background image

 

 

 
 
 

Ćwiczenie 2. Ocena efektywności oczyszczania ścieków w modelowym 

systemie „osadu czynnego”

  

 

1.  Wprowadzenie  

Azot  i  fosfor są substancjami  biogennymi (biogenami), tzn. umożliwiają i  intensyfikują 

procesy wzrostu zarówno komórek roślinnych, jak i bakteryjnych. Znajdując się w wodach w 
większych ilościach, powodują zaburzenie naturalnej równowagi w zbiorniku. Przyjmuje się, 
iż  nadmierny  rozwój  glonów  w  odbiorniku,  mogą  powodować  stężenia  azotu  powyżej  0,3 
mg/dm

3

  i  stężenia  fosforu  większe  od  0,1  mg/dm

3

.  Zjawisko  przejawiające  się  poprzez 

zwiększanie żyzności (trofii) tj. wzrost stężenia związków biogennych (fosforu P i azotu N) w 
środowisku  wodnym  nosi  nazwę  eutrofizacjii.  Proces  eutrofizacji  jest  jak  najbardziej 
naturalny,  lecz  uległ  nasileniu  na  skutek  zintensyfikowania  rozwoju  gospodarki,  nawożenia 
pół uprawnych i degradacji obszarów lesistych. Jednakże głównym źródłem przedostawania 
się związków biogennych do rzek i jezior są ścieki miejskie.  

Z tej przyczyny niezbędne stało się wprowadzenie aktów prawnych ograniczających ilości 

azotu, fosforu jak również związków organicznych zrzucanych do odbiornika [1], a co za tym 
idzie,  poprawę  skuteczności  oczyszczania.  Technologia  ”osadu  czynnego”  jest 
najpowszechniej  stosowaną  metodą  usuwania  biogenów  ze  ścieków  bytowo-gospodarczych 
na biologicznych oczyszczalniach ścieków.  

Oczyszczanie  ścieków  metodą  osadu  czynnego  jest  wzorowane  na  tlenowych  procesach 

samooczyszczania  zachodzących  w  wodach  powierzchniowych  i  polega  na  mineralizacji 
zanieczyszczeń  organicznych  znajdujących  się  w  ściekach  przez  drobnoustroje  osadu 
czynnego  w  instalacjach  technicznych.  W  wyniku  tego  procesu  mikroorganizmy  uzyskują 
energię  niezbędną  do  życia,  powstają  mineralne  formy  węgla,  azotu,  fosforu  i  siarki  oraz 
następuje  przyrost  biomasy.  Nadmiar  organizmów  wynikający  z  rozkładu  związków 
organicznych, tzw. osad nadmierny, jest usuwany z systemu 

Intensyfikacja  procesu,  w  porównaniu  z  naturalnym  samooczyszczaniem,  polega  na 

sztucznym  natlenieniu  środowiska  wodnego,  oraz  na  zwiększeniu  ilości  drobnoustrojów 
biorących  udział  w  procesie,  co  pozwala  na  doprowadzenie  większej  ilości  zanieczyszczeń. 
Powietrze doprowadzane do komór napowietrzania spełnia podwójną funkcję:  

i)  utrzymuje cieki i osad stałym ruchu, uniemożliwiając opadanie osadu na dno zbiornika  
ii)  tlen  zawarty  rozpuszczony  w  ściekach  służy  jako  substrat  w  reakcjach 

biochemicznego utleniania zanieczyszczeń zawartych w ściekach. 

Osad  czynny  jest  kłaczkowatą  zawiesiną  złożoną  głównie  z  bakterii  (z  rodzaju 

Pseudomonas,  Acinetebacterium,  Zooglea,  Enterobacteriae,  Aeromonas,  Flavobacterium, 
Achromobacter,  Micrococcus
),  a  także  pierwotniaków  -  orzęsków  (z  rodzaju  Paramecium, 
Vorticella,  Aspidisca,  Suctoria
)  i  wiciowców  (z  rodzaju  Tetramitus,  Trigonomonas,  Bodo), 
oraz  wrotków  i  niektórych  grzybów.  Kłaczki  osadu  czynnego  powstają  na  skutek 
wydzielania  przez  komórki  bakteryjne  otoczek  śluzowych,  w  wyniku  czego  powstają 
regularne formy zooglenalne („skupiska zooglenalne”). 

 

background image

 

 

 
 
 

2. Cel  

Celem  niniejszych  zajęć  laboratoryjnych  jest  ocena  efektywności  biologicznego 

oczyszczania  ścieków  (usuwania  N,P  i  zw.  organicznych)  w  modelowym  reaktorze  osadu 
czynnym.

 

 
 
 
 

3.Zabiegi wstępne 

 
Zapoznać się z budową modelowego systemu osadu czynnego. 
 
 

Scieki 
Oczyszczone

Osadnik

Recyrkulacja osadu

Scieki 
Surowe

Komora 
napowietrzania

Osad nadmierny

 

 
 

Rys.1 Schemat systemu osadu czynnego 

 
 
 
Grupa studencka dzieli się na zespoły, z których każdy będzie wykonywał dane oznaczenia 
zanieczyszczeń w ściekach dopływających jak również odpływających z układu.  

 


 

 

background image

 

 

 
 
 

Tabela 1.Zakres i metody oznaczeń 

Oznaczenie 

Metoda oznaczenia 

ChZT 

standardowa metoda dwuchromianowa 

Azot amonowy 

metoda  kolorymetryczna  (z  wersenianem  sodowym  i  odczynnikiem 
Nesslera) SPEKOL 11 firmy Carl Zeiss Jena  

Azot azotynowy 

metoda kolorymetryczna (z kwasem sulfanilowym i alfanaftyloaminą)  
SPEKOL 11 firmy Carl Zeiss Jena  

Azot azotanowy 

metoda kolorymetryczna (z 2,6 dimetylofenolem), SPEKOL 11 firmy 
Carl Zeiss Jena  

Fosforany 

metoda kolorymetryczna (z kwasem askorbinowym i odczynnikiem 
mieszanym) SPEKOL 11 firmy Carl Zeiss Jena 

 
 

4.Wykonanie ćwiczenia 

 

 Badania  należy  rozpocząć  od  pobrania  próbek  ścieków  surowych  (dopływ)  oraz 

ścieków oczyszczony (odpływ) w ilości ok. 300 ml. Pobrane próbki przefiltrować na filtrze 
twardym  w  celu  usunięcia  zawiesin.  W  filtracie  należy  oznaczyć  zanieczyszczenia  wg 
metodyki podanej w Tabeli 1. 
 
UWAGI! 
 
 Do każdego oznaczenia należy przygotować próbkę referencyjną tzw. „ślepą” na wodzie 
destylowanej. 
  Przed  oznaczeniem  należy  przygotować  odpowiednie  rozcieńczenie  umożliwiające 
detekcję. Wykorzystywana metoda pozwala na oznaczenie stężenia w granicach 0,1- 2,5 mg/l. 
Przykładowo stężenie w ściekach N - NH

4

+

 = 50 mg/l., stąd proponowane rozcieńczenie 1:25 

(tj. 25 razy). 
 Oznaczone stężenia fosforanów należy przeliczyć na stężenie fosforu (mg PO

4

3-

  mg P). 

 

Wyniki analiz zespołów studenckich należy zebrać w tabeli 2. 

 
Tabela 2 

Oznaczenia 

Jednostki 

Ścieki 

surowe 

Ścieki 

oczyszczone 

Stopień 

usunięcia [%] 

Norma 

ChZT 

[mgO

2

/dm

3

 

 

 

 

Azot amonowy 

[mgN-NH

4

+

/dm

3

 

 

 

 

Azot azotynowy 

[mgN-NO

2

-

/dm

3

 

 

 

Azot azotanowy 

[mgN-NO

3

-

/dm

3

 

 

 

Fosfor 

[mg P/dm

3

 

 

 

 

*BZT

5

 

[mgO

2

/dm

3

 

 

 

 

*Biochemiczne Zapotrzebowanie na Tlen (frakcja zw. organicznych rozkładalna biologicznie) dla ścieków 

surowych przyjąć BZT

5

= 0.7 ChZT, dla ścieków oczyszczonych przyjąć BZT

5

= 0.1 ChZT 

 

 

 

background image

 

 

 
 
 

5.Opracowanie wyników  

Na podstawie zebranych wyników analiz (Tabela 2) sekcje 4-5 osobowe opracowują wyniki.  
5.1.  Uzupełnij  tabelę  3  i  dokonaj  oceny  efektywności  biologicznego  oczyszczania  ścieków 
(usuwania zanieczyszczeń organicznych ChZT, BZT

5

 oraz N i P) w reaktorze osadu czynnego 

w oparciu o dane literaturowe [1].  
5.2. Przeprowadź dyskusję wyników zmian zanieczyszczeń w reaktorze ze zwróceniem uwagi 
na procesy biologiczne tam zachodzące (nitryfikacja, usuwanie związków organicznych).  

 

6. Literatura  

1.  Rozporządzenie  Ministra  Środowiska  z  dnia  24  lipca  2006  (Dz.U.06.137.984.)  ( 

zmiana  z    dnia  28  stycznia  2009  r.  DZ  U  2009  R.  NR  27  POZ.  169)    w  sprawie 
warunków, jakie należy spełnić przy wprowadzaniu ścieków do wód lub do ziemi oraz 
w sprawie substancji szczególnie szkodliwych dla środowiska wodnego

 

 

2.   „Biotechnologia  ścieków”  -  praca  zbiorowa  pod  redakcją  Korneliusza  Mikscha; 

wydawnictwo Politechniki Śląskiej; Gliwice 2000 r.  

3.  „Poradnik  eksploatatora  oczyszczalni  ścieków”  –  praca  zbiorowa  pod  redakcją  Z. 

Dymaczewskiego, J. Oleszkiewicza, M Sozańskiego ; Poznań 1997 r. 

4.   „Biotechnologia  w  ochronie  środowiska”  Klimiuk  Ewa,  Łebkowska  Maria,  ISBN  83-01-

14067-4, Wydawnictwo Naukowe PWN SA, Warszawa 2005. 

 

7. Pytania kontrolne: 

1.  Co to jest osad czynny? 
2.  Na czym polega proces nitryfikacji?  
3.  Wyjaśnij, na czym polega oczyszczanie ścieków metodą osadu czynnego (na podstawie 

schematu na rys. 1)? 

4.  Jaką grupę zanieczyszczeń charakteryzuje parametr ChZT? 
5.  Co to jest odbiornik ścieków? 
6.  Jakie związki określamy mianem substancji biogennych? 
7.  Co to jest „osad nadmierny”?  
8.  Co to są ścieki? 
9.  Co to jest eutrofizacja i jak wpływa na odbiornik ścieków? 
10. Jaką rolę pełni napowietrzanie w komorze napowietrzania?  

 
8. Uwagi dodatkowe  

 

Zaliczenie ćwiczenia:  

 

-  Sekcje 3-4 osobowe przygotowują 1 sprawozdanie (instrukcja punkt  

5)

 

 

 
 

UWAGA! 
 
Termin oddania: 2 tygodnie od daty wykonanego ćwiczenia!!!  
 
 

 

 

background image

 

 

 
 
 

Załącznik 1