeniu,  a  dotyczące 

korzystnego  wpływu  gibereliny  na  kiełkowanie  zarodka,  są  zgodne  z  sugestiami 

background image

 

WYKORZYSTANIE METODY in vitro ... 

 
 

155 

B

EWLEY

A

  [1997]

,  który  szeroko  omawia  znaczenie  i  rolę,  jaką  odgrywają  gibereliny  w 

przełamywaniu  spoczynku  nasion.  Wydaje  się,  Ŝe  gibereliny  nie  są  samodzielnie 
zaangaŜowane w kontrolę spoczynku nasion, ale odgrywają waŜną rolę w podtrzymaniu 
kiełkowania i działają w chwili, gdy spoczynek nasion powodowany przez ABA zostaje 
przełamany.  Współdziałanie  ABA  oraz  giberelin  moŜe  być  wzajemnie  powiązane,  o 
czym  świadczy  fakt,  Ŝe  w  mutantach  Arabidopsis  aba  oraz  do2,  obniŜonemu 
spoczynkowi  nasion  towarzyszy  niŜsze  zapotrzebowanie  na  gibereliny  do  kiełkowania 

[L

ÉON

-K

LOOSTERZIEL 

i in.

 

1996]

 
 
 

Tabela 4; Table 4 

 

Cechy morfologiczne siewek derenia jadalnego uzyskanych po 66 dniach od wyłoŜenia nasion na 

poŜywki w warunkach in vitro 

 

Morphological features of cornelian cherry seedlings obtained 66 days after placing 

the seeds on the media in in vitro conditions

 

 

 

Obiekt 
Object 

 

Wysokość 

siewek (cm) 

Height of 

seedling (cm) 

 

Długość korzenia 

siewek (cm) 

Length of seed-

ling root (cm) 

 

Szerokość 

liścia siewek 

(cm); Width 

of seedling 

leaf (cm) 

 

Długość liścia 

siewek (cm) 

Length of seed-

ling leaf (cm) 

 
Rodzaj i stęŜenie substancji wzrostowych w poŜywce 
 Type and concentration of hormonal substances 

 
0,2 mg

dm

-3

 BA 

 

2,4 a 

 

0,3 a 

 

0,6 n.s. 

 

2,8 a 

 
0,2 mg

dm

-3

 BA+0,5 mg

dm

-3

 GA

3

 

 

5,8 b 

 

0,5 a 

 

1,1 n.s. 

 

5,4 ab 

 
0,2 mg

dm

-3

 BA+5,0 mg

dm

-3

 GA

3

 

 

6,9 b 

 

3,0 b 

 

1,5 n.s. 

 

7,9 b 

 

Sposób traktowania nasion; Methods of seed treatment 

 
Okrywa nienacięta 
Non-cut seed coat 

 

2,5 a 

 

0,7 a 

 

0,9 n.s. 

 

4,2 a 

 
Okrywa nacięta; Cut seed coat 

 

7,7 b 

 

1,9 b 

 

1,2 n.s. 

 

6,5 a 

 
n.s. 

zróŜnicowanie nieistotne przy 

α

=0,05; differentiation non-significant at 

α

=0.05 

ś

rednie oznaczone tymi samymi literami nie róŜnią się statystycznie przy 

α

=0,05; means followed by the 

same letters do not differ at 

α

=0.05

 

 

Stwierdzono  istotne  zróŜnicowanie  w  wysokości  siewek  uzyskanych  z  nasion  z 

nienaciętą  i  naciętą  łupiną  nasienną  (tab.  4).  Średnia  wysokość  siewek  otrzymanych  z 
tych ostatnich nasion wynosiła 7,7 cm, podczas gdy średnia wysokość siewek z nasion, 
na których łupina nie została nacięta - 2,5 cm. Na poŜywkach zawierających giberelinę 
uzyskane siewki cechowały się istotnie większą wysokością w porównaniu do siewek z 
nasion wyłoŜonych na poŜywkę bez gibereliny.  

RównieŜ  w  długości  korzeni  siewek  stwierdzono  istotne  zróŜnicowanie  na 

korzyść  siewek  z  nasion  z  naciętą  łupiną  (średnia  długość  korzenia  wynosiła  1,9  cm) 
oraz poŜywki, zawierającej giberelinę w stęŜeniu 5,0 mg

dm

-3

 (średnia długość korzenia 

wynosiła  3,0  cm).  Po  dwóch  miesiącach  kultury  siewki  wytworzyły  średnio  5-6  liści. 
Liście siewek z poŜywek zawierających giberelinę odznaczały się statystycznie większą 
długością, ale nie róŜniły się pod względem szerokości (tab. 4). 
 
Kultury pąków derenia w warunkach in vitro 
 

Wyniki  dotyczące  skuteczności  zabiegu  dezynfekcji  pąków  kątowych  dwóch 

odmian derenia jadalnego ‘Devin’ i ‘Titus’ zamieszczono w tabeli 5.  

background image

 

W. Lech i inni 

 
 

156 

 
 

Tabela 5; Table 5 

 

 

Efektywność zabiegu odkaŜania pąków kątowych derenia jadalnego 

 

Effectiveness of cornelian cherry axial buds sterilization

 

 

 

Obiekt 
Object 

 

Liczba pąków 

poddanych odka-

Ŝ

aniu; Number of 

sterilized buds  

 

Procent pąków 

zakaŜonych 

Percent of infected 

buds 

 

Procent pąków 

zamarłych 

 Percent of dead buds  

 

Procent pąków 

Ŝ

ywych 

Percent of survived 

buds 

 

Termin pobrania pąków - jesień; Time of bud collecting - Autumn 

 
Devin 

 

24 

 

41,7 

 

41,6 

 

16,7 

 
Titus 

 

33 

 

6,1 

 

84,8 

 

9,1 

 

Termin pobrania pąków - wiosna; Time of bud collecting - Spring 

 
Devin 

 

43 

 

 

79,1 

 

20,9 

 
Titus 

 

44 

 

 

79,5 

 

20,5 

 
 

Tabela 6; Table 6 

 

 

Liczba oraz długość pędu dwóch odmian derenia jadalnego 

 

Number and length of two cultivars cornelian cherry shoots

 

  

Obiekt 
Object 

 

PoŜywki wg tabeli 2; Media according to Table 2. 

 
 

 

 

 

 

 
 

 

ś

rednia 

liczba 

pędów 

mean 

number 

of shoots 

 

ś

rednia 

długość 

pędu 

mean 

length of 

shoot 

(cm) 

 

ś

rednia 

liczba 

pędów 

mean 

number 

of shoots 

 

ś

rednia 

długość 

pędu 

mean 

length of 

shoot 

(cm) 

 

ś

rednia 

liczba 

pędów 

mean 

number 

of shoots 

 

ś

rednia 

długość 

pędu 

mean 

length of 

shoot 

(cm) 

 

ś

rednia 

liczba 

pędów 

mean 

number 

of shoots 

 

ś

rednia 

długość 

pędu 

mean 

length of 

shoot 

(cm) 

 
Devin 

 

3,8 a 

 

2,6 a 

 

4,0 a 

 

2,6 a 

 

4,3 ab 

 

2,8 ab 

 

4,8 b 

 

3,1 b 

 
Titus 

 

4,6 b 

 

2,8 a 

 

4,7 b 

 

2,7 a 

 

4,3 ab 

 

2,9 ab 

 

3,8 a 

 

2,7 a 

 
ś

rednie  oznaczone  tymi  samymi  literami  nie  róŜnią  się  statystycznie  przy 

α

=0,05;  means  followed  by  the 

same letters do not differ at 

α

=0.05

 

 

Spośród  dwóch  terminów  pobierania  pąków  i  zakładania  kultury  derenia, 

korzystniejszym  okazał  się  termin  wiosenny,  ze  względu  na  większy  procent  uzys-
kanych  Ŝywych  i  zdrowych  pąków  odmiany  ‘Devin’  (20,9%)  oraz  odmiany  ‘Titus’ 
(20,5%), (tab. 5). 

W  etapie  namnaŜania  odmiany  róŜniły  się  współczynnikiem  namnoŜenia  pędów 

oraz reakcją na składy poŜywek (tab. 6). 

Odmiana  ‘Titus’  cechowała  się  wyŜszym  współczynnikiem  namnaŜania  pędów 

na poŜywkach nr 1 i 2, w porównaniu do odmiany ’Devin’. Współczynniki namnoŜenia 
pędów  odmiany  ‘Titus’  wynosiły  1:4,6  na  poŜywce  nr  1  oraz  1:4,7  na  poŜywce  nr  2 
(tab.  6).  Na  poŜywce  nr  3  współczynniki  namnoŜenia  obu  odmian  były  jednakowe, 
natomiast  na  poŜywce  nr  4  odmiana  ‘Devin’  cechowała  się  istotnie  większą  liczbą 
wytworzonych  pędów.  Uzyskane  wyniki  wskazują,  Ŝe  brak  w poŜywce  auksyny 
wywiera  korzystny  wpływ  na  zdolność  pobudzania  pąków  kątowych  odmiany  ‘Titus’ 
do  wybijania  w  nowe  pędy,  natomiast  dla  odmiany  ‘Devin’  dodatek  do  poŜywek 
auksyny był korzystny.  

background image

 

WYKORZYSTANIE METODY in vitro ... 

 
 

157 

W  badaniach 

Ď

URKOVIČ

  [2008] 

dotyczących  derenia  jadalnego  odmiany 

‘Macrocarpa’  za  najbardziej  przydatną  uznano  poŜywkę

  L

LOYD 

i

 

M

C

C

OWN

  [1980]

Kombinacja cytokininy BA w stęŜeniu 0,7 mg

dm

-3 

oraz auksyny NAA w stęŜeniu 0,05 

mg

dm

-3 

okazała  się  najkorzystniejszą  biorąc  pod  uwagę  wysoki  współczynnik 

namnaŜania  pędów  wynoszący  1:  6,2,  przy  średniej  długości  pędów  1,55  cm.  Tak 
wysoki  współczynnik  namnoŜenia  jest  zadowalający  i  z  punktu  widzenia  opłacalności 
produkcji uzasadnia celowość tego rodzaju badań.  

E

DSON 

i  in.

 

[1994]

 

przy  namnaŜaniu

 

derenia  ‘Ascona’

 

(Cornus  nuttallii  Audubon) 

na  poŜywce 

L

LOYD 

i

 

M

C

C

OWN

  [1980]

  uzyskał  współczynnik  namnoŜenia  pędów  3,1  w 

obecności  w  poŜywce  cytokininy  BA  w  stęŜeniu  1,0  mg

dm

-3

.  W namnaŜaniu  Cornus 

florida  spośród  stosowanych  siedmiu  poŜywek  o  róŜnym  składzie  mineralnym 
najkorzystniejszą  okazała  się  poŜywka

  L

LOYD 

i  M

C

C

OWN 

[1980]

 

z  dodatkiem  BA  w 

stęŜeniu  0,5  mg

dm

-3 

oraz  IBA  w  stęŜeniu  1,0  mg

dm

-3 

[D

ECLERCK

,  K

ORBAN 

1994].

  W 

innych  badaniach  dotyczących  tego  gatunku  wysoki  współczynnik  namnoŜenia  pędów 
wynoszący  od  1:5,5  do  1:6,0  został  osiągnięty  po  zastosowaniu  cytokininy  BA  w 
stęŜeniu 1,0 mg

dm

-3

 [K

AVERIAPPA

 i in. 1997].

 

W  przeprowadzonych  badaniach  rodzaj  zastosowanego  cukru  (sacharoza, 

glukoza) nie wywarł znaczącego wpływu na współczynnik namnoŜenia ani na długość 
pędów (tab. 6). 

Obserwacje  te  są  zgodne  z  wynikami  innych  autorów

  [B

ORKOWSKA

  i  in.  1994]

którzy  wykazali  dla  wiśni  odmiany  ‘Łutówka’  podobny  wzrost  kultur  pędowych  na 
poŜywce  z  sacharozą  lub  glukozą.  Ci  sami  autorzy  wykazali,  Ŝe  2%  stęŜenie  cukru  w 
poŜywce,  niezaleŜnie  od  rodzaju  tego  cukru,  zabezpiecza  zapotrzebowanie  tkanek 
roślinnych  na  źródło  energii  i  tworzenie  biomasy.  Dodatkowa  jednoprocentowa 
zawartość cukru (w przypadku najczęściej stosowanego 3% stęŜenia cukru w poŜywce) 
jest  zuŜytkowywana  na  regulację  ciśnienia  osmotycznego.  RównieŜ  dla  kilku  odmian 
Ŝ

urawiny i brusznicy wykazano korzystny wpływ 2% stęŜenia sacharozy w poŜywce, ze 

względu na efektywność namnaŜania pędów

 [D

EBNATH 

2005].

 

Wyniki  dotyczące  długości  pędów  były  porównywalne  dla  obydwu  odmian 

derenia na poŜywkach nr 1, 2 oraz 3 i jedynie na poŜywce nr 4 pędy odmiany ‘Devin’ 
były statystycznie dłuŜsze (3,1 cm) w porównaniu do odmiany ‘Titus’ (2,7 cm), (tab. 6).  

W  prezentowanych  badaniach  duŜy  problem  stanowiło  występowanie  objawów 

„szklistości pędów” (tab. 7). 

W najniŜszym nasileniu to zaburzenie fizjologiczne odnotowano na poŜywce nr 1 

dla  obydwu  odmian  (43,1%  szklistych  pędów  odmiany  ’Devin’  i  49,0%  szklistych 
pędów odmiany ‘Titus’) oraz na poŜywce nr 4 dla odmiany ‘Devin’ (44,0% szklistych 
pędów), (tab. 7). 

 
 
 

Tabela 7; Table 7 

 

Procent pędów szklistych dwóch odmian derenia jadalnego 

Percent of cornelian cherry vitrified shoots 

 

 

 

Obiekt 
Object 

 

PoŜywki wg tabeli 2 

Media according to Table 2 

 
 

 

 

 

 

 
Devin 

 

43,1 

 

80,0 

 

67,4 

 

44,0 

 
Titus 

 

49,0 

 

68,2 

 

66,7 

 

62,1 

 

Prawdopodobną  przyczyną  tego  zjawiska  mógł  być  zbyt  niski  odczyn  poŜywki 

background image

 

W. Lech i inni 

 
 

158 

wynoszący  pH=5,7-5,8.

  Ď

URKOVIČ

  [2008]

  w  swoich  badaniach  nad  odmianą 

‘Macrocarpa’  uzyskał  bardzo  korzystny  współczynnik  namnoŜenia  pędów  wynoszący 
1:6,6  po  podniesieniu  odczynu  poŜywki  do  poziomu  pH=6,2.  Autor  ten  nie  podaje 
Ŝ

adnych informacji o występowaniu szklistości pędów.  

 

Tabela 8; Table 8 

 

Procent i wielkość kalusa u podstawy pędów derenia  

Percent and size of callus at the base of cornelian cherry shoots

 

 

 

Obiekt 
Object 

 

PoŜywki wg tabeli 2 

Media according to Table 2 

 
 

 

 

 

 

 
 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 
Devin 

 

69,5 

 

26,3 

 

4,2 

 

85,0 

 

15,0 

 

 

75,8 

 

22,1 

 

2,1 

 

78,9 

 

20,0 

 

1,1 

 
Titus 

 

67,8 

 

23,4 

 

8,8 

 

60,0 

 

34,2 

 

5,8 

 

71,6 

 

23,1 

 

5,3 

 

67,4 

 

24,2 

 

8,4 

 

Wielkość tkanki kalusa według skali, gdzie: a=

 1-2 mm, b=

 3-5 mm, c=

 6 mm i więcej; Size of callus 

according to scale, where: a=

 1-2 mm, b=

 3-5 mm, c=

 6 mm and more

 

 
 

W  trakcie  namnaŜania  obserwowano  duŜą  skłonność  odmiany  ‘Titus’  do 

tworzenia  na  wszystkich  poŜywkach  u  podstawy  pędów  duŜej  masy  kalusa  (tab.  8). 
Obecność  obfitej  tkanki  kalusa  często  jest  przyczyną  pojawiania  się  pędów 
przybyszowych  z  niezorganizowanej  tkanki  kalusa  lub  z  liści,  które  mają  bezpośredni 
kontakt  z  poŜywką.  O  tym  ostatnim  zjawisku  donosi  w  swojej  pracy 

Ď

URKOVIČ

  [2008].

 

Zagadnienie  powstawania  pędów  przybyszowych  oraz  konsekwencje  tego  zjawiska  w 
przypadku borówki wysokiej zostały szeroko i dogłębnie omówione przez 

L

ITWIŃCZUKA

 

[2007].

  Autor  wskazuje,  jak  przebiega  indukowanie  tego  typu  niepoŜądanych  pędów 

oraz jakie związki hormonalne dodawane do poŜywek stymulują ten proces. Podkreśla 
znaczenie  prawidłowo  przeprowadzanej  analizy  i eliminacji  pędów  przybyszowych  w 
trakcie  procesu  namnaŜania,  aby  uniknąć  wprowadzania  ich  do  dalszych  etapów 
produkcji roślin. 
 
 

Wnioski

 

 
1. 

Nacięcie łupiny nasiennej oraz dodanie gibereliny w stęŜeniu 0,5 lub 5,0 mg

dm

-3

 

przełamuje  spoczynek  bezwzględny  nasion  derenia  jadalnego  i ułatwia 
kiełkowanie.  

 
2. 

PoŜywka  Lloyd  i  McCown  (1980)  z  dodatkiem  BA  w  stęŜeniu  0,6  mg

dm

-3

 

indukuje namnaŜanie pędów derenia jadalnego w zadowalającym stopniu. 

 
 
 
 

Literatura

 

 

A

IRI 

S.,

 

R

AWAL 

R.S.,

 

D

HAR 

U. 2005. 

Presowing treatment effects on germination of Cor-

nus capitata seeds. Seed Sci. and Technol. 33(1): 77-86. 

B

EWLEY 

J.D. 1997. 

Seed germination and dormancy. The Plant Cell 9: 1055-1066. 

B

OGATEK 

R.,

 

D

ZIEWANOWSKA 

K.,

 

L

EWAK 

S. 1991. 

Hydrogen cyanide and embryonal dor-

mancy in apple seeds. Physiol. Plant. 83: 417-421. 

background image

 

WYKORZYSTANIE METODY in vitro ... 

 
 

159 

B

ORKOWSKA 

B.,

 

S

ZCZERBA 

J.,

 

K

UBIK 

M. 1994. 

Gospodarka cukrami w kulturach pędowych 

wiśni  odm.  Łutówka.  I  Ogólnopolska  Konferencja  „Zastosowanie  kultur  in  vitro  w 
fizjologii roślin”. Kraków, 15-17 XII 1994: 11-17. 

D

EBNATH 

S.C.  2005.

  Effect  of  carbon  source  and  concentration  on  development  of 

lingonberry (Vaccinium vitis-idea L.) shoots cultivated in vitro from nodal explants. In 
Vitro Cell. and Develop. Biol. Plant 41(2): 145-150. 

D

ECLERCK 

V.,

 

K

ORBAN 

S.S.  1994. 

Effects  of  source  of  macronutrients  and  plant  growth 

regulator concentrations on shoot proliferation of Cornus florida. Plant Cell, Tiss. and 
Organ Cult. 38: 57-60. 

D

ULGER 

B.,

 

D

ONUZ 

A.  2004.

  Antimicrobial  activity  of  some  Turkish  medicinal  plants

Pakistan J. of Biol. Sci. 7(9): 1559-1562.  

Ď

URKOVIČ 

J.  2008.

  Micropropagation  of  mature  Cornus  mas  ‘Macrocarpa’.  Trees  22: 

597-602. 

E

DSON 

J.L.,

 

W

ENNY 

D.L.,

 

L

EEGE

-B

RUVEN 

A.

 

1994.

 Micropropagation of Pacific dogwood 

Hort Science 29(11): 1231-1246. 

E

RCÝSLÝ 

S.  2004. 

Cornelian  cherry  germplasm  resources  of  Turkey.  J.  Fruit  Ornam. 

Plant Res. 92 Special ed. vol. 12: 87-92. 

G

NIAZDOWSKA 

A.,

 

B

OGATEK 

R.  2007. 

Regulacyjna  rola  tlenku  azotu  w  kiełkowaniu  na-

sion. Post. Biol. Kom. 34(3): 431-443. 

G

ÜLÇIN 

I.,

 

B

EYDEMIR 

S.,

 

Ş

AT 

G.,

 

K

ÜFREVIO

_

LU 

Ö.I. 2005.

. 

Evaluation of antioxidant activity 

of cornelian cherry (Cornus mas L.). Acta Alimentaria 34: 193-202. 

G

ÜLERYÜZ 

M.,

 

B

OLAT 

I.,

 

P

IRLAK 

L. 1998. 

Selection of table cornelian cherry (Cornus mas 

L.) types in Çoruhv Valley. Tr. J. of Agriculture and Forestry 22: 357-364. 

K

AVERIAPPA 

K.M.,

 

P

HILLIPS 

L.M.,

 

T

RIGIANO 

R.N.

 

1997.

  Micropropagation  of  flowering 

dogwood (Comus florida) from seedlings. Plant Cell Reports 16: 485-489.  

K

AWECKI 

Z.,

 

B

IENIEK 

A.

 

2005. 

Cornelian  cherry  (Cornus  mas  L.)  as  a  perspective  or-

chard and ornamental plant. Zesz. Probl. Post. Nauk Rol. 507: 263-267. 

K

LIMIENKO 

S. 2004. 

The cornelian cherry (Cornus mas L.): collection, preservation and 

utilization of genetic resources. J. Fruit Ornam. Plant Res. 98 Special ed. 12: 93-98. 

K

ORSZUN 

S.,

 

K

OLASIŃSKI 

M.  2002.

  Alternatywna  technologia  rozmnaŜania  derenia  ja-

dalnego (Cornus mas L). Biulet. Ogrod. Botan. 11: 51-56. 

L

ÉON

-K

LOOSTERZIEL 

K.M.,

 

V

AN  DE 

B

UNT 

G.A.,

 

Z

EEVAART 

J.A.D.,

 

K

OORNNEEF 

M.  1996.

 

Arabidopsis mutants with reduced seed dormancy. Plant Physiol. 110: 233-240. 

L

ITWIŃCZUK 

W.  2007.

  RozmnaŜanie  borówki  wysokiej  (Vaccinium  corymbosum  L.) 

w kulturach  in  vitro.  Wpływ  mikrorozmnaŜania  na  wzrost  i  owocowanie  krzewów. 
Wydaw. Uniw. Rzeszowskiego, Rzeszów 2007. ISBN 978-83-7338-294-4. 

L

LOYD 

G.,

 

M

C

C

OWN 

B.  1980. 

Commercially  feasible  micropropagation  of  mountain 

laurel  Kalmia  latifolia,  by  use  of  shoot-tip  culture.  Proc.  Int.  Plant.  Prop.  Soc.  30: 
421-427. 

M

URASHIGE 

T.,

 

S

KOOG 

F.  1962.

  A  revised  medium  for  rapid  growth  and  bioassays  with 

tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 473-497. 

P

ANTELIDIS 

G.E.,

 

V

ASILAKAKIS 

M.,

 

M

ANGANARIS 

G.A,

 

D

IAMANTIDIS 

G

R

.  2007.

  Antioxidant 

capacity, phenol, anthocyanin and ascorbic acid contents in raspberries, blackberries, 
red currants, gooseberries and cornelian cherries.
 Food Chemistry 102(3): 777-783. 

R

EJMAN 

A.,

 

M

AKOSZ 

E.

 

1995. 

Szkółkarstwo roślin sadowniczych. Plantpress, Kraków: 

89-92. 

background image

 

W. Lech i inni 

 
 

160 

S

ENETA 

W. 1973. 

Dendrologia. PWN, Warszawa: 431-436. 

T

RIGIANO 

R.N.,

 

B

EATY 

R.M.,

 

D

IETRICH 

J.T.  1989.

  Somatic  embryogenesis  and  plantlet 

regeneration in Cornus florida. Plant Cell Rep. 8: 270-273. 

 
 
Słowa kluczowe: 

giberelina,  kultury  in  vitro,  skaryfikacja,  spoczynek  nasion, 
współczynnik namnoŜenia 

 
 

Streszczenie 

 

Metodę  kultur  tkankowych  wykorzystano  w  generatywnym  i  wegetatywnym 

namnaŜaniu  derenia  jadalnego.  Poprzez  wyłoŜenie  nasion  na  poŜywki  i  zastosowanie 
nacięcia  łupiny  nasiennej  oraz  dodanie  gibereliny  w  stęŜeniu  0,5  lub  5,0  mg

dm

-3

  do 

poŜywek  przełamano  spoczynek  bezwzględny  nasion.  Po  okresie  dwóch  miesięcy 
uzyskano  prawidłowo  wykształcone  siewki  derenia.  Na  podstawie  załoŜonej  kultury 
odmian derenia ‘Devin’ oraz ‘Titus’ oceniono moŜliwość namnaŜania pędów derenia w 
warunkach  sterylnych.  Uzyskano  zadowalający  współczynnik  namnaŜania  pędów, 
wynoszący  od  1:3,8  do  1:4,8;  średnia  długość  pędu  wahała  się  od  2,6  do  3,1  cm  w 
zaleŜności od odmiany i poŜywki.  
 
 
 

APPLYING OF in vitro METHOD IN GENERATIVE 

 

AND VEGETATIVE PROPAGATION 

 

OF CORNELIAN CHERRY (Cornus mas L.) 

 
 

Włodzimierz Lech, Ewa Dziedzic, Monika Bieniasz, Roman Rduch 

 

Department of Pomology and Apiculture, Agricultural University, Kraków 

Key words: 

seed dormancy, in vitro culture, index of multiplication, ‘Devin’, 
‘Titus’ 

 
 

Summary 

 

In  vitro  method  was  applyed  in  generative  and  vegetative  propagation  of 

cornelian cherry. Breaking of the seed dormancy was achieved after a gentle cut of seed 
coat  and  the  addition  of  GA

at  the  concentration  of  0.5  lub  5.0  mg

dm

-3

  into  the  me-

dium. After two months of culture the regular developed seedlings were obtained. The 
shoot culture of two cornelian cherry cultivars ‘Devin’ and ‘Titus’ was established in in 
vitro
  conditions.  The  multiplication  index  ranged  from  1:3.8  to  1:4.8;  mean  length  of 
shoots ranged from 2.6 to 3.1 cm depending on the cultivar and medium.  
 
 
 
Dr inŜ. Ewa Dziedzic 
Katedra Sadownictwa i Pszczelnictwa 
Wydział Ogrodniczy 
Uniwersytet Rolniczy im. H. Kołłątaja 
al. A. Mickiewicza 21 
31-120 KRAKÓW 
e-mail: ewa@ogr.ar.krakow.pl