background image

 

 

Katedra Mikrobiologii 

Uniwersytet Gda

ń

ski 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Instrukcja do 

ć

wicze

ń

 z immunologii 

 

 

dla studentów II roku Biologii studiów 
stacjonarnych 
 
 

 
 
 
 
 
 
 
 

Anna-Karina Kaczorowska 

 
 

background image

Instrukcje do 

ć

wicze

ń

 z immunologii 

 

                  Katedra Mikrobiologii UG 

Opracowała: dr Anna-Karina Kaczorowska, 20 lutego 2009 r. 

-2- 

Ć

WICZENIE 1 

 

(V tydzie

ń

 semestru letniego) 

Reakcje serologiczne w diagnostyce bakterii z rodzajów                              
Staphylococcus
 i Streptococcus 

 

Jedn

ą

 z podstawowych umiej

ę

tno

ś

ci ka

ż

dego mikrobiologa jest zdolno

ść

 do szybkiej identyfikacji bakterii 

wyizolowanych z ich naturalnego 

ś

rodowiska. Diagnostyka mikrobiologiczna w pierwszym rz

ę

dzie zakłada 

wyodr

ę

bnienie drobnoustroju w postaci czystej kultury. Potrzebna jest do tego umiej

ę

tno

ść

 wykonywania 

prawidłowego posiewu izolacyjnego. Obserwacje morfologii pojedynczych kolonii, techniki barwienia bakterii, 
testy biochemiczne, oporno

ść

 na antybiotyki oraz reakcje serologiczne pozwalaj

ą

 na szybk

ą

 identyfikacj

ę

 

wyizolowanego mikroorganizmu.  

 

 

background image

Instrukcje do 

ć

wicze

ń

 z immunologii 

 

                  Katedra Mikrobiologii UG 

Opracowała: dr Anna-Karina Kaczorowska, 20 lutego 2009 r. 

-3- 

 
Na dzisiejszych zaj

ę

ciach przedstawione zostan

ą

 zasady identyfikacji bakterii z rodzajów Staphylococcus i 

Streptococcus, w oparciu o pewne cechy biochemiczne oraz obecno

ść

 charakterystycznych antygenów. 

Ka

ż

da para studentów otrzyma płytk

ę

 z hodowl

ą

 bakteryjn

ą

. Jedynie prowadz

ą

cy b

ę

dzie wiedział, czy jest to 

hodowla gronkowców czy paciorkowców. Zadanie polega na zidentyfikowaniu bakterii. Schemat przebiegu 
poszczególnych etapów procesu identyfikacji bakterii podano na rys. 1. 
 

Pierwszym krokiem b

ę

dzie przeprowadzenie barwienia metod

ą

 Grama i okre

ś

lenie na podstawie testu na 

katalaz

ę

, czy Wasze bakterie wytwarzaj

ą

 ten enzym. Dalsza identyfikacja bakterii b

ę

dzie polegała 

przeprowadzeniu odpowiedniego testu aglutynacji lateksowej i okre

ś

leniu wła

ś

ciwo

ś

ci antygenowych bakterii.  

 

Do

ś

wiadczenia wykonujemy w parach. 

 

Do

ś

wiadczenie 1.1 

Barwienie metod

ą

 Grama bakterii z podło

ż

a stałego 

1) 

Nanie

ś

 bakterie na odtłuszczone szkiełko podstawowe 

 
W przypadku wykonywania preparatu z bakterii wyrosłych na podło

ż

ach stałych nale

ż

y materiał pobra

ć

 jałow

ą

 ez

ą

 (czyli opalon

ą

 w 

płomieniu palnika), a nast

ę

pnie zawiesi

ć

 bakterie w kropli soli fizjologicznej naniesionej na szkiełko podstawowe. W przypadku 

wykonywania preparatu z hodowli płynnej wystarczy nanie

ść

 na szkiełko kropl

ę

 hodowli lub pobra

ć

 odrobin

ę

 bakterii jałow

ą

 ez

ą

 i 

rozprowadzi

ć

 zawiesin

ę

 na powierzchni szkiełka). Zabiegi te maj

ą

 na celu przygotowanie bakterii w postaci niezbyt g

ę

stej zawiesiny.  

 
2) 

Po wysuszeniu, utrwal preparat przez przeci

ą

gniecie szkiełka podstawowego nad płomieniem palnika. 

Nale

ż

y uwa

ż

a

ć

, by nie trwało to zbyt długo.  

 
3) 

Na utrwalone bakterie nakropl fiolet krystaliczny w ten sposób, aby pokrył on powierzchni

ę

, na któr

ą

 

naniesiono bakterie. Barwnik pozostawi

ć

 na 2 minuty. Po tym czasie zmy

ć

 fiolet wod

ą

 destylowan

ą

 
4) 

Nanie

ś

 płyn Lugola na 1 minut

ę

. Płyn nale

ż

y obficie spłuka

ć

, najpierw alkoholem etylowym, a pó

ź

niej 

wod

ą

 destylowan

ą

 

 
5) 

Nanie

ś

 na preparat roztwór fuksyny zasadowej na 40 sekund. Po tym czasie spłucz szkiełko wod

ą

 

destylowan

ą

 i wysusz preparat.  

 
6) 

Przed umieszczeniem preparatu na stoliku mikroskopu nanie

ś

 na szkiełko kropl

ę

 olejku immersyjnego. 

Ogl

ą

daj u

ż

ywaj

ą

c obiektywu daj

ą

cego stukrotne powi

ę

kszenie.  

 
 
 

Do

ś

wiadczenie 1.2 

Test na obecno

ść

 katalazy 

 
1)  Na szkiełko podstawowe nanie

ś

 ez

ą

 kropl

ę

 

jałowego roztworu soli fizjologicznej (0,85% 
NaCl) i równomiernie zawie

ś

 w nim niewielk

ą

 

ilo

ść

 masy bakteryjnej pobranej z podło

ż

stałego.  

2)  Do otrzymanej zawiesiny bakteryjnej dodaj 

kilka kropli wody utlenionej (3% r-r H

2

O

2

).   

 Obserwuj preparat (gołym okiem).         
 
Pojawienie si

ę

 piany (b

ą

belków)                          

w preparacie 

ś

wiadczy o obecno

ś

ci katalazy 

(wynik dodatni).  
 

 
 
 
 
 

 
Katalaza rozkłada nadtlenek wodoru, wyst

ę

puje 

u niemal wszystkich organizmów oddychaj

ą

cych 

tlenowo. 
 



 szczepy katalazo-dodatnie: rodzaj 

Staphylococcus, Enterobacter, Pseudomonas, 
Citrobacter, Escherichia, Klebsiella, 
 



 szczepy katalazo-ujemne: rodzaj 

Enterococcus, Streptococcus, Aerococcus, 
Lactococcus 
oraz wi

ę

kszo

ść

 bakterii 

beztlenowych (jeden znany wyj

ą

tek) 

 
 

background image

Instrukcje do 

ć

wicze

ń

 z immunologii 

 

                  Katedra Mikrobiologii UG 

Opracowała: dr Anna-Karina Kaczorowska, 20 lutego 2009 r. 

-4- 

 Studenci, którzy stwierdzili w obrazie mikroskopowym obecno

ść

 skupie

ń

 Gram-dodatnich ziarniaków 

oraz uzyskali dodatni wynik w te

ś

cie na katalaz

ę

 wykonuj

ą

 t e s t   a g l u t y n a c j i   p r z y   u

ż

y c i u   z e s t a w u  

M i c r o g e n   S t a p h  firmy Microgen Bioproducts Ltd (Wielka Brytania). Test ten słu

ż

y do wykrywania na 

drodze reakcji serologicznej obecno

ś

ci białka A oraz czynnika koaguluj

ą

cego. 

 
 

 Studenci, którzy stwierdzili w obrazie mikroskopowym obecno

ść

 Gram-dodatnich bakterii w postaci 

ła

ń

cuszków oraz uzyskali ujemny wynik w te

ś

cie na katalaz

ę

 wykonuj

ą

 t e s t   a g l u t y n a c j i   p r z y   u

ż

y c i u  

z e s t a w u   M i c r o g e n   S t r e p  firmy Microgen Bioproducts Ltd (Wielka Brytania).

  

 

Do

ś

wiadczenie 1.3a 

Identyfikacja szczepów Staphylococcus aureus - wykrywanie obecno

ś

ci czynnika 

koaguluj

ą

cego i białka A przy pomocy testu aglutynacji Microgen Staph  

W te

ś

cie Microgen Staph cz

ą

steczki lateksu opłaszczone s

ą

 króliczymi przeciwciałami swoistymi wobec czynnika koaguluj

ą

cego oraz 

białka A unikatowego dla bakterii Staphylococcus ureus 

 

1)  Temperatur

ę

 odczynników z zestawu do aglutynacji 

Microgen Staph (Emapol) nale

ż

y doprowadzi

ć

 do 

temperatury pokojowej. Odczynniki przechowywane 
s

ą

 w temp. 4°C. 

2)  Na pole testowe nakropl roztwór przeciwciał swoistych 

wobec białek wytwarzanych przez bakterie gronkowca 
złocistego: białka A oraz czynnika koaguluj

ą

cego 

osocze. Obok nanie

ś

 ez

ą

 niewielk

ą

 obj

ę

to

ść

 roztworu 

soli fizjologicznej. 

 
3)  W roztworze soli zawie

ś

 niewielk

ą

 ilo

ść

 masy 

bakteryjnej  (4-5 kolonii bakterii pobranych z podło

ż

stałego).  

4)  Obydwie krople wymieszaj ez

ą

 (za ka

ż

dym razem ez

ę

 

nale

ż

y wy

ż

arzy

ć

 i schłodzi

ć

) i obserwuj, delikatnie 

kołysz

ą

c płytk

ą

 

Odczyt: Obecno

ść

 kłaczków (widocznych 

gołym okiem) 

ś

wiadczy o zaj

ś

ciu aglutynacji.  

W przypadku braku aglutynacji obserwuje si

ę

 

jednolit

ą

 mieszanin

ę

 o mlecznym zabarwieniu.  

 

 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

 
 

 
Białko A i czynnik koaguluj

ą

cy osocze 

(CF)  s

ą

 jednymi z wielu czynników 

wirulencji gronkowca złocistego.  

 

Białko (SpA) wi

ąż

e si

ę

 z fragmentem Fc 

przeciwciał IgG uniemo

ż

liwiaj

ą

c tym 

samym wi

ą

zanie si

ę

 tych przeciwciał z 

receptorami Fc

γ

R obecnymi na 

powierzchni komórek 

ż

ernych. Chroni to 

bakterie przed fagocytoz

ą

.  

 
Czynnik koaguluj

ą

cy osocze (CF) ułatwia 

gronkowcom kolonizacj

ę

 gospodarza, 

swoj

ą

 nazw

ę

 zawdzi

ę

cza zdolno

ś

ci do 

koagulacji osocza. Zwi

ą

zany jest z 

obecno

ś

ci

ą

  dwóch niezale

ż

nych białek - 

adhezyn  ClfA i ClfB, które s

ą

 

zakotwiczone w 

ś

cianie bakterii. ClfA 

wi

ąż

e si

ę

 z fibrynogenem, ClfB wi

ąż

e poza 

fibrynogenem tak

ż

e cytokeratyn

ę

 10. 

background image

Instrukcje do 

ć

wicze

ń

 z immunologii 

 

                  Katedra Mikrobiologii UG 

Opracowała: dr Anna-Karina Kaczorowska, 20 lutego 2009 r. 

-5- 

 
Test aglutynacji Microgen Staph 



 Dodatni:  Staphylococcus aureus  

 



 Ujemny: gronkowce koagulazo-ujemne:  

Staphylococcus epidermidis 
Staphylococcus saprophyticus
 

 

Do

ś

wiadczenie 1.3b 

Serotypowanie paciorkowców nale

żą

cych do grup A, B lub D                                                                     

przy pomocy testu aglutynacji Microgen Strep  

W te

ś

cie Microgen Strep cz

ą

steczki lateksu opłaszczone s

ą

 króliczymi przeciwciałami swoistymi wobec antygenów paciorkowców grup 

A, B, C, D, F, G.  

Kolonie paciorkowców pobrane ez

ą

 z płytki inkubowane s

ą

 w roztworze enzymu pochodz

ą

cego ekstrahuj

ą

cego antygeny izolowanego z 

promieniowców Streptomyces globisporus. Ekstrakt anygenowy mo

ż

e by

ć

 równie

ż

 otrzymywany przez traktowanie bakterii takimi 

zwi

ą

zkami jak azotyn sodu i kwas octowy, kwas hydrochlorowy, kwas azotowy czy formamid. Wyekstrahowane antygeny s

ą

 nast

ę

pnie 

testowane na płytce przy u

ż

yciu 6 opłaszczonych przeciwciałami cz

ą

steczek reagentów lateksowych (ka

ż

dy swoisty wobec jednej z grup 

A, B, C, D, F lub G paciorkowców). 

 

1)  Temperatur

ę

 odczynników z zestawu do aglutynacji Microgen Strep (Emapol) nale

ż

y doprowadzi

ć

 do 

temperatury pokojowej. Odczynniki przechowywane s

ą

 w temp. 4°C. 

2)  Do próbówki Eppendorfa przenie

ś

 0,4 ml roztworu zawieraj

ą

cego substancje ekstrahuj

ą

ce antygeny 

paciorkowcowe (odczynnik M47x).  

3)  W roztworze zawie

ś

 4-5 kolonii bakterii pobranych z podło

ż

a stałego. Uzyskan

ą

 mieszanin

ę

 inkubuj w 

ła

ź

ni wodnej w temp. 37°C przez 5 min. Po tym czasie w strz

ąś

nij zawarto

ść

 próbówki. 

4)  Na ka

ż

de pole czarnej płytki pipet

ą

 automatyczn

ą

 nanie

ś

 po 1 kropli inkubowanej mieszaniny (ok. 10 

µ

l). 

Obok, przy pomocy kroplomierza, nanie

ś

 zawiesin

ę

 cz

ą

steczek lateksowych opłaszczonych 

przeciwciałami swoistymi wobec okre

ś

lonego antygenu grupowego paciorkowców. 

5)  Obydwie krople wymieszaj ez

ą

 (za ka

ż

dym razem ez

ę

 nale

ż

y wy

ż

arzy

ć

 i schłodzi

ć

) i obserwuj, delikatnie 

kołysz

ą

c płytk

ą

Odczyt: Obecno

ść

 kłaczków (widocznych gołym 

okiem) 

ś

wiadczy o zaj

ś

ciu aglutynacji.                         

W przypadku braku aglutynacji obserwuje si

ę

 

jednolit

ą

 mieszanin

ę

 o mlecznym zabarwieniu.  

 

 

 

 

 
 
 
 
 
 
 
 

 

Bakterie wykorzystane w do

ś

wiadczeniach: 

Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis, Staphylococcus saprophyticus, Streptococcus 
pyogenes, Enterococcus (Streptococcus) faecalis, S. agalactiae.  

Stosowane skróty: 

SpA – S. aureus protein A 
CF – clumping factor 

 

Grupa serologiczna 

Przedstawiciele 

paciorkowce grupy A 

S. pyogenes  

paciorkowce grupy B  

S. agalactiae 

paciorkowce grupy C  

-  

paciorkowce grupy D  

Enterococcus 
(Streptococcus) faecalis,                
Enterococcus faecium 

paciorkowce grupy F 

paciorkowce grupy G 

 
System klasyfikacji paciorkowców w oparciu    
o ich wła

ś

ciwo

ś

ci antygenowe zaproponowała 

w 1933 r. Rebecca Lancefield.  Na podstawie 
reakcji serologicznej bakterii paciorkowców         
z odpowiedni

ą

 surowic

ą

 grupow

ą

 oznacza si

ę

 

przynale

ż

no

ść

 do jednej z grup serologicznych 

(od A do V). 
 
O przynale

ż

no

ś

ci paciorkowców do grupy 

A, B, C, F, G decyduje budowa 
polisacharydów wchodz

ą

cych w skład 

ś

ciany bakteryjnej paciorkowców.  

 
O przynale

ż

no

ś

ci paciorkowców do grupy D 

decyduje struktura kwasów 
lipotejchojowych.