background image

Uniwersytet Śląski w Katowicach 

 

str. 1 

Wydział Biologii i Ochrony Środowiska 
 
 

Kierunek i poziom studiów: Biotechnologia, poziom pierwszy 
Sylabus modułuTechniki analizy tkanek roślinnych i zwierzęcych 
 

kod modułu: 1BT_42 

1. Informacje ogólne 

koordynator modułu 

dr hab. Magdalena Rost-Roszkowska 

rok akademicki 

2013/2014 

Semestr 

III (zimowy) 

forma studiów 

stacjonarne 

sposób ustalania oceny 
końcowej modułu 

Ocena końcowa modułu ustalana jest na postawie ocen z laboratorium (0,5) oraz 
z zaliczenia pisemnego z wykładów (0,5).  
Na ocenę z laboratorium składać się będą: ocena ze sprawozdania pisemnego z pracy 
laboratoryjnej (0,5) oraz ocena ciągła umiejętności praktycznych studenta (0,5). 

informacje dodatkowe 

Problemy pojawiające się w trakcie pracy własnej studenta, bądź w trakcie wykładów 
i laboratoriów mogą być wyjaśniane i omawiane podczas konsultacji z osobami 
prowadzącymi przedmiot. 

Liczba punktów ECTS 

 
2. Opis zajęć dydaktycznych i pracy studenta 

nazwa  

Kod 

Wykład 

1BT_42_fs_1 

prowadzący 

dr hab. Magdalena Rost-Roszkowska; dr hab. prof. UŚ Ewa Kurczyńska,  

grupa(-y) 

Studenci II roku studiów I stopnia 

treści zajęć 

1. Podstawy technik histologicznych wykorzystywanych w analizie tkanek.  
2. Podstawy mikroskopii elektronowej. 
3. Podstawy mikroskopii fluorescencyjnej. 
4. Cechy tkanek roślinnych.  
5. Techniki analizy tkanek roślinnych 

metody 
prowadzenia 
zajęć 

jak w opisie modułu 

liczba godzin 
dydaktycznych 
(kontaktowych) 

10 

liczba godzin 
pracy własnej 
studenta 

20  

opis pracy 
własnej studenta 

Praca z podręcznikiem (literatura obowiązkowa oraz uzupełniająca) w celu uzupełnienia 
wiedzy przekazanej przez prowadzącego na wykładach, a także przygotowanie merytoryczne 
do pisemnego zaliczenia końcowego 

organizacja zajęć   5 wykładów po 2h, Aula WBiOŚ, ul. Bankowa 9 
literatura 
obowiązkowa 

1. Zabel M. Immunocytochemia. PWN, Warszawa, 1990. 
2. Kurczyńska E., Borowska-Wykręt D. Mikroskopia świetlna w badaniach komórki roślinnej. 

Ćwiczenia. PWN Warszawa, 2007. 

literatura 
uzupełniająca 

1. Zhu L., Chun J. Apoptosis detection and assai methods. Biotechniques Books, Eaton 

Publishing, 1998. 

2. Naish S.J., Boenisch T., Farmilo A.J., Stead R.H. Immunochemical staining methods. Dako 

Corporation, Carpinteria, California, USA, 1989. 

3. Starz H. Immunohistochemistry on paraffin sections. Git Verlag GmbH, Darmstadt, 1991. 
4. Dykstra M.J. Biological electron microscopy. Theory, techniques and troubleshooting. 

background image

Uniwersytet Śląski w Katowicach 

 

str. 2 

Wydział Biologii i Ochrony Środowiska 
 
 

Plenum Press, New York & London, 1992. 

5. Wróbel B., Zienkiewicz K., Smoliński D.J., Niedojadło J., Świdziński M. Podstawy mikroskopii 

elektronowej. Wydawnictwo Uniwersytetu Mikołaja Kopernika, Toruń, 2005. 

6. Litwin J.A., Gajda M. Podstawy technik mikroskopowych. Wyd. UJ, Kraków, 2011. 
7. Bagiński S. Technika mikroskopowa. PWN. 1965. 

adres strony 
www zajęć 

 

informacje 
dodatkowe 

Na każdym wykładzie studenci otrzymają od osoby prowadzącej dodatkową literaturę pod 
postacią artykułów popularno-naukowych oraz schematów prezentowanych w trakcie 
wykładów o konkretnej tematyce. 

 
nazwa  

Kod 

Laboratorium 

1BT_42_fs_2 

Prowadzący 

dr hab. Magdalena Rost-Roszkowska, dr Izabela Poprawa, dr Elwira Swadźba, dr Izabela 
Potocka, dr Izabela Dobrowolska, dr Ewa Mazur, dr Justyna Wróbel-Marek, mgr Katarzyna 
Kulińska-Łukaszek 

grupa(-y) 

Studenci II roku studiów I stopnia 

treści zajęć 

1. Utrwalanie tkanek zwierzęcych dla potrzeb mikroskopii świetlnej (skrawki parafinowe). 
2. Podstawowe barwienia histologiczne na skrawkach parafinowych. 
3. Utrwalanie i przeprowadzanie tkanek zwierzęcych i roślinnych dla potrzeb transmisyjnej 

mikroskopii elektronowej. 

4. Wykorzystanie kriostatu w technikach histologicznych. Podstawowe barwienia 

immunohistochemiczne/fluorescencyjne. 

5. Wykorzystanie skrawków eponowych oraz histokrylowych w analizie tkanek zwierzęcych z 

wykorzystaniem mikroskopii świetlnej. 

6. Rodzaje preparatów z tkanek roślinnych i preparatyka przyżyciowa. 
7. Metody analizy drewna. 
8. Mikroskopia konfokalna w analizie tkanek roślinnych. 
9. Sporządzanie skrawków woskowych i żywic akrylowych z różnych tkanek roślinnych. 
10. Detekcja tkanek roślinnych (na skrawkach) z wykorzystaniem barwień podstawowych 

metody 
prowadzenia 
zajęć 

jak w opisie modułu 

liczba godzin 
dydaktycznych 
(kontaktowych) 

50 

liczba godzin 
pracy własnej 
studenta 

75 

opis pracy 
własnej studenta 

Przyswojenie wiedzy przekazanej przez prowadzącego – uzupełnienie wiadomości z lektury 
obowiązkowej, a także do sprawnego dyskutowania problematyki związanej z laboratorium; 
przygotowanie pisemnego sprawozdania z ćwiczeń laboratoryjnych z notatek wykonywanych 
podczas zajęć oraz w oparciu o dostępną literaturę.  

organizacja zajęć   10 laboratoriów x 5h = 50h/grupa; 5 x laboratorium prowadzone przez KHiEZ, ul. Bankowa 9, 

sala 5 (parter) oraz 5 x laboratorium prowadzone przez ZBK, ul. Jagiellońska 28, sala A-22 
(parter) oraz sala B-107 (I piętro) 

literatura 
obowiązkowa 

1. Zabel M. Immunocytochemia. PWN, Warszawa, 1990. 
2. Kurczyńska E., Borowska-Wykręt D. Mikroskopia świetlna w badaniach komórki roślinnej. 

Ćwiczenia. Wydawnictwo Naukowe PWN Warszawa, 2007. 

literatura 
uzupełniająca 

1. Zhu L., Chun J. Apoptosis detection and assai methods. Biotechniques Books, Eaton 

Publishing, 1998. 

2. Naish S.J., Boenisch T., Farmilo A.J., Stead R.H. Immunochemical staining methods. Dako 

Corporation, Carpinteria, California, USA, 1989. 

background image

Uniwersytet Śląski w Katowicach 

 

str. 3 

Wydział Biologii i Ochrony Środowiska 
 
 

3. Starz H. Immunohistochemistry on paraffin sections. Git Verlag GmbH, Darmstadt, 1991. 
4. Dykstra M.J. Biological electron microscopy. Theory, techniques and troubleshooting. 

Plenum Press, New York & London, 1992. 

5. Wróbel B., Zienkiewicz K., Smoliński D.J., Niedojadło J., Świdziński M. Podstawy mikroskopii 

elektronowej. Wydawnictwo Uniwersytetu Mikołaja Kopernika, Toruń, 2005. 

6. Litwin J.A., Gajda M. Podstawy technik mikroskopowych. Wydawnictwo Uniwersytetu 

Jagiellońskiego, Kraków, 2011. 

7. Bagiński S. Technika mikroskopowa. PWN. 1965. 

adres strony 
www zajęć 

 

informacje 
dodatkowe 

Na każdych zajęciach laboratoryjnych studenci otrzymają od osoby prowadzącej protokoły 
jako instrukcje do przeprowadzanych reakcji oraz/lub karty pracy, a także artykuły popularno-
naukowe dotyczące tematyki zajęć. 

 
nazwa  

Kod 

Konsultacje 

1BT_42_fs_3 

Prowadzący 

dr hab. prof. UŚ Ewa Kurczyńska, dr hab. Magdalena Rost-Roszkowska, dr Izabela Poprawa, dr 
Elwira Swadźba, dr Izabela Potocka, dr Izabela Dobrowolska, dr Ewa Mazur, dr Justyna 
Wróbel-Marek, mgr Katarzyna Kulińska-Łukaszek 

grupa(-y) 

Studenci II roku studiów I stopnia 

treści zajęć 

Rozwiązywanie problemów postawionych przez studenta 

metody 
prowadzenia 
zajęć 

jak w opisie modułu 

liczba godzin 
dydaktycznych 
(kontaktowych) 

liczba godzin 
pracy własnej 
studenta 

opis pracy 
własnej studenta 

 

organizacja zajęć   Konsultacje odbywają się w wyznaczonych przez prowadzącego godzinach. 
literatura 
obowiązkowa 

1. Zabel M. Immunocytochemia. PWN, Warszawa, 1990. 
2. Kurczyńska E., Borowska-Wykręt D. Mikroskopia świetlna w badaniach komórki roślinnej. 

Ćwiczenia. Wydawnictwo Naukowe PWN Warszawa, 2007. 

literatura 
uzupełniająca 

1. Zhu L., Chun J. Apoptosis detection and assai methods. Biotechniques Books, Eaton 

Publishing, 1998. 

2. Naish S.J., Boenisch T., Farmilo A.J., Stead R.H. Immunochemical staining methods. Dako 

Corporation, Carpinteria, California, USA, 1989. 

3. Starz H. Immunohistochemistry on paraffin sections. Git Verlag GmbH, Darmstadt, 1991. 
4. Dykstra M.J. Biological electron microscopy. Theory, techniques and troubleshooting. 

Plenum Press, New York & London, 1992. 

5. Wróbel B., Zienkiewicz K., Smoliński D.J., Niedojadło J., Świdziński M. Podstawy mikroskopii 

elektronowej. Wydawnictwo Uniwersytetu Mikołaja Kopernika, Toruń, 2005. 

6. Litwin J.A., Gajda M. Podstawy technik mikroskopowych. Wyd. UJ, Kraków, 2011. 
7. Bagiński S. Technika mikroskopowa. PWN. 1965. 

adres strony 
www zajęć 

 

informacje 
dodatkowe 

 

 

background image

Uniwersytet Śląski w Katowicach 

 

str. 4 

Wydział Biologii i Ochrony Środowiska 
 
 

3. Opis sposobów weryfikacji efektów kształcenia modułu 

Nazwa 

Kod 

Sprawozdanie pisemne z pracy laboratoryjnej 

1BT_42_w_1 

kod(-y) zajęć  

1BT_42_fs02 

osoba(-y) 
przeprowadzająca(-e) 
weryfikację 

dr hab. Magdalena Rost-Roszkowska, dr Izabela Poprawa, dr Elwira Swadźba, dr Izabela 
Potocka, dr Izabela Dobrowolska, dr Ewa Mazur, dr Justyna Wróbel-Marek, mgr 
Katarzyna Kulińska-Łukaszek 

grupa(-y) 

Studenci II roku studiów I stopnia 

wymagania 
merytoryczne 

Podstawowe wiadomości związane z tematyką każdych zajęć (podawane każdorazowo 
na zajęciach przez osobę prowadzącą zajęcia), które umożliwią sprawną umiejętność 
identyfikowania obserwowanych struktur, przeprowadzania przewidzianych 
reakcji/barwień oraz dyskutowania problematyki poruszanej przez prowadzącego. 

kryteria oceny 

bdb – student definiuje oraz wykorzystuje pojęcia związane z technikami 
histologicznymi, charakteryzuje różnorodne metody analizy tkanek przy wykorzystaniu 
mikroskopu świetlnego, fluorescencyjnego oraz elektronowego, przeprowadza 
obserwacje mikroskopowe przygotowanych preparatów, formułuje opinie oraz wnioski 
wynikające z pracy w laboratorium histologicznym; 
db - student definiuje oraz wykorzystuje wybrane pojęcia związane z technikami 
histologicznymi, charakteryzuje podstawowe wybrane metody analizy tkanek przy 
wykorzystaniu mikroskopu świetlnego, fluorescencyjnego oraz elektronowego, 
przeprowadza obserwacje mikroskopowe przygotowanych preparatów, jednak przy 
pomocy prowadzącego, formułuje jedynie pojedyncze wnioski wynikające z pracy w 
laboratorium histologicznym; 
dst - student jedynie definiuje wybrane pojęcia związane z technikami histologicznymi, 
wykazuje problemy z charakterystyką podstawowych metod analizy tkanek przy 
wykorzystaniu mikroskopu świetlnego, fluorescencyjnego oraz elektronowego, 
wykazuje problemy z przeprowadzania obserwacji mikroskopowych przygotowanych 
preparatów, nawet przy pomocy prowadzącego, formułuje jedynie pojedyncze wnioski 
wynikające z pracy w laboratorium histologicznym; 
ndst – student nie definiuje pojęć związanych z technikami histologicznymi, wykazuje 
problemy z charakterystyką podstawowych metod analizy tkanek przy wykorzystaniu 
mikroskopu świetlnego, fluorescencyjnego oraz elektronowego, nie potrafi 
przeprowadzać obserwacji mikroskopowych przygotowanych preparatów, nawet przy 
pomocy prowadzącego, nie potrafi wyciągać wniosków wynikających z pracy w 
laboratorium histologicznym. 

przebieg procesu 
weryfikacji 

Na każdych zajęciach laboratoryjnych studenci będą wypełniali odpowiednie karty 
pracy lub przygotowywali sprawozdanie pisemne (na podstawie obserwacji i notatek z 
przeprowadzonych obserwacji). 

informacje dodatkowe 

 

 

Nazwa 

Kod 

Ocena ciągła umiejętności praktycznych 

1BT_42_w_2 

kod(-y) zajęć  

1BT_42_fs_2,  

osoba(-y) 
przeprowadzająca(-e) 
weryfikację 

dr hab. Magdalena Rost-Roszkowska, dr Izabela Poprawa, dr Elwira Swadźba, dr Izabela 
Potocka, dr Izabela Dobrowolska, dr Ewa Mazur, dr Justyna Wróbel-Marek, mgr 
Katarzyna Kulińska-Łukaszek 

grupa(-y) 

Studenci II roku studiów I stopnia 

wymagania 
merytoryczne 

Podstawowe wiadomości związane z tematyką każdych zajęć (podawane każdorazowo 
na zajęciach poprzednich przez osobę prowadzącą zajęcia), które umożliwią sprawną 
umiejętność identyfikowania obserwowanych struktur, przeprowadzania konkretnych 
reakcji/barwień oraz dyskutowania problematyki poruszanej przez prowadzącego. 

background image

Uniwersytet Śląski w Katowicach 

 

str. 5 

Wydział Biologii i Ochrony Środowiska 
 
 
kryteria oceny 

bdb – student identyfikuje podstawowe techniki analizy tkanek roślinnych i 
zwierzęcych, charakteryzuje różnorodne metody analizy tkanek przy wykorzystaniu 
mikroskopu świetlnego, fluorescencyjnego oraz elektronowego, stosuje podstawowe 
techniki analizy tkanek roślinnych i zwierzęcych po opieką prowadzącego, 
przeprowadza obserwacje mikroskopowe przygotowanych preparatów, dyskutuje 
możliwości wykorzystania poznanych technik histologicznych w biotechnologii i 
dziedzinach pokrewnych; 
db - student identyfikuje podstawowe techniki analizy tkanek roślinnych i zwierzęcych, 
charakteryzuje różnorodne metody analizy tkanek przy wykorzystaniu mikroskopu 
świetlnego, fluorescencyjnego oraz elektronowego, stosuje jedynie nieliczne z 
podstawowych technik analizy tkanek roślinnych i zwierzęcych po opieką 
prowadzącego, przeprowadza obserwacje mikroskopowe przygotowanych preparatów, 
jednak nie dyskutuje możliwości wykorzystania poznanych technik histologicznych w 
biotechnologii i dziedzinach pokrewnych; 
dst – student wykazuje problemy z identyfikowaniem podstawowych technik analizy 
tkanek roślinnych i zwierzęcych, charakteryzuje nieliczne metody analizy tkanek przy 
wykorzystaniu mikroskopu świetlnego, fluorescencyjnego oraz elektronowego, 
wykazuje problemy w stosowaniu podstawowych techniki analizy tkanek roślinnych i 
zwierzęcych po opieką prowadzącego, przeprowadza obserwacje mikroskopowe 
przygotowanych preparatów pod opieką prowadzącego, nie dyskutuje możliwości 
wykorzystania poznanych technik histologicznych w biotechnologii i dziedzinach 
pokrewnych; 
ndst - student nie identyfikuje podstawowych technik analizy tkanek roślinnych i 
zwierzęcych, nie potrafi scharakteryzować i opisać podstawowych metod analizy 
tkanek przy wykorzystaniu mikroskopu świetlnego, fluorescencyjnego oraz 
elektronowego, nie potrafi lub wykazuje duże problemy z zastosowaniem 
podstawowych technik analizy tkanek roślinnych i zwierzęcych nawet po opieką 
prowadzącego, wykazuje problemy z przeprowadzaniem obserwacji mikroskopowych, 
nie dyskutuje możliwości wykorzystania poznanych technik histologicznych w 
biotechnologii i dziedzinach pokrewnych. 

przebieg procesu 
weryfikacji 

Na każdych zajęciach osoba prowadząca będzie oceniała umiejętności praktyczne 
studenta: umiejętność posługiwania się mikroskopem, ocena jakości reakcji oraz 
preparatów wykonanych przez studenta, ocena umiejętności identyfikowania 
obserwowanych na preparatach struktur.  

informacje dodatkowe 

 

 

Nazwa 

Kod 

Zaliczenie pisemne 

1BT_42_w_3 

kod(-y) zajęć  

1BT_42_fs_1, 1BT_42_fs_3 

osoba(-y) 
przeprowadzająca(-e) 
weryfikację 

dr hab. Magdalena Rost-Roszkowska; dr hab. prof. UŚ Ewa Kurczyńska 

grupa(-y) 

Studenci II roku studiów I stopnia 

wymagania 
merytoryczne 

Wiedza z zakresu zarówno laboratorium, jak i wykładów wzbogacona informacjami z 
literatury: specjalistyczna wiedza dotycząca klasyfikacji metod analizy tkanek roślinnych 
i zwierzęcych, podstawowe terminy i definicje związane z technikami analizy 
histologicznej, a także z budową i podstawowymi zasadami działania sprzętu 
wykorzystywanego w laboratorium histologicznym, znajomość  różnic w przygotowaniu 
tkanek roślinnych i zwierzęcych do analizy histologicznej, a także umiejętność 
identyfikacji badanych struktur w analizowanym materiale biologicznym przy 
wykorzystaniu odpowiedniego mikroskopu (świetlny, fluorescencyjny, elektronowy), 
znajomość pracy mikroskopu fluorescencyjnego oraz transmisyjnego mikroskopu 
elektronowego. 

background image

Uniwersytet Śląski w Katowicach 

 

str. 6 

Wydział Biologii i Ochrony Środowiska 
 
 
kryteria oceny 

bdb – student definiuje oraz wykorzystuje pojęcia związane z technikami 
histologicznymi, identyfikuje podstawowe techniki analizy tkanek roślinnych i 
zwierzęcych, charakteryzuje różnorodne metody analizy tkanek przy wykorzystaniu 
mikroskopu świetlnego, fluorescencyjnego oraz elektronowego, dyskutuje możliwości 
wykorzystania poznanych technik histologicznych w biotechnologii i dziedzinach 
pokrewnych; 
db - student definiuje i wykorzystuje wybrane pojęcia związane z technikami 
histologicznymi, identyfikuje wybrane z podstawowych technik analizy tkanek 
roślinnych i zwierzęcych, charakteryzuje wybrane metody analizy tkanek przy 
wykorzystaniu mikroskopu świetlnego, fluorescencyjnego oraz elektronowego, 
wykazuje problemy w dyskutowaniu możliwości wykorzystania poznanych technik 
histologicznych w biotechnologii i dziedzinach pokrewnych; 
dst - student jedynie definiuje, jednak nie wykorzystuje wybranych pojęć związanych z 
technikami histologicznymi, identyfikuje wybrane z podstawowych technik analizy 
tkanek roślinnych i zwierzęcych, nie potrafi scharakteryzować wybranych metod analizy 
tkanek przy wykorzystaniu mikroskopu świetlnego, fluorescencyjnego oraz 
elektronowego, wykazuje problemy w dyskutowaniu możliwości wykorzystania 
poznanych technik histologicznych w biotechnologii i dziedzinach pokrewnych; 
ndst - student nie definiuje i nie wykorzystuje pojęć związanych z technikami 
histologicznymi, nie potrafi identyfikować podstawowych technik analizy tkanek 
roślinnych i zwierzęcych, ani charakteryzować wybranych metod analizy tkanek przy 
wykorzystaniu mikroskopu świetlnego, fluorescencyjnego oraz elektronowego, nie 
dyskutuje możliwości wykorzystania poznanych technik histologicznych w 
biotechnologii i dziedzinach pokrewnych. 
 
Przewidywane są również oceny + db (4,5) i +dst (3,5) 
Skala procentowa klasyfikacji: 
poniżej 55% - ndst 
55 -65% - dst 
66-70% - +dst 
71-80% - dobry 
81-90% - +dobry 

90 – bardzo dobry 

przebieg procesu 
weryfikacji 

Końcowe zaliczenie będzie miało charakter opisowy: sprawdzona będzie zarówno 
wiedza, jak i umiejętności zdobyte w trakcie zajęć laboratoryjnych z przedmiotu. Zakres 
materiału: wiedza przekazana podczas zajęć przez osobę prowadzącą laboratorium 
oraz wykład z danej tematyki, praca z podręcznikiem i literaturą uzupełniającą, 
korzystanie z konsultacji. Czas trwania egzaminu 1,5h. 

informacje dodatkowe