background image

Immunologia 

– prelekcja 29.10.2007 

 

Zastosowanie metod immunodiagnostycznych to: 

 

Diagnostyka chorób zakaźnych i inwazyjnych 

  Ustalanie grup krwi 

 

Określanie antygenów zgodności tkankowej HLA 

 

Ocena stanu czynnościowego ukł. odpornościowego 

  Oznaczanie poziomu wielu białek w płynach ustrojowych 

 
Techniki immunodiagnostyczne dzielimy na: 

  Oparte o reakcje antygen-przeciwciało 

o  Aglutynacja 
o  Precypitacja 
o  Neutralizacja 

Z zastosowaniem znaczników 

o  Immunomorfologiczne 

Z udziałem dopełniacza 

 

Immunologii komórkowej 

o  Ocena poszczególnych subpopulacji komórkowych 

 
Uwarunkowania wyboru testu – zależy on od: 
 

1.  Rodzaju materiału

 

Płyn ustrojowy (krew, mocz, limfa, płyn z jam surowiczych, PMR) 

 

Zawiesina komórek (limfocyty z krwi obwodowej, granulocyty z krwi obwodowej, 
homogenat tkankowy)  

2.  Poszukiwanego składnika (antygen, przeciwciało, kompleks immunologiczny) oraz jego 

występowania (w postaci wolnej lub związanej z komórką lub tkanką)  

3.  Celu badania – czy określamy obecność poszukiwanego elementu w badanym materiale 

(metody jakościowe) czy też jego stężenie (metody ilościowe) 

4.  Spodziewanego stężenia poszukiwanego składnika (od tego zależy czułość metody) 
5.  Wiarygodności danego testu i jego wartości diagnostycznej 

 
Zasady pobierania materiału 
 

Materiał pobierać należy zgodnie z zasadami aseptyki, czyli przyrządy – w tym nasze ręce - i 

pojemnki winny być jałowe ;), powinniśmy także pobrać materiał w wystarczającej do badania ilości. 
Pobieramy go w odpowiednim czasie np. kilka dni po rozpoczęciu infekcji, kiedy zostanie 
wytworzone odpowiednie miano przeciwciał. Przed wysłaniem do laboratorium powinniśmy również 
odpowiednio opisać materiał, poprzez dołączenie do niego skierowania. 
 
Pobieranie krwi żylnej 
 

W przypadku pobierania krwi żylnej jednorazowo najczęściej nakłuwa się żyły kończyny 

górnej, w okolicy zgięcia łokciowego, rzadziej grzbietu dłoni lub przedramienia. Skórę w miejscu 
planowanego wkłucia badający odkaża np. roztworem alkoholu etylowego. Igła zużyta do nakłucia 
może być osadzona na strzykawce, wówczas badający pobiera krew przez powolne pociąganie tłoka 
strzykawki.  

Coraz powszechniej stosuje się do pobierania krwi specjalny rodzaj igieł i próbówek 

próżniowych. Po uzyskaniu potrzebnej ilości krwi (zwykle od kilku do kilkunastu ml), badający 
uciska miejsce wkłucia wacikiem i szybkim ruchem usuwa igłę z żyły. 
 
 

background image

Badanie surowicy 
 

Próbówka do której pobieramy krew powinna przez 1-2 godziny przebywać w temperaturze 

otoczenia. Po wprowadzeniu do niej krwi, odstawiamy próbówkę na 12 godzin do 4 st. C w pionowej 
pozycji, pozwalając krwi skrzepnąć. Skrzep od ścianek oddzielamy jałową bagietką. Teraz możemy 
odciągnąć pipetą surowicę. 

Jeśli zachodzi taka potrzeba, możemy odwirować próbówkę przy 1-3000 g przez 10 min. a 

czystą surowicę odciągnąć. Możemy także zamrozić próbkę do temperatury -20 st. C aby zachować ją 
do późniejszej analizy. Próbki plazmy mogą być również używane do badań serologicznych – w tym 
celu należy schłodzić krew w kąpieli z lodem i odwirować jak najszybciej. Następnie natychmiast po 
odwirowaniu oddzielamy plazmę. 

W chorobach zakaźnych pobieramy 1 lub 2 próbki krwi (z fazy ostrej i ozdrowieńczej), 

zarówno do wykonania odczynów klasycznych jak i nowoczesnych. 
 
Badanie krwi pełnej 
 
Krew powinna być pobierana do próbówek z antykoagulantem. Najpopularniejsze środki tego typu to 
EDTA (sól wapniowo-disodowa kwasu etylenodiaminotetraoctowego, wersenian) oraz heparyna. 
Wybór zależy od charakteru badania, ale najczęściej stosowany jest pierwszy z w/w środków. Krew 
ostrożnie przenosimy z vacutainer’a lub strzykawki do próbówki z antykoagulantem i mieszamy 
delikatnie 2-3 razy, mieszając antykoagulant z krwią. 
 
Izolacja limfocytów z krwi obwodowej w gradiencie Ficoll-Uropolina i test „E” rozetkowy 
 

Limfocyty z krwi obwodowej możemy izolować z krwi obwodowej w gradiencie mieszaniny 

Ficollu z Uropoliną o ciężarze właściwym 1077 poprzez odwirowanie: 

 

Do próbówki wirowniczej dodajemy 2 mg gradientu Ficoll-Uropolina o c.w. 1077 

 

Nawarstwiamy heparynizowaną krew w objętości 1-3x większej niż gradient 

 

Wirujemy przez 20 min. z szybkością 2800 obr/min. 

 

Po zebraniu osocza ostrożnie odciągamy kożuszek komórek z interfazy i 
umieszczamy w próbówce z 1 ml płynu Hanksa 

 

2x po 5 min przepłukuje się w wirówce komórki płynem Hanksa w obj. ok. 3 ml z 
szybkością 1000 obr/min.  

 

 

 

Test rozetkowy wykorzystuje fakt, że limfocyty T posiadają na swojej powierzchni receptory 

dla erytrocytów barana CD2. Tymocyty tworzą trwałe rozety w temperaturze 4 st. C jak i 37 st. C, 
natomiast limfocyty T krwi obwodowej – tylko w 37 st. C. Po inkubacji obu typów komórek dochodzi 
do połączeń między nimi, w wyniku czego tworzą się tzw. rozetki. Prawidłowa ilość limfocytów we 
krwi obwodowej wynosi 60-80% w teście odczytywanym po 18 godz. Obniżone wartości (38±10%) 
obserwujemy w chorobie nowotworowej, chorobach wirusowych, chorobach wątroby, stanach 
pooperacyjnych, zawale serca. 
 

background image

Odporność swoista 

 

 
Typ odpowiedzi 
 

Każda odpowiedź swoista indukuje powstanie obu typów odpowiedzi – zarówno humoralnej 

jak i komórkowej (CMI), jednak decydującą rolę w skutecznej eliminacji antygenu odgrywa 
najczęściej tylko jedna z nich. Np. w przypadku prątków, Riketsji czy Chlamydii efektywna jest tylko 
CMI, odpowiedź humoralna pozostaje bez znaczenia. To, który typ odpowiedzi odegra większą rolę 
zależy od: 

  Typu Ag 

 

Obecności cytokin podczas stymulacji Ag 

  Genetycznego uwarunkowania układu odpornościowego 

 

Czynników środowiskowych 

I tak stymulacja endogennym antygenem i/lub obecność interleukin IL-12, IL-18 lub IFN gamma 
powoduje stymulację Th1 i wywołanie odpowiedzi komórkowej CMI, natomiast stymulacja 
egzogennym antygenem i/lub obecność IL-4 czy IL-10 powoduje stymulację Th2 i wywołanie 
odpowiedzi humoralnej. 
 
Odporność komórkowa 
 

Skierowana jest głównie przeciw antygenom położonym w błonach komórkowych. Jest ona 

szczególnie efektywna w usuwaniu komórek zakażonych wirusami lub bakteriami wymagającymi w 
swym cyklu życiowym obecności komórki gospodarza (wewnątrzkomórkowymi), a także niektórymi 
grzybami i pierwotniakami, oraz niszczeniu komórek nowotworowych. Odgrywa także ważną rolę w 
procesie odrzucania przeszczepu. Odporność komórkowa nabyta jest rodzajem odpowiedzi nie 
angażującej przeciwciał
. Odporność komórkowa chroni organizm poprzez: 

 

Aktywację antygenowo swoistych cytotoksycznych limfocytów T (CTLs) 

 

Aktywację makrofagów i komórek NK (LGL) 

 

Stymulację komórek do wydzielania licznych cytokin, które nie wpływają na funkcje innych 
komórek zaangażowanych w procesy odporności wrodzonej i nabytej. 

 
Dojrzewanie limfocytów T 
 
Dzieli się ono na cztery fazy, w zależności od eksponowanych przez tymocyty markerów. 
Wyjściowymi komórkami są zlokalizowane w korze grasicy tymocyty potrójnie ujemne CD4-CD8-
TCR-. Po kontakcie z grasiczymi APC zaczynają one eksponować receptor TCR oraz markery CD4 i 
CD8, po czym przechodzą selekcję pozytywną: nadal ujemne komórki zostają zabite, a do rdzenia 

background image

grasicy. przechodzą już komórki podwójnie dodatnie CD4+CD8+. Zbyt łatwe wiązanie limfocyta T z 
komórką mogłoby jednak doprowadzić do autoimmunizacji, tak więc podwójnie dodatnie komórki 
podlegają selekcji negatywnej, która pozostawia już dwa różne typy komórek: CD4+ lub CD8+. Te 
zaś przekształcają się w „naiwne” (nie mające za sobą kontaktu z antygenem) limfocyty dojrzałe 
CD4CD45RA oraz CD8CD45RA. 
 

 

 

Dojrzałe limfocyty T charakteryzują się markerami TCR, CD2 (złożonym z 4 

transmembranowych peptydów γ, δ, ε i δ,), CD3 oraz CD4 lub CD8. Dwa rodzaje TCR: TCR αβ i 
TCR γδ dzielą tą pulę na limfocyty T αβ i T γδ. Te ostatnie stanową ok. 5% limfocytów krwi 
obwodowej. 
 

W przeciwieństwie do receptorów komórek B, które mogą wiązać się bezpośrednio z 

epitopami antygenów, TCR większości limfocytów T może rozpoznawać jedynie epitopy 
prezentowane przez własne komórki gospodarza za pomocą cząsteczek MHC. Limfocyty CD4 
rozpoznają MHCII, natomiast limfocyty CD8 – MHCI. 

 
Limfocyty CD4 pełnią funkcje pomocnicze. Th2 omagają limfocytom B przekształcić się w 

komórki plazmatyczne oraz w procesie przestrajania klas. Th1 pomagają limfocytom CD8 
przekształcić się w aktywowane cytotoksyczne T limfocyty, a także aktywują makrofagi, 
odpowiedzialne m. in. za likwidację zakażeń prątkami. 
 
Aktywacja limfocyta T4: 
 

Jest to proces wymagający dwóch sygnałów. Pierwszy z nich to połączenie się TCR z 

epitopem, i CD4 z MHCII komórki APC. Drugi natomiast to połączenie się cząsteczek 
kostymulujących 

CD40

 i 

B7

 na APC z odpowiadającymi im ligandami 

CD154

 i 

CD28

 na limfocycie 

T. Cząstki kostymulujące syntetyzowane są jedynie wówczas, gdy receptory typu Toll na APC 
połączą się z cząstkami strukturalnymi drobnoustrojów (PAMP). Jest to dodatkowy mechanizm 
zabezpieczający TCR limfocyta T przed rozpoznawaniem peptydu „swojego” zamiast „obcego” na 
MHC II komórki APC. Bez interakcji cząsteczek kostymulujących limfocyt T4 nie będzie 
aktywowany i będzie podlegał apoptozie. 

background image

 
Powierzchniowe molekuły zaangażowane w interakcję komórek CD4 i APC (tzw. synapsa 
immulonogiczna): 
 
 
 

 

 

Po aktywacji limfocyty T4 muszą mnożyć się tworząc duże klony identycznych komórek dla 

dostarczenia wystarczająco dużej ilości limfocytów niezbędnych do skutecznej odpowiedzi 
odpornościowej przeciw antygenowi. Aktywowane limfocyty pomocnicze T4 (helper) produkują 
interleukinę IL-2 i odpowiadający jej receptor IL-2R. IL-2 wiąże się z IL-2R na pomocniczym 
limfocycie T4 umożliwiając mu proliferację i tworzenie dużego klonu pomocniczych limfocytów T4. 
Aktywne limfocyty T4 podlegają zależnemu od antygenu różnicowaniu do komórek Th1 lub Th2. 
 
Komórki prezentujące antygen APC - zaliczamy do nich: 
 

 

Komórki dendrytyczne DC, dzielące się na 

o  DC1 – mieloidalne – należą do monocytów, prezentują antygeny limfocytom Th1 
o  DC2 – plasmacytoidalne – prezentują antygen limfocytom Th2 

 

Komórki Langerhansa skóry (myeloidalne) 

  Makrofagi 

  Limfocyty B 

 
Jak komórki dendrytyczne DC wpływają na limfocyty T, i jak te ostatnie dogadują się między sobą. 
 

Stymulacja antygenami i/lub cytokinami powoduje, że z komórki DC0 powstają dwie klasy 

komórek dendrytycznych, DC1 i DC2. Obydwie klasy stymulują limfocyty pre-Th poprzez 
prezentację im antygenu, powodując powstanie odpowiednio Th-1 i Th-2. Na różnicowanie pre-Th w 
kierunku Th1 wpływają także IL-12, IFN gamma, IL-18 oraz IFN alfa/beta, natomiast na 
różnicowanie w kierunku Th2  IL-4. Obie klasy limfocytów pomocniczych produkują cytokiny; w 
przypadku Th1są to IL-2, IFN gamma i TNF beta, hamujące różnicowanie się pre-Th w kierunku Th2. 
Th2 zaś produkują IL-4, IL-5, IL-10 oraz IL-13, z czego IL-4 i IL-10 hamują różnicowanie się pre-Th 
do Th2. 
 

background image

 

 

Podstawą różnicowania Th1 i Th2 jest wzorzec wydzielanych przez nie cytokin, różny dla obu 

typów limfocytów.  
 
Limfocyty Th1 
 
 

Rozpoznają antygeny prezentowane przez makrofagi. Rozpoczynają i nasilają odporność 

komórkową poprzez wydzielanie w/w cytokin (IL-2, IFN gamma, TNF alfa). Wydzielana przez nie 
IL-2 łączy się także ze swoistym receptorem na aktywowanych limfocytach T8, co umożliwia im 
proliferację i utworzenie dużego klonu identycznych limfocytów T8. 
 
Limfocyty Th2 
 

Rozpoznają antygeny prezentowane przez limfocyty B. Produkują takie cytokiny jak IL-4, 5, 

9, 10 i 13, które promują produkcję przeciwciał, jak również umożliwiają aktywowanym limfocytom 
B mnożenie się, różnicowanie do komórek plazmatycznych, wydzielanie i przełączanie klas 
przeciwciał. Produkowana przez komórki Th2 IL-4 hamuje również wydzielanie IL-2 i INF gamma 
przez komórki Th1, natomiast IL-10 blokuje produkcję chemokin przez limfocyty T8. 
 
Różnicowanie się limfocytów T 
 

Po stymulacji antygenem i/lub chemokinami limfocyty T proliferują, a powstałe komórki 

potomne opuszczają obwodowe narządy limfatyczne i migrują do tkanek, gdzie kontynuują 
odpowiedź przeciw antygenowi tak długo, jak długo jest on obecny w zaatakowanym organizmie. 
 

Niektóre limfocyty różnicują się do krążących komórek pamięci T4 i T8, a także do 

supresorowych komórek T8. Krążące komórki pamięci T4 i T8 pozwalają na znacznie szybszą i 
silniejszą produkcję limfocytów T cytotoksycznych i cytokin podczas zetknięcia się z tym samym 
antygenem. Supresorowe komórki T8 mogą pomagać w wyłączeniu zarówno komórkowej jak i 
humoralnej odporności, prawdopodobnie niszcząc aktywowane komórki T i B poprzez 
zaprogramowaną śmierć – apoptozę. Proces ten może być indukowany tak przez interakcję FasL/Fas 

background image

(opis w dalszej części), jak i przez pozbawienie limfocytów T koniecznej cytokiny – interleukiny 2 
(IL-2).  
 
Limfocyty T8 
 
 

Posiadają na swojej powierzchni cząsteczkę CD8 oraz receptory TCR o unikalnej swoistości. 

Receptory te we współpracy z cząsteczkami CD8 rozpoznają epitopy peptydów, zwykle 8-9 
aminokwasowych, pochodzące z antygenów endogennych. Przyłączone są one do cząsteczek MHC I 
wytwarzanych przez wszystkie komórki jądrzaste. Antygeny endogenne utworzone w obrębie 
ludzkich komórek to: 

 

Białka wirusowe wyprodukowane podczas replikacji 

 

Białka bakterii namnażających się wewnątrzkomórkowo, takich jak Rickettsia i Chlamydia 

 

Antygeny komórek nowotworowych 

W uaktywnianiu limfocytów CD8 szczególnie skuteczne są  komórki dendrytyczne. Aktywacja 

limfocytów CD8 prowadzi do wytworzenia na nich receptora dla IL-2. Jest ona produkowana przez 
limfocyty pomocnicze T4 (Th1) i jest konieczna do namnażania i różnicowania się limfocytów T8. 

CD8 biorą udział w zabijaniu komórek zakażonych wirusami i nowotworowych, a także 

alloprzeszczepów komórek. Mogą one także hamować produkcję Ig przez limfocyty B, opóźnioną 
nadwrażliwość (DTH, typ IV) oraz odpowiedź komórkową CMI. 

Limfocyty CD8 posiadają także na swojej powierzchni receptor CTLA4, który może wiązać się z 

cząsteczką CD80/86 na powierzchni komórki APC, wyzwalając mechanizm aktywacji negatywnej, 
czyli apoptozy klonu komórek CD8. 
 
Superantygeny 
 

Enterotoksyny gronkowca złocistego oraz toksyny paciorkowcowe łączą się z częścią zmienną 

łańcucha beta receptora TCR oraz zewnętrzną częścią cząsteczki MHC-II, przez co powodują 
niekontrolowaną produkcję cytokin, przede wszystkim IL-1, IL-2 oraz IL-6, co prowadzi do wstrząsu 
septycznego

Zwykle aktywacja obejmuje 0,0001 - 0,1% całej populacji limfocytów T, podczas gdy przy 

aktywacji superantygenem wartość ta może sięgać nawet 20%. 
 

 

 
Efektorowe T limfocyty 
 

Efektorowe CD4 Th1 wpływając na makrofagi biorą udział w DTH i stymulują fagocytozę 

endogennych antygenów, podczas gdy Th2 wpływając na limfocyty B stymulują produkcję 
przeciwciał. Efektorowe CD8 zabijają zakażone lub zmienione nowotworowo komórki, po czym 
oddysocjowują i atakują kolejną komórkę.  
 
Mechanizmy działania odporności komórkowej – zalicza się do nich: 
 

1.  Aktywacja swoistych antygenowo cytotoksycznych komórek T (CTL) zdolnych do niszczenia 

komórek organizmu posiadających na swojej powierzchni epitopy obcych antygenów bądź 
nieprawidłowe. Proces ten może zachodzić dzięki degranulacji ziarnistości 
wewnątrzkomórkowych zawierajacych perforyny, granzymy i chemokiny, jak również przez 
mechanizm FasL/Fas. 

background image

2.  Aktywacja makrofagów i komórek NK, umożliwiająca im niszczenie patogenów 

wewnątrzkomórkowych. 

3.  Stymulacja komórek do wydzielania szerokiego wachlarza cytokin, wpływających na 

funkcjonowanie innych komórek zaangażowanych w procesy wrodzonej i nabytej odpowiedzi 
odpornościowej 

 
Ad. 1 CTL 
 
Ziarnistości wewnątrzkomórkowe 
 

TCR i CD8 komórek CTL łączy się z kompleksem MHC-I / epitop na powierzchni komórki 

zakażonej wirusem, następuje przekazanie sygnału przez cząsteczkę CD3, co powoduje uwalnianie 
mediatorów - perforyn wzmagających przepuszczalność błon zakażonej komórki. Prowadzi to do jej 
obumarcia. Granzymy zaś aktywują kaspazy – enzymy kierujące apoptozą zakażonej komórki. 
Kaspazy są proteazami niszczącymi cytoszkielet i rozpuszczającymi komórkowe nukleoproteiny. 
 
FasL/Fas 
 
 

Komórki CTL posiadają na swej powierzchni cząsteczkę FasL (Fas ligand) która może 

oddziaływać na receptory Fas znajdujące się na powierzchni wielu rodzajów komórek. Połączenie 
FasL/Fas wyzwala wewnątrzkomórkową transdukcję, prowadzącą do zniszczenia białek cytoszkieletu 
zakażonej komórki oraz rozbicia jej chromatyny. 
 

Śmierć poprzez apoptozę nie powoduje uwalniania zawartości zakażonych komórek takich jak 

mediatory zapalenia lub wirusy, co ma miejsce w przypadku lizy. Zamiast tego komórka rozpada się 
na fragmenty - ciałka apoptotyczne posiadające ligandy dla receptorów fagocytów - usuwane później 
w procesie fagocytozy. Redukuje to odpowiedź zapalną i zapobiega uwalnianiu wirusów, które 
zgromadzone w obrębie zakażonej komórki mogą po uwolnieniu się z niej infekować zdrowe 
komórki. Ponieważ CTL nie ulegają zniszczeniu w tym procesie, mogą one niszczyć kolejne zakażone 
komórki. 
 
Ad. 2  
 
Makrofagi 
 
 

Interleukina IL-2 oraz IFN gamma wytwarzane przez limfocyty Th1 aktywują makrofagi, 

umożliwiając im niszczenie wewnątrzkomórkowych patogenów. Aktywowane makrofagi wydzielają 
szereg cytokin, z których najważniejsze to: 

  IL-1 – działanie lokalne: aktywuje śródbłonek, aktywuje limfocyty, prowadzi do lokalnego 

zniszczenia tkanki, zwiększając dostęp komórek efektorowych do niej, działanie ogólne: 
gorączka, produkcja IL-6 

  TNF alfa – działanie lokalne: aktywuje śródbłonek, zwiększa przepuszczalność naczyń co 

zwiększa przenikanie IgG, dopełniacza oraz komórek efektorowych, a także wzmaga drenaż 
limfatyczny tkanki, działanie ogólne: gorączka, mobilizacja metabolitów, wstrząs 

  IL-6  - działanie lokalne: aktywuje limfocyty do zwiększonej produkcji przeciwciał, działanie 

ogólne: gorączka, zwiększenie produkcji białek ostrej fazy 

  IL-8 – lokalny czynnik chemotaktyczny przyciągający neutrofile, bazofile i komórki T do 

miejsca infekcji 

  IL-12 – aktywuje komórki NK, wzmaga przekształcanie się T limfocytów CD4 do komórek 

Th1. 

 
Komórki NK 
 

Ich aktywacja zachodzi dzięki IL-2 wytwarzanej przez Th1, IL-12, 15, 18, 21 oraz 

interferonom alfa i beta. Komórki NK posiadają dwa receptory: receptor aktywujący zabijanie (killer-
activating receptor) umożliwiający NK zabicie komórki do której przylega, oraz receptor hamujący 

background image

zabijanie (killer-inhibitory receptor). Ten ostatni rozpoznaje cząsteczki MHC-I obecne na 
prawidłowych jądrzastych komórkach ludzkich. Po rozpoznaniu MHC-I przez receptor powstaje 
ujemny sygnał, silniejszy od sygnału zabijania i zapobiegający zabiciu komórki przez NK. 

Komórki NK prowadzą do lizy nieprawidłowych komórek poprzez wbudowanie do ich błony 

perforyn - cząsteczek tworzących szczeliny w sposób podobny do obserwowanego w przypadku 
komórek CTL i dopełniacza oraz wstrzyknięcie cytotoksycznych granzymów. Oprócz takiej 
spontanicznej aktywności komórki NK są również zdolne do uczestniczenia w cytotoksyczności 
zależnej od przeciwciał ADCC.