background image

 

Izolacja limfocytów ze śledziony

 

Ułożyć mysz na prawym boku. 

 

Odkazić skórę etanolem. 

 

Naciąć a następnie odciągnąć skórę. 

 

Przeciąć otrzewnę i  uwidocznić śledzionę. 

 

Wyciąć śledzionę (nożyczki i pęsetka). 

 

Umieścić śledzionę na szalce Petrie’go  z 10% MEM. 

 

„Wyczesać” śledzionę igłą preparacyjną lub nożyczkami. 

 

Zebrać płyn (z limfocytami) do probówki. 

 

Odstawić zawiesinę na 15 min. w celu oddzielenia się większych fragmentów tkanki. 

 

Zebrać klarowny płyn do probówek. 

 

Wirować – 1500 rpm przez 5 min. 

 

Zlać supernatant. 

 

Osad komórek zawiesić w 0,5-1ml 10% MEM. 

 

Określenie żywotność limfocytów: 

 

Poprać próbkę zawiesiny komórek i rozcieńczyć 1:10 w PBS . 

 

Dodać 4 krople 0,1% wodnego roztworu błękitu trypanu. 

 

Kroplę zabarwionej zawiesiny nanieść na szkiełko podstawowe i nakryć szkiełkiem 
nakrywkowym. 

 

Policzyć 100 komórek, określając jaki procent komórek zabarwił się koloidowym 
barwnikiem (są to komórki martwe). 

 

Wynik wyrazić w procencie żywych komórek.