1
II (B) OPIS POSZCZEGÓLNYCH PRZEDMIOTÓW
Nazwa jednostki
prowadzącej kierunek
Wydział Biologii i Ochrony Środowiska
Nazwa kierunku
Biotechnologia
Specjalność
Biotechnologia roślin użytkowych, Biotechnologia środowiska
II B 1.
Nazwa przedmiotu
Genetyka molekularna
Katedra prowadząca: Katedra Genetyki
Katedra
współpracująca:
Katedra
Biochemii,
Katedra
Mikrobiologii
II B 2.
Kod przedmiotu
II B 3.
Typ przedmiotu
Obowiązkowy
II B 4.
Poziom przedmiotu
Ś
rednio zaawansowany
II B 5.
Rok studiów, semestr Rok II, semestr 4 - Studia I stopnia
II B 6.
Liczba punktów
5
II B 7.
Metody nauczania
Wykłady (30 godz.) z wykorzystaniem środków audiowizualnych,
prowadzone przez 15 tygodni (2 godz./ tydzień). Ćwiczenia
(30 godz.) w laboratorium biologii molekularnej, polegające na
wykonywaniu doświadczeń na podstawie instrukcji, analizie
uzyskanych wyników i przygotowaniu pisemnych sprawozdań,
prowadzone przez 6 tygodni (5 godz./ tydzień).
II B 8.
Język wykładowy
Polski
II B 9.
Imię i nazwisko
wykładowcy
Prof. dr hab. Iwona Szarejko
dr Justyna Guzy-Wróbelska – koordynator
II B 10. Wymagania wstępne
Znajomość podstaw zjawisk fizycznych i chemicznych oraz
podstaw genetyki, mikrobiologii i biochemii.
II B 11. Cele przedmiotu
(wskazane jest
określenie celów jako
efektów kształcenia i
kompetencji)
Uzyskanie podstawowej wiedzy z zakresu genetyki molekularnej
i technik molekularnych.
II B 12. Treści merytoryczne
przedmiotu
W
YKŁADY
Anatomia
genomów
pro-
i
eukariotycznych
(organizacja, struktura i wielkość genomów, organizacja
i
znaczenie
pozachromosomowego
DNA,
projekty
sekwencjonowania genomów, budowa genomu człowieka).
Ruchome
elementy
genetyczne.
Molekularne
podstawy
i genetyczne skutki transpozycji. Molekularne podstawy ewolucji
genomów. Regulacja ekspresji informacji genetycznej u Pro-
i Eukaryota na różnych poziomach jej realizacji. Budowa i rola
białek
wiążących
DNA.
Dziedziczenie
epigenetyczne.
Podstawowe metody badania struktury i funkcji genów
i genomów.
Ć
WICZENIA
Izolacja chromosomalnego DNA z komórek bakterii
E.
coli. Izolacja plazmidowego DNA z komórek szczepów bakterii
Pseudomonas
sp. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia
i czystości izolowanego DNA. Horyzontalny transfer genów
u bakterii, koniugacja bakterii. Wektory pochodne fagów.
Transdukcja ogólna Salmonella sp. przy pomocy faga P22.
Restrykcja DNA roślinnego i faga Lambda za pomocą enzymów
restrykcyjnych oraz ligacja fragmentów restrykcyjnych. Reakcja
PCR i projektowanie starterów do PCR.
II B 13. Metody oceny
Ć
wiczenia:
po
zakończeniu
każdego
eksperymentu
laboratoryjnego kolokwium pisemne w postaci pytań testowych
otwartych i opisowych lub/i pozytywna ocena ze sprawozdania.
