background image

Wykład: Genetyka bakterii fermentacji mlekowej 
 
Trochę historii 

  Badania nad genetyką bakterii fermentacji mlekowej rozpoczęto dopiero na początku lat 70-tych ubiegłego stulecia. 

  Pierwsze badania dotyczyły plazmidów oraz naturalnego transferu genów u laktokoków. 
 
Obecny stan badań nad genetyką LAB 

  Pogłębianie wiedzy z zakresu genetyki LAB: głównie transferu genów i inżynierii genetycznej LAB. 

  To obecnie jedna z najważniejszych dziedzin mikrobiologii żywności. 
 
Budowa komórki bakteryjnej 
Geny i DNA 
DNA pełni w komórce podwójną rolę:   

  Stanowi materiał dziedziczny, samoodtwarzalny w procesie replikacji i przekazywany komórkom potomnym.   

  Zakodowana  w  nim  informacja  jest  tłumaczona  na  elementy  funkcjonalne,  tzn.  białka,  które  z  kolei  określają 

biologiczne właściwości komórki.   

DNA występuje w komórce w postaci dwóch struktur:    chromosomu i plazmidu. Różnią się one wielkością.   
Chromosom bakteryjny zawiera 1-5x10

6

 par zasad. Plazmid zawiera ich 10

3

 – 10

5

 par zasad.   

Ponad 90% informacji genetycznej znajduje się w DNA chromosomalnym. Reszta na plazmidach.   
Geny występujące w plazmidach mogą w istotny sposób warunkować właściwości biologiczne komórki. 

  W  jednej  komórce  występuje  zwykle  jedna  cząsteczka  chromosomu.  Plazmid  może  występować  w  wielu  kopiach, 

nawet do kilkuset. Zdarza się, że w jednej komórce jest kilkanaście różnych plazmidów, co jest typowe dla LAB.   

  Poszczególne  gatunki  bakterii  różnią  się  między  sobą  wielkością  genomu  (wielkością  DNA  i  ilością  genów 

kodujących informację o komórce). 

 
Chromosom i nukleoid   

  Chromosom  bakteryjny  (czyli  pojedyncza,  kolista  cząsteczka  DNA),  zwany  też  genoforem  jest  zawarty  w 

nukleoidzie. 

  Nukleoid  jest  to  obszar  komórki  bakteryjnej  (priokariotycznej)  będący  odpowiednikiem  jądra  komórkowego  u 

organizmów wyższych (eukariotycznych). Nie jest oddzielony od cytoplazmy otoczką jądrową.   

  Nukleoid wraz z plazmidami zawiera pełną informację genetyczną komórki (genom). 
 
Chromosom 

  Jest to względnie mała, pojedyncza kolista cząsteczka DNA, o długości ok. 200 nm, zawiera 1,8  - 3,4 Mb (mln par 

zasad) (dla porównania: u ludzi genom ma długość 2 metrów i wielkość 3,5 - 5,6 mld pz),   

  Niezwykle długa w porównaniu do wielkości komórek bakteryjnych, niezwykle silne poskręcana (tzw. superhelikalny 

DNA), co pozwala na jej upakowanie w komórce bakteryjnej. 

  Około  75  -  85%  DNA  chromosomu  bakteryjnego  to  geny,  pozostałe  15  -  25%  to  tzw.  międzygenowy  DNA, 

oddzielający  poszczególne  geny  (w  genomie  człowieka  te  proporcje  są  odwrócone  –  tylko  ok.  5%  genomu  koduje 
jakieś białka!). 

  Niektóre geny w chromosomie są pogrupowane w rodziny zwane operonami, 

  Operony kodują białka związane ze sobą funkcjami, zaś geny  w jednym operonie są regulowane z skoordynowany 

sposób, 

  Inne geny są rozmieszczone w chromosomie bakteryjnym przypadkowo. 

  Terminy związane z elementami strukturalnymi chromosomu: 

- introny i eksony, 
- otwarta ramka odczytu (ORF), 
- transpozony. 

 
Introny i eksony 

  Sekwencje kodujące informację są zwykle rozdzielone na serię odcinków DNA, zwanych eksonami. 

  Eksony są porozdzielane przez introny, które nie zawierają użytecznych informacji, 

  Przed  wykorzystaniem  informacji  biologicznej  genów  do  syntezy  białka,  introny  muszą  być  usunięte  z  ciągu 

sekwencji kodującej,   

  W komórkach bakteryjnych intronów jest niewiele. 

background image

 
Otwarta ramka odczytu 

  ORF – z ang. open reading frame,   

  Jest to ciąg nukleotydów rozpoczynający się od kodonu startowego ATG i kończący kodonem końcowym. To znaczy, 

że ORF określa potencjalny gen, kodujący jakiś peptyd, 

  Aby dany OFR mógł być określony jako potencjalny gen musi mieć długość co najmniej 50 kodonów (kodon, inaczej 

triplet, jest to sekwencja 3 nukleotydów kodująca jeden aminokwas), 

  Liczba ORF w genomie wskazuje na liczbę genów kodujących białka. 
 
Transpozony   

  Są  elementami  sekwencji  DNA  zdolnymi  do  przemieszczania  się  w  genomie  (w  bakteryjnym  chromosomie  i 

plazmidach), 

  Mogą być wstawione w dowolnym miejscu chromosomu lub przenoszone w dowolne miejsce w chromosomie 

  Są to elementy niezależne – każdy transpozon koduje enzym transponazę, katalizującą transpozycję transpozonu. 

  Występują w genomach wszystkich organizmów. 

  Są odpowiedzialne za zmiany genetyczne. 

  Istotnie wpływają na ewolucję genomów: 

– plastyczność genomów 
– tworzenie nowych genów 
– regulacja transkrypcji 

  Są narzędziem manipulacji genetycznej. 

  Są najprostszymi elementami ruchomymi.   

  Występują u wielu LAB, 

  Znanych jest wiele rodzajów transpozonów,   

  Przykładem  są  sekwencje  insercyjne  (IS,  z  ang.  insertion  sequences),  które  mogą  być  przenoszone  nawet  z  jednej 

komórki  bakteryjnej  do  innej  podczas  koniugacji  komórek  (jednego  gatunku  lub  gatunków  blisko  spokrewnionych) 
przy użyciu plazmidów. 

 
Sekwencje insercyjne (IS) 

  Najprostsze z transpozonów występujące w chromosomach bakteryjnych i plazmidach. 

  Kodują wyłącznie geny odpowiedzialne za mobilizację i insercję elementów. Wielkość od 768 pz do 5 kpz. 

  Są  odcinkami  DNA,  które  zawierają  gen  kodujący  transpozazę,  otoczony  z  obu  stron  odwróconymi  sekwencjami 

powtórzonymi. Enzym ten umożliwia im przenoszenie się w dowolne miejsca DNA. 

 
Transpozony   

  Zdolność  do  przemieszczania  się  w  genomie  oznacza,  że  mogą  powodować  mutację  genów,  do  których  są 

wprowadzone,   

  Mogą kodować np. zdolność do wytwarzania nizyny, fermentacji sacharozy, oporność na bakteriofagi, antybiotyki lub 

metale  ciężkie  (i  mogą  te  zdolności  przekazywać  innym  bakteriom  własnego  gatunku  lub  gatunków  blisko 
spokrewnionych). 

  Rozprzestrzenianie się wankomycynooporności. Przykład: Gen vanB gene (z lewej) na 64 kb transpozonie jest częścią 

250 kb elementu ruchomego przenoszonego z jednej komórki enterokoka do innej.   

 
Transpozony u LAB 

  U szczepów Lac. lactis spotyka się 5 różnych sekwencji insercyjnych (IS) i u większości takich szczepów występują 

one w co najmniej dwóch kopiach, 

  Niektóre szczepy posiadają koniugacyjne transpozony (wielkości 68 kbp),   

  Sekwencje IS są stwierdzane również u bakterii z rodzaju Lactobacillus Leuconostoc, ale nie u Str. thermophilus.   
 

background image

Plazmidy 

  Są  kolistymi,  superzwiniętymi  dwuniciowymi  cząsteczkami  DNA,  występującymi  obok  chromosomu  bakteryjnego 

prawie u wszystkich bakterii.   

  Są niezależnie replikowanymi cząsteczkami DNA (ich replikacja odbywa się niezależnie od replikacji chromosomu 

komórki), 

  LAB mają plazmidy w różnej liczbie kopii: niskokopiowe (liczba kopii 1 - 50) i wysokokopiowe (liczba kopii 100 - 

x100).   

  Nie są niezbędne dla życia - mogą być usunięte bez szkody dla komórki (nie kodują funkcji, które byłyby konieczne 

do jej życia, ale zwiększają różnorodność zajmowanych środowisk),   

  Ilość genów zgromadzonych w plazmidach odgrywa znaczącą rolę w ewolucji i zdolności adaptacyjnych komórek, w 

których się znajdują.   

  Niektóre małe plazmidy wykorzystują do replikacji (powielania się) enzymy komórkowe, większe plazmidy posiadają 

często geny kodujące własne enzymy replikacyjne, 

  Istnieje wiele różnych plazmidów bakteryjnych,   

  Poszczególne gatunki bakterii mogą posiadać nawet kilka typów plazmidów, ale nie muszą posiadać wszystkich. 
 
5 typów plazmidów 
1.  Typu  R  –  zawierają  geny  kodujące  oporność  np.  na  antybiotyki,  bakteriocyny,  metale  ciężkie.  Mogą  przenosić 

oporność na antybiotyki między gatunkami bakterii, co ma ogromne znaczenie w pojawianiu się antybiotykoopornych 
szczepów  bakterii  patogennych.  Powszechne  stosowanie  antybiotyków  w  lecznictwie,  doprowadziło  do 
rozpowszechnienia się plazmidów R wśród chorobotwórczych bakterii.   

2.  Typu F i umożliwiają przenoszenie  genów  między  komórkami bakteryjnymi  w procesie zwanym  koniugacją.  Mogą 

zawierać dodatkowe geny, przejęte z chromosomu, które są przenoszone do drugiej komórki podczas koniugacji. 

3.  Kolicynowe – na których zlokalizowane są geny kodujące białka zabijające inne bakterie (bakterioncyny). 
4.  Degradacyjne – kodujące białka pozwalające metabolizować nietypowe związki chemiczne, np. toluen, nikotynę. 
5.  Wirulencji – kodujące zdolność wywoływania chorób. 
 
Plazmidy u LAB 

  Są powszechniejsze u laktokoków niż u pałeczek mlekowych, 

  Większość szczepów laktokoków zawiera po 4 - 7 różnych plazmidów, 

  Często spotykane u pałeczek mlekowych i pediokoków,   

  Czasami  stwierdzane  u  Str.  thermophilus,  Lactobacillus  delbrueckii  subsp.  bulgaricus  i  pałeczek  pochodzenia 

jelitowego. 

 
Plazmidy u laktokoków 
Mają szczególne znaczenie, gdyż warunkują cechy użyteczne dla bakterii - kodują cechy istotne dla technologii: 

  aktywność kataboliczna węglowodanów, głównie laktozy i galaktozy,   

  aktywność proteolityczna, 

  produkcja związków zapachowych, 

  zdolność wytwarzania i oporność na substancje    przeciwbakteryjne    (bakteriocyny), 

  oporność na bakteriofagi.   
 
Problemy z plazmidami u LAB 

  Niestabilność przemysłowych szczepów LAB pod względem cech technologicznych jest często powodowana   

utratą plazmidów przez komórki bakteryjne.   

  LAB posiadają 2 typy plazmidów: 

- teta - o masie ponad 10 tys. par zasad, w trakcie replikacji daje 2 identyczne, stabilne cząsteczki plazmidów   
- RCR (rolling-circle replicating) - o masie ok. 10 tys. par zasad, wysokokopiowe, ale niestabilne, przy zaburzeniach 
w replikacji może dać komórki bezplazmidowe. 

Wiadomo już, że na stabilność plazmidów w komórce wpływ ma np. mechanizm replikacji.     
Plazmidy niestabilne  wykorzystują  mechanizm replikacji typu  RCR (rolling circle replication, mechanizm toczącego się 

koła). 

Plazmidy stabilne - mechanizm replikacji theta.   
Gubienie  plazmidów  przez  komórki  bakteryjne  powoduje  brak  stabilności  cech  szczepów  przemysłowych  podczas 

przeszczepiania i pasażowania. 

background image

Jest  to  powodowane  tym  że  jedna  z  form  pośrednich,  jaka  powstaje  w  trakcie  replikacji  plazmidu  według  mechanizmu 

RCR, jest jednoniciowy DNA.   

Obecność jednoniciowego DNA jest przyczyną strukturalnej i segregacyjnej niestabilności plazmidu.   

  Komórka  bezplazmidowa  DAJE  w  następnym  pokoleniu  już  tylko  komórki  bezplazmidowe,  a  ta,  która  zawiera 

jeszcze plazmidy MOŻE dać potomstwo bezplazmidowe. 

  Małe  plazmidy  (<  5  kb)  stwierdzane  u  Lactobacillus  sp.,  podobnie  jak  wiele  innych  plazmidów  bakterii 

Gram-dodatnich, wykazują organizację modułową i są replikowane jak plazmidy RCR.   

 
Wymiana informacji genetycznej między LAB 

  Horyzontalne przekazywanie genów - wymiana DNA między bakteriami. 

- w szerokim zakresie gospodarzy - między przedstawicielami różnych gatunków, a nawet różnych rodzajów. 
- w wąskim zakresie gospodarzy - w obrębie tego samego gatunku. 

  Wertykalne przekazywanie genów - dziedziczenie genu przez potomstwo.   
 
Wyróżniono trzy rodzaje horyzontalnego przekazywania genów: 

  Koniugacja 

  Transdukcja 

  Transformacja 
 
Koniugacja   

  Koniugacja    wymaga  bezpośredniego  kontaktu  komórek.  W  taki  sposób  przekazywane  są  plazmidy  i  transpozony 

koniugacyjne, które są zdolne do tworzenia i wykorzystywania mostka koniugacyjnego. 

  Przenoszonym  materiałem  genetycznym  może  być  plazmid  lub  fragment  chromosomu,  który  jest  transferowany 

dzięki plazmidowi. 

  Plazmid  F  może  być  autonomiczny  lub  zintegrowany  z  chromosomem  bakterii  (ten  drugi  przypadek  ułatwia 

przeniesienie genów do innej komórki bakteryjnej w procesie koniugacji). 

 
Transdukcja   

  LAB  mogą  pozyskiwać  nowe  geny  poprzez  transdukcję,  czyli  za  pośrednictwem  bakteriofagów.  Zazwyczaj 

przenoszony  jest  tylko  mały  fragment  DNA.  Nie  wszystkie  bakteriofagi  mają  zdolność  do  transdukcji,  nie  każda 
bakterię można transdukować.   

 
Transformacja   

  Transformacja  oznacza  pobranie  DNA  ze  środowiska,  w  formie  rozpuszczalnego  DNA,  uwolnionego  z  komórek 

bakteryjnych. Ten sposób przekazywania genów między bakteriami został wykryty jako pierwszy. 

  Transformacja  naturalna  zachodzi  w  środowisku  naturalnym.  Bakterie  mogą  pobrać  w  ten  sposób  liniowy, 

jednoniciowy fragment DNA przy udziale kompleksu białkowego obecnego w błonie cytoplazmatycznej. 

  Transformacja  sztuczna  ma  na  celu  obejście  tych  wyspecjalizowanych  kompleksów  białkowych.  W  celu 

wprowadzenia  obcego  DNA  do  komórki  stosuje  się  szok  chemiczny  lub  elektryczny.  W  ten  sposób  wprowadza  się 
fragmenty  liniowe,  dwuniciowe  lub  całe  plazmidy.  Obcy  fragment  DNA,  który  dostanie  się  do  komórki  bakterii  w 
wyniku  transformacji  (naturalnej  lub  sztucznej),  może  być  włączony  do  genomu  bakterii  w  wyniku  rekombinacji 
homologicznej lub zostać zniszczony. 

  W  warunkach  in  vitro  transformacja  polega  na  wymieszaniu  czystych  hodowli  bakteryjnych  z  wyizolowanym  i 

oczyszczonym DNA, pobranym od innych bakterii. Te komórki, które pobrały DNA, są następnie selekcjonowane  i 
namnażane w hodowlach.   

  Metoda transformacji jest wykorzystywana w laboratoriach do mapowania (poznawania) i manipulowania informacją 

genetyczną (modyfikacji genetycznych). 

  Sposoby transformacji: 

- kompetencja (naturalna zdolność niektórych gatunków bakterii do pobierania DNA, np. Streptococcus), 
- indukcja kompetencji różnymi zabiegami (u komórek niezdolnych do kompetencji naturalnej), 
- protoplastyzacja komórek Gram-dodatnich, 
-  elektroporacja  (zmiana  przepuszczalności  błon  biologicznych  pod  wpływem  pola  elektrycznego  i  transformacja 
plazmidowego DNA). 

 
 

background image

Po co nam wiedza o genach LAB? 

  Ułatwia  lub  umożliwia  bardzo  dokładną  klasyfikację  i  identyfikację  LAB  (homologia  genów,  głównie 

sekwencjonowanie i porównanie fragmentów restrykcyjnych 16S rDNA w reakcji PCR). 

  Ale  poznanie  sekwencji  genów  to  nie  jest  wszystko  -  trzeba  jeszcze  poznać  białka,  które  są  kodowane  i  ich 

właściwości. 

  Pozwala na poznanie narzędzi (np. wektorów plazmidowych) do udoskonalania szczepów LAB stosowanych   

przemysłowo. 

  Umożliwia otrzymanie nowych szczepów LAB o lepszych lub nowych właściwościach:     

- zdolnościach fermentacyjnych lub  wzrostowych (np. szybsza fermentacja, lepsze cechy sensoryczne żywności 
fermentowanej, hamowanie rozwoju patogenów lub mikroflory psującej żywność),   
- brak wytwarzania niepożądanych substancji ubocznych fermentacji, np. gorzkich peptydów,   
- większej odporności na czynniki stresowe lub bakteriofagi. 

  Umożliwia otrzymanie szczepów LAB o nowych właściwościach, np.:     

- wytwarzania substancji antybiotycznych, utrwalających żywność, składników odżywczych (takich jak witaminy, 
aminokwasy),   
- rozkładania lub neutralizacji substancji szkodliwych, np. alergenów, mykotoksyn, metali ciężkich, cholesterolu. 

  Możliwość  wykorzystania  LAB    dla  poprawy  zdrowia  ludzi  (profilaktycznie  i  jako  terapeutyki,  bez  skutków 

ubocznych dla organizmu człowieka). 

  Możliwość regulacji szlaków metabolicznych LAB 

 
Najnowsze efekty? 

  Regulacja metabolizmu aminokwasów i peptydów podczas wzrostu w mleku proteinazo-dodatnich (Prt+) i -ujemnych 

(Prt-) szczepów Lactococcus lactis. 

 

Badania  nad  zwalczaniem  bakterii  patogennych  metodą  alternatywną  do  antybiotyków,  przy  użyciu  plazmidów, 
zwaną  strategią  „Konia  trojańskiego”.  Strategia  „Konia trojańskiego”  polega  na  zabiciu  patogennej  bakterii  przez 
wprowadzenie zabójczego plazmidu przy pomocy koniugacji z komórką nieszkodliwej bakterii.   

  Bakterie  mlekowe  być  może  pomogą  walczyć  z  AIDS.  Naukowcom  z  Brown  Medical  School  w  USA  udało  się 

zmodyfikować bakterie mlekowe w ten sposób, że wytwarzają lek przeciwko HIV (białko nazwane cynowiryną, które 
łączy  się  z  wirusem  HIV  i  zapobiega  jego  przyłączeniu  do  komórek  błony  śluzowej).  Zespół  naukowców  dokonał 
tego  używając  metody  elektroporacji.  Przez  komórki  bakterii,  zawieszone  w  roztworze  ochronnym  (PEG,  glikol 
polietylenowy),  przepuścili  impulsy  silnego  prądu  stałego.  Spowodowało  to  utworzenie  małych  porów  w  błonie 
komórkowej  bakterii.  Dzięki  temu,  zawieszone  w  roztworze  cząsteczki  DNA  mogły  wniknąć  do  wnętrza  komórek 
bakteryjnych i bakterie zaczęły produkować białko, którego gen został do nich wprowadzony.