background image

 

 

Badania laboratoryjne

Badanie płynu przesiękowego i wysiękowego

Gromadzenie się płynu w jamie otrzewnowe, opłucnowej i przestrzeniach tkankowych jest zawsze 

objawem chorobowym

Rozróżnianie przesięku i wysieku próbą Rivalty – próba ma na celu różnicować płyny na zasadzie 

koagulacji białka pod wpływem kwasu octowego. Zawartość białka w płynie wysiękowym jest 

wyraźnie większa niż w przesiekowym

Wykonanie: do 100ml wody destylowanej dodać 2 krople kwasu octowego lodowatego. 

Następnie wkraplać pojedyncze krople badanego płynu i obserwować wygląd opadających 

kropli

Ocena wyniku: widoczne przejrzyste smugi, bez zmętnienia lub z lekka opalescencja kropli 

wskazuje na płyn przesiekowy. Wyraźne zmętnienie wpuszczonej kropli wskazuje na wysięk

Badanie właściwości fizycznych – określa się je oglądając świeży płyn w szklanym naczyniu

Określenie barwy: bezbarwny, jasnożółty, żółty, brunatny, czerwony, krwisty

Określenie przejrzystości i konsystencji: przejrzysty, słabo metny, włóknikowy, posokowaty, 

ropny, szybko krzepnący

Określenie woni: bezwonny, gnilny, amoniakalny, moczu

Gęstość: 1,018 – przesięk, powyżej 1,018 - wysięk

background image

 

 

Badania laboratoryjne

Badanie płynu przesiękowego i wysiękowego

Ocena wyników:

Płyn przesiękowy – gromadzi się bez odczynu zapalnego, na wskutek zastoju 

żylnego i zwiekszonej przepuszczalności naczyń. Towarzyszy niewydolności serca, 
marskości wątroby, nerek lub nowotworom wątroby. Płyn przesiekowy u psów i kotów 
może być czasami mętny, barwy mlecznej, na wskutek domieszki chłonki lub 

kropelek tłuszczu

Płyn wysiekowy – gromadzi się w wyniku odczynu zapalnego, jako efekt urazu, 
zakażenia bakteryjnego, choroby nowotworowej o charakterze złosliwym. Płyn o 
barwie krwistej i woni gnilnej świadczy o obecności nowotworu w stadium rozpadu

próba Rivalty

barwa

przejrzystość

woń

ciężąr

przesiek

ujemne

przejrzysty

bezwonny

Do 1,018

wysiek

dodatnia

żółty, krwisty

gnilny

Ponad 1,018

rodzaj 

badania

zawartość 

białka

elementy 

osadu

bezbarwny, 

jasnożółty

0,5 – 

3g/100ml

pojedyncze 

komórki 

nabłonka

mętny, 

posokowaty, 

ropny, 

włóknikowy

ponad 

3g/100ml

liczne 

granulocytu, 

erytrocyty, 

komórki 

nabłonka

background image

 

 

Badania laboratoryjne

Badanie krwi obwodowej

Oznaczanie zawartości hemoglobiny – metoda cyjanmethemoglobinowa wg Drabkina

Pod wpływem odczynnika Drabkina hemoglobina i jej pohodne ulegają 

przekształceniu w cyjanmethemoglobine, której gestość optyczna mierzy się 
fotoelektrycznie

Zestaw:

Kolorymetr

Odczynnik Drabkina

Probówki zwykłe w statywie

Pipeta 5 ml, pipeta Sahliego 0,02 ml

Wykonanie: do 5 ml odczynnika Drabkina wlać 0,02 ml badanej krwi i odstawić na 5 

min. następnie odczytać wynik za pomocą fotokolorymetru przy długości fali 540 nm. 
Następnie wyliczamy z wzoru Hb w g/100ml=E próby/E wzorca*współczynnik

Ocena wyników: spadek ilości hemoglobiny najczęściej w stanach niedokrwistości, 
wzrost najczęściej w stanach odwodnienia, co wiąże się z zagęszczeniem krwi

background image

 

 

Badania laboratoryjne

Badanie krwi obwodowej

Oznaczanie liczby hematokrytowej – jest to wyrażony w procentach stosunek 

objetoścowy składników upostaciowanych krwi do osocza w okreslonych warunkach 
wirowania

Zestaw:

Mikrohematokryt (wirówka z tarczą i czytnik)

Kapilary heparynizowane

Wykonanie: kapilarę należy przytknąć do kropli krwi, po wypełnieniu do ¾ długości, 
zatapiamy wolny koniec w płomieniu palnika, następnie umieszczamy kapilary na 

tarczy wirówki, zatopionym końcem na zewnątrzy i wirujemy przez 5 min przy 6000 
obr./min. Następnie kapilarę wkładamy do czytnika, ustawionego na podziałce 100. 
dolna granica słupka krwinek przy zatopionym końcu kapilary musi równać się z 

zaznaczona na listewce dolna kreską. Ruchome ramie czytnika ustawiamy tak, zby 
jej środkowa kreska przcinała się z górnym końcem słupa osocza. Następnie nie 
poruszając linijki, przesuwamy listewkę z kapilara w lewo do momentu przecięcia się 

kreski na linijce z górnym końcem słupa krwinek

Ocena wyników: spadek najczęściej w niedokrwisrtościach, spadek ilości krwinek 
czerwonych lub uwodnienie krwi, wzrost – stany odwodnienia organizmu

background image

 

 

Badania laboratoryjne

Badanie krwi obwodowej

Oznaczanie liczby krwinek metodą komorową

Zestaw

Mikroskop

Komora Thoma, Burknera lub Thoma – Neu

Mieszalnik do krwinek czerwonych (z czerwoną perełką)

Płyn Hayema

Wykonanie: badaną krew pobrać do mieszalnika do podziałki 0,5, obetrzeć watą 
koniec mieszalnik, wciągnąć płyn Hayema do podziałki 101. wymieszać przez 
obracanie. Otrzymujemy krew rozcieńczoną w stosunku 1:200. następnie 

przygotowujemy komre do obliczeń: siatkę hemocytometru nakrywamy szkiełkiem 
nakrywkowym , nasuwając ją lekko na zwilzone słupy komory, az do uzyskania 
prązków tęczowych. Tak przygotowaną komorę ustawiamy na stoliku i odszukujemy 

pod małym powiekszeniem siatkę. Rozcieńczoną krew znowu mieszamy przez 1 min, 
pierwsze 2 – 3 krople upuszczamy na watę i dopiero 4 krople umieszczamy na brzeg 
komory, tak aby zawartośc dostała się pod szkiełko. Po ustaniu ruchu krwinek 

liczymy ich ilość w 5 dużych kwadratach czyli 80 małych (komora Thoma). Ażeby 
otrzymać ilość krwinek w 1 mm3 obliczoną ilośc krwinek mnożymy przez 10000

background image

 

 

Badania laboratoryjne

Badanie krwi obwodowej

Oznaczanie liczby krwinek białych metodą komorową

Zestaw:

Mikroskop

Mieszalnik do krwinek białych (z białą perełką)

Komora Thoma

Płyn Turcka

Wykonanie: do mieszalnika nabieramy krwi do podziałki 0,5, następnie wycieramy 
wata o nabieramy rozcieńczalnika Tuckera do podziałki 11. otrzymujemy krew 
rozcieńczoną w stosunku 1:20. przygotowujemy komore jak przy badaniu krwinek 

czerwonych. Następnie mieszamy ponownie krew, spuszczamy 1 – 2 krople i trzecią 
wprowadzamy do komory. Po ustaniu ruchu krwinek obliczamy we wszystkich 
kwadratach siatki liczbe krwinek. Ażeby otrzymać ilość krwinek w 1mm3 mnozymy 

przez 200

background image

 

 

Badania laboratoryjne

Badanie krwi obwodowej

Oznaczanie obrazu białokrwinkowego (leukogram)

Zestaw: 

Mikroskop z obiektywem imersyjnym

Szkiełka podstawowe

Cylinder miarowy 100 ml

Kuweta z mostkiem do barwienia

Alkohol metylowy

Barwnik Giemsy i May – Grunwalda

Wykonanie: na szkiełko podstawowe należy pobrać małą krople krwi, następnie drugim 

szkiekiem o gładkim brzegu dotknąć krew tak aby rozpłyneła się wzdłuż krawędzi i niezbyt 

szybkim ruchem ciągłym rozprowadzić krew na cała długość szkiełka podstawowego. Rozmaz 

powinien być węższy od szerokości szkiełka, jednolity i cienki. Rozmazy suszymy na wolnym 

powietrzu w temperaturze pokojowej

Barwienie metodą Giemsy – wysuszone preparaty utrwalamy w alkoholu metylowym przez 3 

min. następnie barwimy roztworem barwnika (1 – 2 krople barwnika na 1 ml wody) przez 15 – 
20 min, spłukujemy wodą destylowaną i ponownie barwimy 10 – 15 min, następnie płuczemy 

woda destylowaną i pozostawiamy do wyschnięcia

background image

 

 

Badania laboratoryjne

Badanie krwi obwodowej

Barwienie metodą Pappenheima – barwimy preparaty wyschniete, nieutrwalone. Na 

wyschniety preparat nalewamy barwnik May – Grunwalda na 3 min, po tym czasie 
bez zlewania barwnika dodajemy równą ilośc wody destylowanej i pozostawiamy na 2 
– 3 min, spłukujemy woda i wycieramy zabarwiony spód szkiełka i barwimy 
roztworem wodnym barwnika Giemsy przez 10 – 15 min. następnie spłukujemy i 

suszymy

Technika liczenia: na wysuszony rozmaz dajemy krople olejku imersyjnego i 
oglądamy preparat pod obiektywem 100x, oglądamy preparat linią łamaną i każdą 
znalezioną krwinke zapisujemy na papierze lub przy użyciu licznika do krwinek 

białych

background image

 

 

Erytrocyty

background image

 

 

Neutrofil

background image

 

 

Eozynofil

background image

 

 

Bazofil

background image

 

 

Limfocyt

background image

 

 

Monocyt

background image

 

 

Trombocyt

background image

 

 

Badania laboratoryjne

Badanie krwi obwodowej

Oznaczanie czasu krzepnięcia krwi metoda Lee – White'a

Wykonanie: krew pobieramy z żyły strzykawką płukaną płyn fizjologicznym. Do 

probówki wypłukanej płynem fizjologicznym wlewamy 2 ml krwi i właczamy stoper i 
wkładamy probówke do łaźni wodnej 37ºC i co 30 sek przechylamy probówkę w celu 
stwierdzenia końcowego momentu krzepnięcia. Jako końcowy moment krzepnięcia 
przyjmuje się czas, w którym zostanie zatrzymany swobodny przepływ krwi. Wynik 

podaje się w minutach i sekundach

Ocena wyników: 

Przedłużenie czasu krzepnięcia może wystepować w niektórych chorobach 
zakażnych, niedokrwistości i skazach krwotocznych

Skórcenie czasu krzepnięcia może wystepować po krwotokach, w stanach 
wyniszczenia, po podaniu witaminy C i K, oraz środków zwiększających 
krzepliwość krwi