background image

 

 

 

 

 

 
 

 

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBEK 

 

do laboratoryjnych badań diagnostycznych 

chorób zakaźnych zwierząt 

 

 

 

 

 

 

Opracowanie:  Główny Inspektorat Weterynarii 

 

 

 

 
 

 

 

 

PROJEKT WSPÓŁFINANSOWANY ZE ŚRODKÓW UNII EUROPEJSKIEJ 

I BUDŻETU PAŃSTWA 

 

 

Warszawa 2008 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

1

 

Spis treści 

 

Spis użytych skrótów ................................................................................ 3 

 

I. 

Wstęp .................................................................................................. 4 

 

II. 

Część ogólna ..................................................................................... 5 

a.  Ogólna procedura pobierania próbek................................ ............ 6 

b.  Zasady pobierania poszczególnych rodzajów materiału 

biologicznego ................................ ................................ ..................  8 

i.  Próbki od zwierząt żywych ................................ ................. 8 

ii.  Próbki od zwierząt martwych (próbki post-mortem) ......... 9 

iii.  Próbki środowiskowe ................................ ..........................  10 

c.  Procedury dodatkowe związane z pobieraniem próbek 

od zwierząt w stadzie podejrzanym ................................ .............. 10 

d.  Zestaw do pobierania materiału biologicznego do 

laboratoryjnych badań w zakresie chorób zakaźnych 

zwierząt (ilości minimalne) ................................................................12 

 

III.  Wytyczne pobierania próbek do diagnostyki określonych 

chorób zakaźnych zwierząt z zastosowaniem właściwej 
metody badawczej ........................................................................... 13 

a.  Bydło ................................ ................................ ..............................  14 

i.  Enzootyczna białaczka bydła................................ .............. 14 

ii.  Gąbczasta encefalopatia bydła ................................ ........... 16 

iii.  Gruźlica bydła ................................ ................................ ..... 18 

iv.  Zakaźne zapalenie nosa i tchawicy / otręt bydła ............... 20 

v.  Zaraza płucna bydła ................................ ...........................  21 

b.  Zwierzęta świniowate ................................ ................................ .... 23 

i.  Afrykański pomór świń ................................ ......................  23 

ii.  Choroba Aujeszkyego u świń ................................ .............. 24 

iii.  Choroba pęcherzykowa świń ................................ .............. 27 

iv.  Klasyczny pomór świń ................................ ........................  32 

c.  Zwierzęta jednokopytne ................................ ................................  36 

i.  Afrykański pomór koni ................................ .......................  36 

ii.  Niedokrwistość zakaźna koni ................................ ............. 38 

iii.  Nosacizna ................................ ................................ ............ 39 

iv.  Wirusowe zapalenie tętnic koni ................................ ......... 40 

v.  Zaraza stadnicza ................................ ................................ . 42 

d.  Małe przeżuwacze ................................ ................................ .......... 43 

i.  Trzęsawka owiec ................................ ................................ . 43 

e.  Ptaki ................................ ................................ ...............................  45 

i.  Chlamydioza ptaków ................................ ..........................  45 

ii.  Grypa ptaków ................................ ................................ ...... 46 

iii.  Mykoplazmy drobiu ................................ ............................  48 

iv.  Rzekomy pomór drobiu ................................ .......................  50 

f.  Pszczoły ................................ ................................ ..........................  52 

i.  Zgnilec amerykański pszczół ................................ .............. 52 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

2

ii.  Zgnilec europejski ................................ ...............................  54 

g.  Zwierzęta akwakultury ................................ ................................ . 55 

i.  Bonamioza ................................ ................................ ........... 55 

ii.  Marteilioza ................................ ................................ .......... 57 

iii.  Wiosenna wiremia karpi ................................ ....................  59 

iv.  Wirusowa posocznica krwotoczna ................................ ...... 61 

v.  Zakaźna anemia łososi................................ ........................  63 

vi.  Zakaźna martwica układu krwiotwórczego .......................  65 

h.  Różne gatunki zwierząt ................................ ................................ . 67 

i.  Bruceloza ................................ ................................ ............. 67 

ii.  Gorączka Q ................................ ................................ .......... 70 

iii.  Listerioza................................ ................................ ............. 72 

iv.  Pęcherzykowe zapalenie jamy ustnej................................ . 74 

v.  Pryszczyca ................................ ................................ ........... 75 

vi.  Wąglik ................................ ................................ ................. 81 

vii.  Wścieklizna ................................ ................................ ......... 83 

 

IV. 

Dane adresowe laboratoriów weterynaryjnych ....................... 85 

 

V. 

Aktualizacja i zgłaszanie uwag do Podręcznika ...................... 89 

 

VI. 

Bibliografia ....................................................................................... 90 

 

VII.  Załączniki .......................................................................................... 94 

a.  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych 

do laboratoryjnych badań diagnostycznych................................ .. 95 

b.  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób ................................ ........... 96 

c.  Załącznik 3 – Zalecany sposób pakowania materiałów 

biologicznych z podejrzeniem pryszczycy i/lub choroby 

pęcherzykowej świń ................................ ................................ ....... 98 

d.  Załącznik 4 – Protokół pobrania prób krwi od świń do badań 

kontrolnych w kierunku choroby Aujeszkyego.............................  100 

e.  Załącznik 5 – Arkusz wyników badań w kierunku brucelozy 

u bydła/kóz/owiec/świń ................................ ................................ .. 102 

f.  Załącznik 6 – Arkusz wyników badań w kierunku enzootycznej 

białaczki bydła ................................ ................................ ............... 103 

g.  Załącznik 7 – Opis prawidłowo pobranej próbki do badań w 

kierunku BSE z wykorzystaniem szybkich testów ......................  104 

h.  Załącznik 8 – Przygotowanie płynów utrwalających ...................  105 

 
 

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

3

Spis użytych skrótów 

 

SKRÓT 

ZNACZENIE 

AGID 

Test immunodyfuzji w żelu agarowym - Agar gel immunodiffusion 

c-ELISA 

Kompetencyjny test immunoenzymatyczny - competitive ELISA 

ELISA 

Test immunoenzymatyczny - Enzyme-linked immunosorbent assay  

ELISA gB 

Test immunoenzymatyczny - test ELISA IBR-IPV Serum gB Blocking 

HA 

Hemaglutynacja 

IF 

Odczyn immunofluorescencji 

IFAT 

Metoda immunofluorescencji - Indirect Immunofluorescence Antibody Test 

MIT 

Test izolacji wirusa na białych myszkach 

NPLA 

Odczyn seroneutralizacji - Neutralising peroxidase-linked assay 

OA 

Odczyn aglutynacji probówkowej 

OKAP 

Odczyn kwaśnej aglutynacji płytowej 

OWD 

Odczyn wiązania dopełniacza 

PCR 

Reakcja polimeryzacji łańcuchowej - Polymerase chain reaction 

RT-PCR 

Reakcja polimeryzacji łańcuchowej z odwróconą transkrypcją - Reverse-

transcription polymerase chain reaction 

SN 

Test seroneutralizacji 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

4

I. 

Wstęp 

 

Podręcznik  pobierania  próbek  do  laboratoryjnych  badań  diagnostycznych 

chorób  zakaźnych  zwierząt,  zwany  dalej  Podręcznikiem,  jest  adresowany  do 

wszystkich jednostek i osób pobierających próbki od zwierząt w celu: 

1.  diagnostyki określonych chorób zakaźnych zwierząt, 

2.  sprawowania nadzoru nad zdrowiem zwierząt, 

3.  wystawiania certyfikatów poświadczających zdrowie zwierząt, 

4.  monitoringu skuteczności leczenia lub szczepień. 

 

Celem  Podręcznika  jest  ujednolicenie  postępowania  jednostek  i  osób 

pobierających wyżej wskazane próbki w zakresie: 

procedury pobierania próbek, 

stosowania odpowiedniego sprzętu, 

pakowania pobranych próbek, 

zapewnienia 

odpowiednich 

warunków 

termicznych 

przy 

przechowywaniu i transporcie próbek, 

opisu  pobranych  materiałów  i  informacji,  które  powinny  być 

przekazane do laboratorium, 

terminowego  dostarczania  próbek  do  odpowiednich  laboratoriów 

diagnostycznych. 

 

Podręcznik  nie  jest  dokumentem  prawnie  wiążącym  i  nie  może  stanowić 

podstawy prawnej decyzji administracyjnych.  

 

Wersje  elektroniczne  załączników  niniejszego  Podręcznika  są  dostępne  na 

stronie internetowej Głównego Inspektoratu Weterynarii (www.wetgiw.gov.pl).  

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

5

II.  Część ogólna 

 

 

Przy  podejmowaniu  decyzji  dotyczących  próbek,  które  będą  przekazane  do 

laboratorium,  niezbędne  jest  posiadanie  znaczącego  zasobu  wiedzy  o  chorobach 

zakaźnych  oraz  odpowiednich  umiejętności  pobierania  próbek,  gdyż  badanie 

laboratoryjne rozpoczyna się już w momencie próbkobrania, a pobierający próbkę w 

ten  sposób  w  badaniu  tym  uczestniczy.  Źle  pobrana,  niewłaściwie  przechowywana 

lub  źle  przesłana  próbka  może  być  powodem  fałszywie  dodatnich  lub  ujemnych 

wyników  badań  laboratoryjnych  lub  może  nie  nadawać  się  w  ogóle  do  analizy. 

Próbki  mogą  być  pobierane  od  zwierząt  żywych,  zwierząt  padłych,  poddanych 

ubojowi  lub  zabitych,  jak  również  ze  środowiska,  w  celach,  które  podano  we 
Wstępie. 

 

Próbki  powinny  być  pobierane  z  uwzględnieniem  celu,  kierunku  badania 

i metody, którą będą badane, a ich wielkość i liczba powinny pozwalać na uzyskanie 

statystycznie ważnych wyników. 

W  przypadku  chorób  o  przebiegu  klinicznym  pobrane  próbki  powinny  być 

reprezentatywne dla stanu zdrowia i stwierdzonych zmian. Wskazane jest pobranie 

próbek  od  kilku  zwierząt,  co  stwarza  większe  szanse  na  wykrycie  czynnika 

zakaźnego (wirusów, bakterii). 

W  programach  nadzoru  i  monitoringu  zdrowia  zwierząt,  przy  braku 

klinicznych  przypadków  chorób,  liczba  próbek  powinna  być  adekwatna  do 

częstotliwości występowania poszukiwanego czynnika w populacji. Ta częstotliwość 

może być różna dla różnych jednostek chorobowych i różnych stad. 

 

Pobieranie  próbek  powinno  przebiegać  z  zachowaniem  ostrożności 

i  należytej  uwagi,  tak,  aby  unikać  niepotrzebnego  stresu  lub  zranienia  zwierzęcia 

jak również zagrożenia dla osoby/osób  zaangażowanych w procedurę próbkobrania. 

Ponadto,  próbki  powinny  być  pobierane  w  taki  sposób,  aby  uniknąć  ich  skażenia 

krzyżowego. 

 

W  każdym  przypadku  manipulacja  materiałem  biologicznym  pochodzącym 

od  zwierząt  żywych  lub  martwych  wymaga  zachowania  ostrożności  w  celu 

uniknięcia  potencjalnego  ryzyka  zakażenia  chorobami  odzwierzęcymi,  skażenia 

środowiska  lub  rozprzestrzenienia  się  choroby.  W  związku  z  powyższym,  należy 

właściwie  zabezpieczać  zwierzęta  i  tkanki  generujące  niebezpieczeństwo 

skażenia.  

 

Wszystkie  pobrane  próbki  powinny  być  starannie  opakowane,  oznakowane 

i  przekazane  do  laboratorium  w  najkrótszym  możliwym  czasie  z  zachowaniem 

odpowiednich wymagań termicznych.  

 

Specyficzne wymagania  w  zakresie pobierania  próbek do badania  w kierunku 

określonej  choroby  z  zastosowaniem  określonej  procedury  badawczej  są  podane  w 

Części III niniejszego Podręcznika. 

 

Szczegółowe  procedury  pobierania  próbek  (postępowanie  zabezpieczające, 

liczba  próbek,  częstotliwość  badania,  itp.)  w  ramach  realizacji  programów 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

6

zwalczania  chorób  lub  planów  gotowości,  zawarte  są  w  opracowanych 

i  zatwierdzonych  planach  i  programach  i  powinny  być  przestrzegane  przy 

wykonywaniu czynności związanych z ich wdrażaniem.  

 

 

a.  Ogólna procedura pobierania próbek 

 

Przed  pobraniem  próbek  należy  starannie  przeanalizować  cel,  dla 

którego  będą  one  pobrane,  gdyż  wpłynie  on  zarówno  na  ich  rodzaj  i  liczbę, 

jak i  warunki, które  będą  musiały  być zapewnione  aby  uzyskać wiarygodne 

wyniki. 

 
Materiał od żywych zwierząt należy pobierać bez zadawania zwierzęciu 

zbędnego bólu oraz z zachowaniem szczególnej ostrożności w celu uniknięcia 

niepotrzebnego  stresu  lub  zranienia  zwierzęcia,  jak  również  zagrożenia  dla 

pobierającego  próbkę  lub  innych  osób  uczestniczących  w  próbkobraniu. 

Koniecznym  może  być  mechaniczne  poskromienie  zwierzęcia,  zastosowanie 

środków uspokajających lub narkozy.  

 

Miejsca, z których pobierane są próby, nie mogą być odkażane, ponieważ 

nawet  nieznaczna  ilość  środka  odkażającego  może  inaktywować  zarazek. 
Należy  takie  miejsca  oczyścić  lub  opłukać  wodą  bez  detergentów  i  środków 

dezynfekcyjnych.  Próbki  materiału  biologicznego  pobiera  się  czystymi 

jałowymi narzędziami najlepiej jednokrotnego użycia.  

 

Pobrane  próbki  powinny  być  oznaczone  liczbą  bieżącą,  pod  którą  badane 

zwierzę zostało wpisane na listę w protokole pobierania próbek (Załącznik 2, 4, 5 

lub  6).  Pobierający  próbki  każdorazowo  powinien  sprawdzać  zgodność  ich 

oznakowania z oznakowaniem zwierząt, tak aby nie doszło do zamiany kolejności 

w protokole. 

 
Zużyty  sprzęt  i  odzież  ochronna  jednorazowego  użytku  powinny  być 

wyrzucone  do  wyznaczonego  do  tego  celu,  szczelnie  zamykanego  pojemnika  i 

przekazane  wyspecjalizowanej  jednostce  do  utylizacji  lub  zutylizowane  pod 

urzędowym  nadzorem  w  gospodarstwie.  Miejsce,  w  którym  pobierano  materiał 

zakaźny,  po  zakończeniu  tych  czynności  oczyszcza  się  i  odkaża,  a  pozostały 

materiał 

biologiczny 

i/lub 

części 

zwłok 

zwierząt 

usuwa 

się 

w  sposób  uniemożliwiający  szerzenie  się  choroby,  zgodnie  z  obowiązującymi 

przepisami. 

 
Z  uwagi  na  to,  że  materiał  biologiczny  może  zawierać  niebezpieczne 

czynniki  zakaźne,  każda  próbka  pobranego  materiału  powinna  być 

odpowiednio  opakowana  i  transportowana  z  zachowaniem  szczególnych 

środków ostrożności. Opakowanie musi zapewniać: 

-  dobre  zabezpieczenie  próbki,  tak  aby  w  czasie  transportu  nie 

zmieniła ona swoich cech w stopniu uniemożliwiającym otrzymanie 

prawidłowego wyniku, 

-  całkowitą  ochronę  przed  zakażeniem  ludzi  zaangażowanych 

w transport próbki.  

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

7

Każda  pobrana  próbka  powinna  być  umieszczona  w  mocnym  szklanym 

lub  plastikowym  sterylnym,  szczelnie  zamykanym  pojemniku  (w  miarę 

możliwości  zakręcanym  korkiem  z  gumową  podkładką  lub  uszczelką) 
zabezpieczającym  przed  wyciekiem  zawartości.  Zamknięcie  to  należy  okleić 

dookoła  wodoodporną  taśmą  samoprzylepną.  Powierzchnię  zewnętrzną 

pojemnika  należy  po  zamknięciu  starannie  zdezynfekować,  a  następnie 

opłukać czystą wodą. 

 

Każdy pojemnik należy zaopatrzyć w etykietę zawierającą: 

-  numer identyfikacyjny i opis zwierzęcia, 

-  rodzaj i numer próbki, 

-  datę i miejsce pobrania.  

 
Przekazywanym  próbkom  powinno  towarzyszyć  pismo  przewodnie 

wskazujące  m.  in.  nadawcę,  pochodzenie  przekazywanego  materiału 

biologicznego wraz ze stosowną informacją na jego temat, identyfikacją zwierząt, 

od  których  pobrano  próbki  oraz 

wskazaniem 

kierunku  badania, 

w  celu  wykonania  którego  próbki  są  przekazywane  (wzór  pisma  przewodniego 

zawarto  w  Załączniku  1;  wzór  protokołu  badania,  zawierającego  informacje  na 

temat  zwierząt,  rodzaju  próbek,  terminu  ich  pobrania,  itp.,  zawarty  jest  w 

Załącznikach 2, 4, 5 i 6). 

 

Po  starannym  zapakowaniu  próbki,  pojemnik  z  próbką  i  załączonym 

pismem  przewodnim  umieszcza  się  w  kontenerze,  mocnym  kartonie  lub 

pudełku  drewnianym  i  transportuje  do  właściwego  laboratorium  zgodnie  z 

zachowaniem  odpowiednich  wymagań  czasowych,  temperaturowych,  itp., 

zawartych w Części IV Podręcznika. 

 

Na opakowaniu zewnętrznym kontenera (pudełka), w którym przewozi 

się  pobrany  materiał  biologiczny,  należy  zamieścić  następujące  napisy 

ostrzegawcze i informacje: 

 

 

Materiał biologiczny zakaźny! Nie otwierać podczas transportu! 

 

W sytuacjach szczególnych kontaktować się z

*

 .......................................................  

 ......................................................................................................................................  

 ......................................................................................................................................  

 

*

 

Podać imiona i nazwiska lub nazwy oraz adresy i telefony nadawcy i odbiorcy.

 

 

Wskazane  jest,  aby  osoba  odpowiedzialna  za  pobrane  próbki  (Powiatowy 

Lekarz Weterynarii lub osoba przez niego upoważniona), zgłosiła w laboratorium 

przewidywaną  datę  i  godzinę  dostarczenia  próbki,  aktualne  swoje  dane  (imię 

nazwisko,  adres,  telefony  itp.),  umożliwiające  nawiązanie  kontaktu,  jeśli  okaże 

się to konieczne.  

 

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

8

b.  Zasady pobierania poszczególnych rodzajów materiału biologicznego 

 

i.  Próbki od zwierząt żywych 

 

Pobieranie próbek krwi 

Krew  jest  materiałem  biologicznym  najczęściej  poddawanym 

badaniom 

laboratoryjnym: 

hematologicznym, 

serologicznym, 

wirusologicznym,  bakteriologicznym,  parazytologiczn ym.  W  każdym 

przypadku  próbki  powinny  być  pobierane  jałowo,  a  używany  sprzęt 

powinien być sterylny.  

Do testów serologicznych krew pobiera się „na skrzep” (probówka bez 

antykolagulantów).  W  celu  pozyskania  surowicy,  krew  pobraną 
pozostawia  się  w  temperaturze  pokojowej  na  około  2  godziny.  Po 

wydzieleniu  się  surowicy  skrzep  można  oddzielić  od  ścian  probówk i 

sterylną  długą  igłą,  a  następnie  próbki  umieścić  w  lodówce  w 

temperaturze 4°C.  Po kilku godzinach lub następnego  dnia próbki można 

odwirować – 1000g/10-15min., surowicę zdekantować lub przenieść pipetą 

do probówek typu Ependorf.  

Do pozostałych wymienionych wyżej rodzajów badań krew pobiera się 

do probówek z dodatkiem środków zapobiegających krzepnięciu takich jak 

sole  heparyny  czy  kwas  etyleno-dwuamino  4-octowy  (EDTA).  Próbki 
pobrane  na  antykoagulant  należy  delikatnie  wymieszać.  Do  wykonania 

reakcji PCR preferowany jest EDTA. 

U dużych zwierząt krew pobiera się z żyły jarzmowej, u świń najlepiej 

z żyły czczej przedniej, a u drobiu z żyły skrzydłowej. 

 

Pobieranie próbek kału 

Kał do badań powinien być świeżo oddany lub pobrany bezpośrednio z 

prostnicy.  

Próbka  kału  nie  powinna  być  mniejsza  niż  10g.  Kał  do  badań 

parazytologicz nych 

powinien 

wypełniać 

cały 

pojemnik. 

Czas 

przechowywania  i  transportu  nie  powinien  przekraczać  24  godzin,  a 

próbki należy przechowywać i transportować w temperaturze około 4°C.  

Alternatywną  i  często  zalecaną  metodą  jest  pobieranie  wymazów  z 

prostnicy  (albo  kloaki  u  drobiu).  Wymazówka  w  czasie  pobierania  musi 

mieć  kontakt  z  błoną  śluzową,  a  jej  powierzchnia  powinna  być  pokryta 

kałem.  Pobrane  wymazy  najlepiej  przechowywać  i  transportować  w 

temperaturze 4°C. 

 

Pobieranie próbek ze skóry 

W  chorobach, które powodują powstanie  zmian pęcherzowych należy 

pobrać  z  zachowaniem  zasad  aseptyki,  o  ile  to  możliwe,  2g  tkanki 

nabłonkowej,  nie  mniej  jednak  niż  1g  lub  o  powierzchni  2  cm

2

 

i  umieścić  w  5ml  buforu  fosforanowego  z  gliceryną  w  równych  częściach, 

albo  buforu tris o pH 7,2 – 7,6, najlepiej 7,4. Z pęcherzy nieuszkodzonych 

należy  pobrać  płyn  aspirując  go  strzykawką  i  przenieść  do  sterylnych 

probówek. Transportować w temperaturze 4°C. 

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

9

Pobieranie próbek z układu rozrodczego 

Próbki  można  pobierać  w  dwojaki sposób: płucząc  pochwę lub  worek 

napletkowy albo  poprzez  pobranie  wymazów. Te ostatnie  można pobierać 
również  z  szyjki  macicy,  jak  i  z  samej  macicy.  Nasienie  pobiera  się  za 

pomocą sztucznej pochwy lub przez sztuczną stymulację prącia. Do badań 

przesyła  się  frakcję  bogatą  w  plemniki.  Do  przesyłania  wymagane  są 

specjalne podłoża transportowe. 

 

Pobieranie próbek z oka (worka spojówkowego) i jamy nosowej  

Próbki  pobiera  się  w  sposób  delikatny  z  powierzchni  spojówki. 

Wymazó wki  powinny  być  mocowane  na  elastycznych  aplikatorach.  Ze 

względów  bezpieczeństwa  nie  używa  się  wymazówek  z  aplikatorem 
drewnianym (uchwytem, rękojeścią).  

Wydzielinę  z  nosa  pobiera  się  wymazówką  zwilżoną  w  podłożu 

transportowym, a kontakt wymazówki z wydzieliną powinien trwać około 

1 minuty. 

 

Pobieranie próbek mleka 

Przed  pobraniem  próbek  mleka  należy  dokładnie  oczyścić 

i  wysuszyć  strzyk  i  ujście  kanału  strzykowego  bez  używania  środków 

dezynfekcyjnych. 

Pierwsze 

strumienie 

mleka 

należy 

usunąć, 

a następne pobrać do pojemnika (probówki).  

Do  wykonania  niektórych  testów  można  pobierać  z  jednego 

gospodarstwa mleko zbiorcze.  

Mleko  do  testów  serologicznych  nie  może  być  zamrażane, 

podgrzewane,  czy  też  gotowane  jak  też  poddawane  gwałtownemu 

wytrząsaniu.  Jeżeli  przesłanie  próbek  do  laboratoriu m  opóźni  się,  można 

dodać środek konserwujący. 

Próbki  do  badań  bakteriologicznych,  jeżeli  jest  to  konieczne,  można 

zamrażać. 

 

ii.  Próbki od zwierząt martwych (próbki post-mortem) 

 

Po  śmierci  zwierząt  można  pobierać  próbki  tkanek  do 

przeprowadzania  badań  laboratory jnych  w  różnych  kierunkach. 

Szczegółowe  procedury przeprowadzania  sekcji  zwłok są opisane  w  wielu 

podręcznikach z zakresu anatomii patologicznej. Lekarz przeprowadzający 

sekcję powinien legitymować się dużym zasobem  wiedzy z obszaru chorób 

zakaźnych  i  patologii,  która  pozwoli  mu  dokonać  właściwego  wyboru 

tkanek i narządów do badań.  

Sprzęt  niezbędny  do  sekcji zależy od  wielkości  i gatunku zwierzęcia, 

ale  zazwycza j  niezbędne  są:  nóż,  piła,  topór,  skalpele,  kleszcze,  pęsety, 

nożyczki,  w  tym  również  z  jednym  ramieniem  tępym  do  otwierania  jelit. 

Narzędzia do pobierania próbek powinny być jałowe.  

Przeprowadzający  badanie  musi  posiadać  wystarczającą  ilość 

kontenerów,  pojemników  z  podłożami  transportowymi  dla  określonych 

próbek i kierunków badań. Niezbędne jest posiadanie i używanie w czasie 

sekcji odzieży ochronnej takiej jak: kombinezony, fartuchy, rękawice i buty 

gumowe,  a  także  maski  ochronne  na  twarz  i  oczy.  Te  ostatnie  są 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

10

szczególnie ważne, jeżeli u zwierzęcia podejrzewamy chorobę odzwierzęcą i 

istnieje potencjalne ryzyko zakażenia.  

Wykaz niezbędnego sprzętu i odzieży ochronnej przedstawiony jest na 

stronie 12 niniejszego Podręcznika.  

 

iii.  Próbki środowiskowe 

 

Próbki  środowiskowe  mogą  być  pobierane  w  celu  monitorowania 

higieny  w  miejscu  przebywania  zwierząt  albo  mogą  stanowić  element 

nadzoru  nad  drogami  rozprzestrzeniania  się  choroby.  Pobieranie  próbek 

środowiskowych jest szczególnie ważne w zakładach wylęgowych, stacjach 

unasienniania oraz rzeźniach.  

Najczęściej  pobieranym  materiałem  jest  pomiot  albo  ściółka,  świeży 

kał.  Wymazy  pobierane  są  też  z  powierzchni  przewodów  wentylacyjnych, 

urządzeń  do  karmienia  i  pojenia  zwierząt.  Pasza  może  być  pobierana  z 

urządzeń do karmienia, jak również z silosów (zbiorników). 

 

c.  Procedury  dodatkowe  związane  z  pobieraniem  próbek  od  zwierząt 

w stadzie podejrzanym 

 

Członkowie  zespołu  pobierającego  próbki,  przed  przystąpieniem  do 

próbkobrania,  powinni  omówić  plan  czynności,  ubrać  odzież  ochronną

przeprowadzić  dezynfekcję  osobistą,  a  następnie  rozpocząć  przegląd  stada 

i  badanie  kliniczne  zwierząt  podejrzanych  oraz  pobrać  próbki.  Wykonując 

powyższe  czynności  należy  zachować  szczególną  staranność  w  celu  uniknięcia 

rozprzestrzenienia czynnika zakaźnego. 

 

W  podejrzanym  stadzie  przegląd  zwierząt  gatunków  podatnych 

przeprowadza  się  na  podstawie  aktualnej  księgi  rejestracji  znajdującej  się 

w  każdej  siedzibie  stada,  odrębnie  dla  poszczególnych  gatunków  zwierząt 

oznakowanych  i  ich  numerów  identyfikacyjnych  (jeżeli  zwierzęta  posiadają 
indywidualne oznakowanie). 

 

Podczas  przeglądu  sporządza  się  wykaz  zwierząt  chorych,  podejrzanych 

o  chorobę  lub  o  zakażenie,  a  także  zapisuje  się  wszystkie  objawy  chorobowe, 

które  mogą  świadczyć  o  zakażeniu.  Określa  się  również  miejsca  lokalizacji 

poszczególnych zwierząt w gospodarstwie.  

 

Przegląd  zwierząt  rozpoczyna  się  w  pierwszej  kolejności  od  części, 

w  której znajdują się zwierzęta  uznawane przez  właściciela lub przedstawiciela 
właściciela za zdrowe. Zwierzęta chore, podejrzane o chorobę lub zakażenie bada 

się na  końcu przeglądu. Jeśli zalecenia  tego  nie można  spełnić, szczególnie gdy 

stado  jest  liczne  a  pomoc  niewystarczająca,  przegląd  z  konieczności  rozpoczyna 

się od zwierząt podejrzanych o zakażenie, chorobę lub od chorych. 

 

Zwierzęta  przebywające na  pastwisku w  pobliżu gospodarstwa  zapędza  się 

do pomieszczeń inwentarskich. Zwierzęta  przebywające  na  pastwisku z dala  od 

gospodarstwa,  gromadzi  i  bada  się  na  pastwisku,  szczególnie,  gdy  zachodzi 

obawa,  że  w  czasie  ich  przemieszczania  do  obór  mogłoby  zwiększyć  się  ryzyko 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

11

rozprzestrzeniania  czynnika  zakaźnego,  zainfekowania  innych  zwierząt  lub 

środowiska. 

 
W  celu  zmniejszenia  stresu  zwierząt  możliwe  jest  zastosowanie  środków 

uspokajających oraz, jeżeli jest to wskazane, miejscowego znieczulenia. 

Uspokojenie  i  znieczulenie  korzystnie  wpływa  zarówno  na  bezpieczeństwo 

obsługi jak i zwierząt. Zmniejsza również zagrożenie dla obsługi podczas badania 

klinicznego,  a  przede  wszystkim  umożliwia:  dokładne  badanie  i  ocenę  zmian 

chorobowych,  ocenę  i  wybór  materiału  biologicznego  do  badań  oraz  właściwe 

pobranie próbek. Uspokojenie  jest  szczególnie  ważne  przy  osobnikach  trudnych 

do  poskromienia  oraz  sprawiających  problemy  podczas  badania.  Zwierzętom, 

których  nie  można  schwytać,  środek  uspokajający  w  iniekcji  należy  podać  przy 
użyciu lotek wyrzucanych z broni pneumatycznej. 

 

Jeżeli  przed  badaniem  i  pobieraniem  próbek  wymagane  jest  oczyszczenie 

miejsc niezbędnych do przeprowadzenia badania lub pobrania próbek (np. racic), 

należy obmyć je czystą zimną wodą i miękkim kawałkiem tkaniny lub gąbki.  

Nie  należy  stosować  mydła,  detergentów,  chemicznych  środków 

dezynfekcyjnych lub dezynfekcyjno-myjących, gdyż środki te mogą inaktywować 

czynniki  chorobotwórcze  w  materiale  biologicznym  i  spowodować,  że  próbka 

będzie  nieprzydatna  do  badania  laboratoryjnego  (wynik  może  być  fałszywie 
ujemny). 

Narzędzia  do  pobierania  próbki  i  pojemniki  na  próbki  również  nie  mogą 

mieć kontaktu ze środkami dezynfekcyjnymi, aż do chwili szczelnego zamknięcia 

próbki w pojemniku. 

 

Poza  sporządzeniem  protokołu  pobrania  próbek  (Załącznik  2,  4,  5  lub  6), 

każde  zwierzę,  od  którego  została  pobrana  próbka  należy  oznaczyć  łatwo 

dostrzegalnym znakiem np. farbą w aerozolu, aby można było je łatwo odszukać, 

jeśli konieczne będzie powtórne pobranie próbek.  

 
Po  zakończonym  badaniu  klinicznym  i  pobraniu  próbek  wszyscy,  którzy 

brali  w  tych  działaniach  udział,  powinni  dokładnie  zdezynfekować  ręce, 

narzędzia,  najbliższe  otoczenie  i  odzież  ochronną.  Odzież  po  zdjęciu  należy 

umieścić  w  podwójnych  workach  foliowych,  worki  dokładnie  zamknąć,  a  ich 

powierzchnie  zewnętrzne  zdezynfekować  i  przekazać  wyspecjalizowanej  firmie 

do 

utylizacji 

lub 

zutylizować 

pod 

urzędowym 

nadzorem 

w gospodarstwie. 

 

Uwaga!  Jeśli  podejrzenie  choroby  zostanie  potwierdzone,  zaleca  się  aby 

członkowie  zespołu  pobierającego  próbki  przez  trzy  dni  unikali  kontaktów  ze 

zwierzętami podatnymi oraz nie przebywali w miejscach gromadzenia się takich 

zwierząt. 

 

 

 

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

12

d.  Zestaw  do  pobierania  materiału  biologicznego  do  laboratoryjnych 

badań rozpoznawczych chorób zakaźnych zwierząt (ilości minimalne) 

 

W skład zestawu do pobierania materiału biologicznego do laboratoryjnych 

badań rozpoznawczych dla chorób zakaźnych zwierząt wchodzi: 

1.  Kombinezon ochronny z kapturem ................................ ..   2 szt. 

2. Fartuch gumowy ................................ ................................    2 szt. 

3. Pokrowce ochronne na buty lub buty gumowe ..............   2 pary 

4. Rękawice gumowe ................................ ..............................    2 pary 

5. Okulary ochronne lub maska na twarz ...........................    2 szt. 

6. Środki przeciwbólowe i uspokajające 

7. Pęseta ................................ ................................ ...................    2 szt. 
8. Nożyczki chirurgiczne z ostrym końcem ..........................    2 szt. 

9. Nożyczki z jednym końcem tępym ................................................  2 szt. 

10. Łyżeczki z ostrymi krawędziami ................................ ......   2 szt. 

11. Skalpele ................................ ................................ ...............   2 szt. 

12. Strzykawki jednorazowe ................................ ...................    5 szt. 

13. Igły do strzykawek ................................ ............................    100 szt. 

14. Probówki z igłą do pobierania krwi (min. 10 ml): 

a)  dla bydła ................................ ................................ ..   50 szt. 

b)  dla świń ................................ ................................ ...   40 szt. 

15. Kleszcze donosowe dla bydła ................................ ............   1 szt. 

16. Kleszcze donosowe dla świń ................................ .............   1 szt. 

17. Zgłębnik do pobierania próbek śluzu w przypadku 

podejrzenia o nosicielstwo ................................ ...............   1 szt. 

18. Pałeczki do wymazów z nosa dla świń, jałowe 

w probówce z podłożem transportowym ..........................    10 szt. 

19. Probówki ze środkiem przeciwkrzepliwym (heparyna 

lub sól potasowa EDTA) ................................ ...................    10 szt.  

20.Pojemnik na próbki mały (20—30 ml) odporny na 

rozbicie z zakręcanym korkiem ................................ .......   4 szt. 

21.Pojemnik na probówki duży (100—200 ml) wyłożony 

materiałem amortyzacyjnym i resorbującym z 

zakręcanym korkiem ................................ .........................    2 szt. 

22. Kontener do transportu, chłodzony ................................    2 szt. 

23. Roztwór 10% formaliny ................................ .....................   

24. Soda kaustyczna w płatkach (0,5 kg) lub inne środki 

dezynfekcyjne 

25. Pisak wodoodporny ................................ ...........................    2 szt. 

26. Naklejki samoprzylepne ................................ ...................    100 szt. 
27. Taśma uszczelniająca ................................ .........................    5 szt. 

28. Worki foliowe na zużyte materiały ................................ .   100 szt. 

 

Ponadto, wskazane jest, aby w czasie pobierania prób posiadać: 

1.  termometr lekarski, 

2.  notes i pisak, 

3.  kolorowy mazak lub farbę w aerozolu do znaczenia zwierząt, 

4.  latarkę, zapasowe baterie, 

5. formularze druków oficjalnych (pismo przewodnie, listy zwierząt). 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

13

III.  Wytyczne  pobierania  próbek  do  diagnostyki  określonych 

chorób  zakaźnych  zwierząt  z  zastosowaniem  właściwej 
metody badawczej 

 

 

Uwagi ogólne 

 

Część  III  Podręcznika  zawiera  wytyczne  w  zakresie  pobierania, 

przechowywania  i  transportu  próbek  materiału  biologicznego  pobranego  w  celu 

diagnostyki  określonych  chorób  zakaźnych  zwierząt  przy  zastosowaniu  właściwej 

metody badawczej. 

 
Wytyczne  uporządkowane  są  według  zwierząt,  od  których  pobierany  jest 

materiał biologiczny, i tak: 

 

-  Część  zielona  zawiera  wytyczne  pobierania  próbek  do  diagnostyki 

chorób zakaźnych bydła; 

 

-  Część  różowa  zawiera  wytyczne  pobierania  próbek  do  diagnostyki 

chorób zakaźnych zwierząt świniowatych; 

 

Część granatowa

 zawiera wytyczne pobierania próbek do diagnostyki 

chorób zakaźnych 

zwierząt jednokopytnych

 

Część  fioletowa

  zawiera  wytyczne  pobierania  próbek  do  diagnostyki 

chorób zakaźnych 

małych przeżuwaczy

 

-  Część  pomarańczowa  zawiera  wytyczne  pobierania  próbek  do 

diagnostyki chorób zakaźnych ptaków; 

 

-  Część  żółta  zawiera  wytyczne  pobierania  próbek  do  diagnostyki 

chorób zakaźnych pszczół; 

 

-  Część  niebieska  zawiera  wytyczne pobierania  próbek do diagnostyki 

chorób zakaźnych zwierząt akwakultury; 

 

Część  brązowa

  zawiera  wytyczne  pobierania  próbek  do  diagnostyki 

chorób zakaźnych wspólnych dla 

różnych gatunków zwierząt

 

Choroby  przenoszone  przez  zwierzęta,  które  stanowią  zagrożenie  również  dla 

zdrowia ludzkiego (zoonozy) i w związku z tym wymagające szczególnej ostrożności, 

zostały  wskazane  poprzez  umieszczenie  w  punkcie  UWAGI  SPECJANE 

następującej  informacji:  „Ze  względu  na 

potencjalne  ryzyko  zakażenia  osób

 

zaangażowanych  w  próbkobranie  należy  zachować  szczególnie  surowe  środki 

ostrożności.” 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

14

BYDŁO 

 

KIERUNEK BADANIA 

ENZOOTYCZNA BIAŁACZKA BYDŁA 

Enzootic bovine leucosis - EBL 

METODA / TEST 

AGID 

ELISA 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Krew zwierząt podatnych. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

W zależności od statusu epizootycznego regionu, liczba pobieranych próbek 

powinna być zgodna z programem zwalczania lub kontroli EBL.  

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

·  jałowa igła 

·  próbówka bez antykoagulantu 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Krew należy pobierać jałową igłą z żyły jarzmowej. Probówkę bez 

antykoagulantu po napełnieniu krwią do 2/3 objętości (około 7 ml) należy 

zamknąć szczelnie korkiem. 

WYMAGANIA 
ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Świeżo pobraną krew należy odstawić na około 2 godziny w temperaturze 
pokojowej, a następnie (najlepiej tego samego dnia) dostarczyć do 

laboratorium. W czasie transportu próbki krwi chronić przed 

przemarznięciem lub nadmiernym przegrzaniem, gdyż powoduje to 

hemolizę. 

Próbki surowicy można przechowywać w lodówce( w temperaturze +5°C ± 

3°C) do 7 dni lub zamrażarce (temperatura - 20°C ± 3°C). 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 6 – Arkusz wyników badania w kierunku enzootycznej 

białaczki bydła 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 
LABORATORIUM 

Najlepiej w dniu pobrania próbki. 

W razie trudności w dostarczeniu próbek krwi do laboratorium w dniu ich 

pobrania, można po uformowaniu się skrzepu w temperaturze pokojowej 

przechować je do dnia następnego w temperaturze 2-8ºC. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

·  ZHW w Warszawie, TP w 

Ostrołęce 

·  PIWet-PIB w Puławach 
 

·  ZHW w Bydgoszczy 

·  ZHW w Bydgoszczy, OT we 

Włocławku 

·  ZHW w Łodzi 

·  ZHW w Krakowie 

·  ZHW w Warszawie, TP w 

Siedlcach 

·  ZHW w Warszawie, TP w 

Ostrołęce 

·  ZHW w Opolu 

·  ZHW w Krośnie 

·  ZHW w Białymstoku 

·  ZHW w Białymstoku Oddz. w 

Łomży 

·  ZHW w Gdańsku 

·  ZHW w Katowicach 

·  ZHW w Kielcach 

·  ZHW w Poznaniu  

·  ZHW w Poznaniu Prac. w Lesznie 

·  ZHW w Poznaniu Prac. w 

Koninie 

·  ZHW w Szczecinie 

·  ZHW w Szczecinie Oddz. w 

Koszalinie 

·  PIWet-PIB w Puławach 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

15

PRAWODAWSTWO  UE  Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie 

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz 
wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną
 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 27 czerwca 

2005 r. w sprawie szczegółowych wymagań weterynaryjnych 

niezbędnych do uzyskania i zachowania uznania stada lub 

gospodarstwa za urzędowo wolne lub wolne od chorób zakaźnych 

zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 30 maja 2007 r. w sprawie 

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła, 

gruźlicy bydła, brucelozy u bydła, wścieklizny, gąbczastej 

encefalolopatii oraz programu zwalczania i kontroli zakażeń wirusami 
wysoce zjadliwej grypy ptaków dawny pomór drobiu w drobiu i ptaków 

dzikich 

·  Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 18 grudnia 2007 r. w sprawie 

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 5 marca 

2008 r. w sprawie zwalczania enzootycznej białaczki bydła 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

16

BYDŁO 

 

KIERUNEK BADANIA 

GĄBCZASTA ENCEFALOPATIA BYDŁA 

Bovine spongiform encephalopathy - BSE 

METODA / TEST 

Szybki test 

ELISA.  

Szybki test Bio-

Rad. 

Szybki test 

Enfer TSE. 

Szybki test 

IDEXX. 

UWAGI SPECJALNE 

Ze względu na 

potencjalne ryzyko zakażenia osób

 zaangażowanych w 

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności. 

Przedmiotem  badania jest wykrywanie patologicznej formy białka 

prionowego (PrP

Sc

) szybkimi testami w próbkach pobranych z rdzenia 

przedłużonego. 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Rdzeń przedłużony z regionem zasuwki (Załącznik 7 – Opis prawidłowo 

pobranej próbki do badań w kierunku BSE z wykorzystaniem szybkich 

testów).  

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Zgodnie z programem zwalczania.  

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Specjalna łyżeczka (szpatułka). 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Do badania należy pobrać rdzeń przedłużony z rejonem zasuwki. Każdą 

pobraną próbkę wkłada się do odrębnego pojemnika  (patrz również 

Załącznik 7) 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Nie zamrażać, przechowywać w temperaturze 2-8°C. 

DOKUMENTACJA 
TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 
POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Jak najszybciej. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

·  ZHW w 

Warszawie 

·  ZHW w 

Warszawie 

TP w 

Siedlcach 

·  ZHW w 

Gdańsku 

·  ZHW w 

Poznaniu 

Prac. w 

Lesznie 

·  PIWet-PIB w 

Puławach 

 

·  ZHW w 

Gdańsku 

 

 

 

·  ZHW w 

Krakowie 

·  PIWet-PIB w 

Puławach 

 

PRAWODAWSTWO  UE 

·  Rozporządzenie Parlamentu Europejskiego i Rady nr 999/2001 z dnia 

22 maja 2001 r. ustanawiające zasady dotyczące zapobiegania, kontroli 

i zwalczania niektórych przenośnych gąbczastych encefalopatii 

·  Rozporządzenie Komisji (WE) nr 21/2008 z dnia 11 stycznia 2008 r. 

zmieniające załącznik X do rozporządzenia (WE) nr 999/2001 

Parlamentu Europejskiego i Rady w odniesieniu do wykazów szybkich 

testów 

PRAWODAWSTWO 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

17

POLSKIE 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 
obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 30 maja 2007 r. w sprawie 

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła, 

gruźlicy bydła, brucelozy u bydła, wścieklizny, gąbczastej 

encefalolopatii oraz programu zwalczania i kontroli zakażeń wirusami 

wysoce zjadliwej grypy ptaków dawny pomór drobiu w drobiu i ptaków 

dzikich 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

18

BYDŁO 

 

KIERUNEK BADANIA 

GRUŹLICA BYDŁA 

Bovine tuberculosis 

METODA / TEST 

Wykrywanie drobnoustrojów z rodzaju Mycobacterium w materiale 

biologicznym. Obejmuje następujące etapy: 

·  wstępne badanie anatomopatologiczne próby tkankowej 

·  badanie mikroskopowe 

·  badanie hodowlane 

·  badanie biologiczne na zwierzętach laboratoryjnych 

·  identyfikację  genotypową izolatów Mycobacterium. 

UWAGI SPECJALNE 

Ze względu na 

potencjalne ryzyko zakażenia osób

 zaangażowanych w 

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności. 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Do badań diagnostycznych pobiera się: 

·  wycinki chorobowo zmienionych narządów i organów miąższowych, 

takich jak: płuca, wątroba, śledziona wraz z okolicznymi węzłami 

chłonnymi – w przypadku uboju, padnięcia lub zabicia bydła, które 

wykazywało dodatni wynik w teście tuberkulinowym; 

·  węzły chłonne: okołogardzielowe, oskrzelowe, śródpiersiowe, 

nadwymieniowe, kąta żuchwy, krezkowe oraz wnęki 

wątroby – w przypadku braku zmian chorobowych oraz w przypadku 

zabicia bydła, które wykazywało dodatni wynik w teście 

tuberkulinowym; 

·  inne próby, w epizootycznie uzasadnionych przypadkach: 

- kał, 

- mleko, 

- wydzielina narządów rodnych, 

- wykrztusina, 

- nasienie, 

- mocz. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Badana laboratoryjnie jest każda sztuka bydła tuberkulinododatniego 

poddanego ubojowi lub zabiciu oraz każde zwierzę padłe, u którego w czasie 

sekcji stwierdzono zmiany anatomo-patologiczne nasuwające podejrzenie 

gruźlicy. 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Próby pobiera się czystymi, jałowymi narzędziami, najlepiej jednorazowego 

użytku: 

-  wydzielina narządów rodnych, pobierana jest jałowym tamponem 

lub kateterem; 

-  wyksztusina, pobierana jest pędzelkiem dotchawicowym; 

-  nasienie, pobierane jest za pomocą sztucznej pochwy; 

-  mocz od samic, pobierany jest kateterem.  

Dodatkowo: 

·  mocny, sterylny, szklany lub plastikowy pojemnik, zamykany 

szczelnym przykryciem zabezpieczającym przed wyciekiem zawartości; 

·  wodoodporna taśma samoprzylepna. 
Do zapakowania wszystkich pobranych prób: 

·  kontener, mocny karton lub drewniane pudełko. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Miejsca, z których są pobierane próby nie powinny być odkażane, ze 

względu na możliwość inaktywowania czynnika zakaźnego nawet przez 

nieznaczną ilość produktu biobójczego. Miejsca te oczyszcza się lub płucze 

wodą bez detergentów i produktów biobójczych. 

Próby inne: 

-  Kał, pobierany bezpośrednio z prostnicy. Wielkość próbki – 2-5 g. 

-  Próby mleka, pobierane są jałowo w końcowej fazie udoju, w 

objętości około 25-50 cm

3

 z każdej ćwiartki. W okresie letnim do 

próby mleka możemy dodać kwas borny, do uzyskania końcowego 

stężenia w próbce 0,5%. 

-  Wydzielina narządów rodnych - objętość próbki 2-10 cm

3

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

19

-  Wyksztusina, pobierana jest pędzelkiem dotchawicowym. 

-  Nasienie - objętość próbki 10-50 cm

3

-  Mocz - objętość próby około 100 cm

3

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Każdą próbę umieszcza się w mocnym, sterylnym, szklanym lub 

plastikowym pojemniku, zamykanym szczelnym przykryciem 

zabezpieczającym przed wyciekiem zawartości. Przykrycie okleja się 

dookoła wodoodporną taśmą samoprzylepną. Powierzchnię zewnętrzną 

pojemnika po jego zamknięciu odkaża się, a następnie płucze się czystą 

wodą i osusza. Każdy pojemnik zaopatruje się w etykietę zawierającą opis 

zwierzęcia i jego numer identyfikacyjny, rodzaj próby, datę i miejsce jej 

pobrania, imię i nazwisko oraz adres posiadacza zwierzęcia. 

Próby zapakowane w sposób określony powyżej umieszcza się w 
kontenerze, mocnym kartonie lub drewnianym pudełku i transportuje do 

laboratorium w temperaturze 4-8°C. Dopuszcza się transport zamrożonych 

prób, bez rozmrażania ich w trakcie transportu. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Próby przesyła się bezpośrednio do laboratorium, w możliwie najkrótszym 

terminie.  

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 
POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

 

PRAWODAWSTWO UE 

·  Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie 

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz 

wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną 

·  Rozporządzenie Komisji (WE) nr 1226/2002 z dnia 8 lipca 2002 r. 

zmieniające załącznik B do dyrektywy Rady 64/432/EWG 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 23 listopada 

2004 r. w sprawie zwalczania gruźlicy bydła 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zakażeń zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 27 czerwca 

2005 r. w sprawie szczegółowych wymagań weterynaryjnych niezbędnych 

do uzyskania i zachowania uznania stada lub gospodarstwa za urzędowo 

wolne lub wolne od chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji 

o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi 

zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób 

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także 
związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe
 

·  Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 30 maja 2007 r. w sprawie 

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła, 

gruźlicy bydła, brucelozy u bydła, wścieklizny, gąbczastej encefalolopatii 

oraz programu zwalczania i kontroli zakażeń wirusami wysoce zjadliwej 

grypy ptaków dawny pomór drobiu u drobiu i ptaków dzikich 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

20

BYDŁO 

 

IERUNEK BADANIA 

ZAKAŹNE ZAPALENIE NOSA I TCHAWICY / OTRĘT BYDŁA 

Infectious bovine rhinotracheitis / infetious pustular vulvovaginitis 

IBR/IPV 

METODA / TEST 

ELISA gB  

SN 

Test izolacji. 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Krew zwierząt podatnych. 

Wycinki narządów 

wewnętrznych płodu, 

łożysko, wymazy z 

worka spojówkowego, 
nosa i układu 

rozrodczego. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Do określenia w przypadku przyjęcia programu 

zwalczania. 

 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Sterylna próbówka. 

Sprzęt używany do 

sekcji. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Krew pobierać do sterylnych probówek z 

zachowaniem zasad aseptyki. 

Próbki pobiera się do 

sterylnych naczyń, 

szczelnie zamykanych, 

każdy narząd 

oddzielnie. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Nie zamrażać. 

 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 
DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Jak najszybciej. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

·  ZHW w Bydgoszczy 

·  ZHW w Krośnie 

·  ZHW w Poznaniu 

·  ZHW w Szczecinie 

Oddz. w Koszalinie 

·  PIWet-PIB w 

Puławach 

 

 

 

PRAWODAWSTWO  UE  Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie 

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz 

wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

21

BYDŁO 

 

KIERUNEK BADANIA 

ZARAZA PŁUCNA BYDŁA 

Contagious bovine pleuropneumonia - CBPP 

METODA / TEST 

c-ELISA 

OWD 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Krew zwierząt podatnych. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Od każdego zwierzęcia podejrzanego o chorobę.  

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

·  jałowa igła 

·  probówka bez antykoagulantu 

Zaleca się stosowanie zestawów jednorazowego użytku, zawierających 
wkładkę ułatwiającą wydzielanie się surowicy i hermetycznie zamykanych. 

PROCEDURA 
POBRANIA PRÓBKI 

Krew należy pobierać jałową igłą z żyły jarzmowej. Probówkę bez 
antykoagulantu po napełnieniu krwią do 2/3 objętości (ok. 7 ml) należy 

zamknąć szczelnie korkiem i niezwłocznie oznakować. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Probówki z krwią dokładnie oznakować i dołączyć pismo przewodnie. 

Próbki pełnej krwi, świeżo pobranej, przed transportem, należy odstawić 

na około 2 godziny w temperaturze pokojowej. 

W czasie transportu próbki krwi chronić przed przemarznięciem lub 

nadmiernym przegrzaniem, gdyż powoduje to hemolizę lub przerost florą 

bakteryjną. 

Transport i przechowywanie surowicy w stanie zamrożenia -20°C. W czasie 

transportu surowica nie może ulec rozmnożeniu. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

W dniu pobrania próbki. 

W razie trudności dostarczenia próbek krwi do laboratorium w dniu ich 

pobrania, można, po uformowaniu się skrzepu w temperaturze pokojowej, 

do dnia następnego przechować je w chłodni (4°C ). Zebrane i 

przechowywane w chłodni (4ºC) surowice są przydatne do badań w OWD 

przez 2 dni. 

Próbki surowic, które nie zostaną przebadane w ciągu najbliższych 48 

godzin należy zamrozić w temperaturze -20ºC w szczelnie zamkniętych 

probówkach. 

LABORATORIUM 
WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

 

 

PRAWODAWSTWO  UE 

·  Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie 

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz 

wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną 

·  Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 

82/894/EWG w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we 

wspólnocie poprzez włączenie niektórych chorób do wykazu chorób 

wymagających zgłaszania oraz skreśleniu z tego wykazu 

enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia u świń 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 
chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

22

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 14 września 

2007 r. w sprawie zwalczania zarazy płucnej bydła 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

23

ZWIERZĘTA ŚWINIOWATE 

 

KIERUNEK BADANIA 

AFRYKAŃSKI POMÓR ŚWIŃ 

African swine fever - ASF 

METODA / TEST 

ELISA 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Krew zwierząt podatnych. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Od podejrzanych o chorobę zwierząt.  

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

·  jednorazowa igła 

·  sterylna probówka bez dodatku środka konserwującego 

lub 

·  tubostrzykawka 

PROCEDURA 
POBRANIA PRÓBKI 

Do badań należy pobrać próbki krwi pełnej od świń chorujących 
maksymalnie długo lub od świń podejrzanych, które miały styczność ze 

zwierzętami zakażonymi lub podejrzanymi o zakażenie wirusem ASF. 

Krew należy pobierać igłą jednorazową do sterylnej probówki (lub 

tubostrzykawki) bez dodatku środka konserwującego; z igły krew powinna 

wolno spływać do probówki po ścianie wewnętrznej do 2/3 pojemności.  

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Po pobraniu krew należy stopniowo schłodzić, ale nie zamrażać. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 
DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

W ciągu 12 godzin od pobrania. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

PIWet-PIB w Puławach 

PRAWODAWSTWO  UE 

·  Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie 

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz 
wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną
 

·  Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 

82/894/EWG w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we 
wspólnocie poprzez włączenie niektórych chorób do wykazu chorób 

wymagających zgłaszania oraz skreśleniu z tego wykazu 

enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia u świń 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 23 czerwca 

2004 r. w sprawie zwalczania afrykańskiego pomoru świń 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

24

ZWIERZĘTA ŚWINIOWATE 

 

KIERUNEK BADANIA 

CHOROBA AUJESZKYEGO U ŚWIŃ 

Aujeszky's disease in pigs 

METODA / TEST 

Diagnostyka przyżyciowa: 

·  ELISA 

·  Izolacja wirusa z wymazów (rzadko) 

·  IF z wymazów (rzadko) 

Diagnostyka pośmiertna: 

·  Izolacja wirusa z narządów 

·  IF z narządów (rzadko) 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Przyżyciowo: 

·  krew – badania serologiczne (świnie, dziki) 

·  wymazy z części nosowo-gardłowej – izolacja wirusa (warchlaki, 

tuczniki) 

Pośmiertnie – izolacja wirusa: 

·  świnie: połowa mózgu pozyskana z cięcia podłużnego, migdałki, 

śledziona, płuca od świeżo padłych prosiąt lub warchlaków 

(najbardziej polecany materiał to tkanka mózgowa) 

·  inne zwierzęta: część rdzenia kręgowego odpowiedzialną za 

unerwianie części skóry objętej świądem, skóra wraz z tkanką 

podskórną w miejscach wykazujących świąd 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Krew – świnie 

W badaniach serologicznych krew pobiera się od reprezentatywnej liczby 

zwierząt: 

 

a) 

liczba próbek ukierunkowanych na wykrycie zakażenia stada przy 95% 
prawdopodobieństwa wykrycia 

Wielkość 

stada 

Współczynnik szerzenie się 

czynnika zakaźnego 

Liczba próbek 

1* 

10 

20* 

50 

50 

48 

35 

10 

12 

100 

95 

78 

45 

22 

13 

150 

130 

95 

49 

25 

13 

200 

155 

105 

51 

26 

14 

300 

189 

117 

54 

27 

14 

500 

225 

129 

56 

28 

14 

750 

246 

135 

57 

28 

14 

1000 

258 

138 

57 

28 

14 

1500 

271 

142 

58 

29 

14 

2000 

277 

143 

58 

29 

14 

5000 

290 

147 

59 

29 

14 

 

b) 

liczba próbek ukierunkowanych na wykrycie zakażenia stada przy 99% 
prawdopodobieństwa wykrycia: 

Wielkość 

stada 

Współczynnik szerzenie się 

czynnika zakaźnego 

Liczba próbek 

1* 

10 

20* 

50 

50 

50 

42 

29 

17 

100 

99 

90 

59 

36 

19 

150 

143 

117 

68 

38 

20 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

25

200 

180 

136 

73 

40 

20 

300 

235 

160 

78 

41 

20 

500 

300 

183 

83 

42 

21 

750 

343 

197 

85 

43 

21 

1000 

368 

204 

86 

43 

21 

1500 

395 

212 

88 

44 

21 

2000 

410 

216 

88 

44 

21 

5000 

438 

223 

89 

44 

21 

 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Krew 

Świnie – sterylna igłoprobówka, niezawierająca dodatków środków 

zapobiegających krzepnięciu krwi. 

Dziki – sterylna igła i sterylna próbówka nie zawierająca dodatków 

środków zapobiegających krzepnięciu krwi lub probówko-strzykawka o 

pojemności co najmniej 7,5 ml. 

Wymazy z nosa – sterylny patyczek wymazowy. 

Wycinki narządów – sterylny, szczelnie zamykany pojemnik. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Krew 

Świnie – krew należy pobrać z żyły czczej przedniej lub żyły jarzmowej 

powierzchownej do 3/4 objętości sterylnej igłoprobówki. Krew z igły 

powinna wolno spływać do probówki po ściance wewnętrznej, co zmniejsza 

ryzyko wystąpienia hemolizy.  

 

Dziki – krew pobiera się bezpośrednio po odstrzeleniu, podczas 

wytrzewiania z jamy klatki piersiowej, dużych żył brzusznych lub komór 

serca. Krew pobiera się do 3/4 objętości sterylnej probówki lub do 

całkowitego wypełnienia probówko-strzykawki o pojemności co najmniej 
7,5ml. Przy pobieraniu krwi probówko-strzykawką jej konus należy 

zanurzyć we krwi, po czym powoli odciągać tłoczek do uzyskania oporu, aż 

do wyraźnego „kliknięcia”, po czym tłoczek odłamać, a konus strzykawki 

zatkać zatyczką. Uważać aby nie zaaspirować powietrza lub innych 

elementów. 

Wymazy z nosa – w celu pobrania wymazu należy unieruchomić zwierzę, 

trzymając za ryj jedną ręką, delikatnie odchylić głowę ku górze, a drugą 

ręką umieścić koniec sterylnego patyczka wymazowego w nozdrzu 

zwierzęcia, w części dystalnej jamy nosowej i energiczne potrzeć nabłonek 

śluzowy, dla pewności, iż wymaz zawiera zarówno śluz jak i komórki z 

wnętrza nozdrza. 
Wycinki narządów - materiał należy pobrać z zachowaniem zasad 

aseptyki, umieścić w oznaczonym pojemniku. W przypadku świń 

materiałem preferowanym przy izolacji wirusa jest w pierwszej kolejności 

mózg oraz migdałki, a w dalszej kolejności pozostałe wycinki. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Krew 

Po napełnieniu probówki krwią należy ją szczelnie zamknąć i czytelnie 

oznakować.  

Świnie – pozyskaną krew początkowo przechowywać w temperaturze 

pokojowej, do czasu wydzielenia się surowicy, jeżeli to nie nastąpi do 12 

godzin wówczas w celu przyspieszenia wydzielenia surowicy czystą igłą 
oddzielić formujący się skrzep od ścianki probówki. Po wydzieleniu się 

surowicy, próbki poddać schłodzeniu do temperatury 2-8°C. Podczas 

przechowywania krwi w chłodziarce chronić próbki przed przypadkowym 

zamrożeniem prowadzącym do hemolizy. 

W czasie transportu próbki zabezpieczać przed nadmiernym wpływem 

wysokiej temperatury, bezpośredniego oddziaływania promieni słonecznych 

i wstrząsów. Próbki należy transportować w pozycji pionowej.  

Dziki – po napełnieniu probówki należy umieścić w pozycji pionowej, w 

miarę możliwości chronić przed wstrząsami i możliwie szybko umieścić w 

temperaturze pokojowej w celu wydzielenia się surowicy. Po wydzieleniu 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

26

się surowicy próbki poddać schłodzeniu do temperatury 2-8°C. Podczas 

przechowywania krwi w chłodziarce chronić próbki przed przypadkowym 
zamrożeniem prowadzącym do hemolizy. 

W czasie transportu próbki zabezpieczać przed nadmiernym wpływem 

wysokiej temperatury, bezpośredniego oddziaływania promieni słonecznych 

i wstrząsów. Próbki należy transportować w pozycji pionowej.  

Wymazy z nosa – wymazówkę umieścić w probówce z podłożem 

transportowym dla wirusów i w stanie schłodzenia do temperatury 2-8°C 

przesłać do laboratorium. 

Wycinki narządów – próbki niezwłocznie poddać schłodzeniu do 

temperatury 2-8°C i w takim stanie przesłać do laboratorium. Próbek nie 

należy zamrażać. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

oraz, w zależności od pobieranego materiału: 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

lub 

·  Załącznik 4 – Protokół pobrania prób krwi od świń do badań 

kontrolnych w kierunku choroby Aujeszkyego 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Krew - czas od pobrania próbek do ich dostarczenia do laboratorium nie 

może przekraczać 48 godzin. 

Wymazy z nosa i wycinki narządów - w czasie nieprzekraczającym 24 

godzin dostarczyć do laboratorium. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 
METODY 

Diagnostyka przyżyciowa: 

·  ZHW w Bydgoszczy (ELISA) 

·  ZHW w Krośnie (ELISA) 

·  ZHW w Poznaniu (ELISA) 

·  ZHW w Poznaniu Prac. w Koninie (ELISA) 

·  ZHW w Poznaniu Prac. w Lesznie (ELISA) 

·  ZHW w Szczecinie (ELISA) 

·  PIWet-PIB w Puławach (ELISA) 

PRAWODAWSTWO  UE  Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie 

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz 

wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 19 marca 2008 r. w sprawie 

wprowadzenia programu zwalczania choroby Aujeszkyego u świń 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

27

ZWIERZĘTA ŚWINIOWATE 

 

KIERUNEK BADANIA 

CHOROBA PĘCHERZYKOWA ŚWIŃ  CZĘŚĆ I 

Swine vesicular disease - SVD 

METODA / TEST 

Rozpoznanie wirusologiczne. 

RT-PCR 

ELISA 

Test izolacji. 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

·  Nabłonek (materiał najbardziej odpowiedni) 

·  płynna zawartość pęcherzy 

·  krew od świń i dzików. 

Krew zwierząt 

podatnych. 

Dodatkowo: 

·  kał 

·  wymaz z nosa. 

 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Liczba próbek powinna być adekwatna do częstotliwości występowania 

poszukiwanego czynnika w populacji.  

W celu kontroli występowania SVD corocznie bada się, na obszarze 

powiatu, próbki krwi pobrane od 10 sztuk świń. 

Jeżeli choroba występuje w formie klinicznej pobrać próbkę od 2-4 

zwierząt.  

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Próbki pobiera się czystymi, jałowymi narzędziami, do jałowych naczyń, 

najlepiej jednorazowych. 

·  zawartość pęcherza: strzykawka z igłą, 

·  krew: probówka z etykietą, w systemie próżniowym, 

·  kał: łyżeczka, naczynie z szerokim otworem i zakręcą pokrywką, 

·  wymazy z nosa: jałowy wacik lub wymazówka. 

Uwaga! Naczynie na próbkę o pojemności ok. 10ml musi być 

przystosowane do ewentualnego zamrażania, szczelnie zamykane, aby 

gaz nie przedostał się do jego wnętrza, ponieważ spowoduje obniżenie 
pH i inaktywację wirusa (próbka taka jest nieprzydatna do badania). 

Zalecany sposób pakowania materiałów biologicznych z podejrzeniem 

pryszczycy i/lub choroby pęcherzykowej świń oraz sprzęt niezbędny do 

zapakowania są opisane w Załączniku 3. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Próbkę, każdą oddzielnie, pobiera się od zwierząt 

żywych lub martwych, (zabitych lub padłych). 

Nabłonek - próbkę ze ścian nieuszkodzonego lub 

świeżo rozerwanego pęcherza, nie mniej niż 1g 

(wielkość znaczka pocztowego 2 cm

2

). 

Zawartość pęcherza - pobrać strzykawką z igłą, 
tyle ile tylko możliwe, nie mniej niż 3g. 

Krew - 5-10ml zarówno od zwierząt zdrowych, 

podejrzanych, chorych i rekonwalescentów. 

Próbkę krwi pobrać jałowo. Podczas pobierania 

krew powinna powoli spływać po ściance 

probówki, do 2/3 objętości, nie dopuścić do 

hemolizy krwinek Probówki napełnionej krwią 

nie otwierać. 

5-10ml zarówno od 

zwierząt zdrowych, 

podejrzanych, chorych i 

rekonwalescentów. 

Próbkę krwi pobrać 

jałowo. Podczas 
pobierania krew 

powinna powoli 

spływać po ściance 

probówki, do 2/3 

objętości, nie dopuścić 

do hemolizy krwinek 

Probówki napełnionej 

krwią nie otwierać. 

Kał - 20g kału od świń 

lub z pomieszczenia, w 

którym przebywają lub 

przebywały świnie 
podejrzane o chorobę 

pęcherzykową świń.  

Wymazy z nosa - 

Pobrać co najmniej 

dwa wymazy z nosa. 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

28

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 
PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Wirus choroby pęcherzykowej świń, oporny jest 

zarówno na wahania temperatury w szerokim 
zakresie i pH w granicach wartości 2,5-12. 

Jednakże, w związku z faktem, że epizootie 

chorób świń z objawami pęcherzowymi, 

zwłaszcza w początkowej fazie traktuje się jako 

podejrzenie pryszczycy, próbkę transportuje się w 

warunkach optymalnych dla wirusa pryszczycy, 

tj. pH 7,2 -7,6 oraz temp. +5°C(±

 

3

 

°C). 

Nabłonek - próbkę nabłonka schłodzić, nie 

zamrażać. Transport w +5

o

C(±3

 

°C). 

Surowicza zawartość pęcherza - warunki 

transportu jak w przypadku nabłonka - pH 7.2 – 

7.6, temperatura +5°C(±

 

3

 

°C). 

Po pobraniu delikatnie 

wymieszać krew ze 
środkiem 

zapobiegającym 

krzepnięciu - EDTA 

(kwasem etylenodwu-

aminoczterooctowym) 

lub solami heparyny, a 

następnie schłodzić. 

Nie zamrażać.  

Krew transportować 

schłodzoną +5°C 

(±3°C). 

Kał - transport w 

+5°C(±3°C). 

Wymazy z nosa - 

pobrany materiał 

natychmiast umieszcza 

się w buforze (płyn 

Eagle`a do hodowli 

tkankowej/gliceryna 

antybiotykiem). 

Transport w 
+5°C(±3°C). 

 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Przewóz  próbki  z  podejrzeniem  pryszczycy  i/lub  choroby  pęcherzykowej 

świń  nie  może  być  zlecany  przedsiębiorstwom  spedycyjnym,  świadczącym 

usługi transportowe.  

Próbki musi dostarczyć kurier najszybszym możliwym środkiem 

transportu, niezwłocznie po pobraniu, najpóźniej przed upływem 24 

godzin od pobrania. 

Nabłonek – do laboratorium należy dostarczyć natychmiast (w czasie kilku 

godzin) w tym czasie może być przewożony bez buforu. 

Jednakże, jeżeli istnieje obawa, że czas transportu może wydłużyć się, 
nabłonek należy umieścić w małej ilości buforu 2-5ml, składającego się z 

równych części 0,04 M buforu fosforanowego i gliceryny (PBS/gliceryna) lub 

innego równoważnego buforu (ważne pH 7,2 -7,6). Transport w +5°C(±3

 

°C). 

Ponadto, dla ochrony przed rozwojem mikroorganizmów do buforu dodaje 

się jeden z niżej wymienionych antybiotyków w stężeniu: 

(i) penicylina 1 000 IU 

(ii) siarczan neomycyny 100 IU 

(iii) siarczan polimyksyny B 50 IU 

(iv) mykostatyna 100 IU 

Wymazy z nosa - do laboratorium należy dostarczyć natychmiast (w czasie 

kilku  godzin).  Jednakże,  jeżeli  zachodzi  obawa,  że  transport  może  trwać 

powyżej kilku godzin, próbkę należy zamrozić w suchym lodzie lub ciekłym 
azocie. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

 

Zakład PIWet-PIB w 

Zduńskiej Woli 

Zakład PIWet-PIB w 

Zduńskiej Woli 

PRAWODAWSTWO  UE 

·  Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie 

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz 

wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

29

·  Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 

82/894/EWG w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we 

wspólnocie poprzez włączenie niektórych chorób do wykazu chorób 

wymagających zgłaszania oraz skreśleniu z tego wykazu 

enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia u świń 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

30

ZWIERZĘTA ŚWINIOWATE 

 

KIERUNEK BADANIA 

CHOROBA PĘCHERZYKOWA ŚWIŃ  CZĘŚĆ II 

Swine vesicular disease - SVD 

METODA / TEST 

SN 

ELISA – rozpoznanie serologiczne. 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Krew pełna zwierząt podatnych lub surowica pozyskana z krwi zwierząt 

podatnych. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Liczba próbek powinna być adekwatna do częstotliwości występowania 

poszukiwanego czynnika w populacji.  
W celu kontroli występowania SVD corocznie bada się, na obszarze 

powiatu, próbki krwi pobrane od 10 sztuk świń. 

Jeżeli choroba występuje w formie klinicznej pobrać próbkę od 2-4 

zwierząt. 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

·  jednorazowa igła 

·  sterylna probówka bez dodatku środka konserwującego 
lub 

·  tubostrzykawka 
Zalecany sposób pakowania materiałów biologicznych z podejrzeniem 

pryszczycy i/lub choroby pęcherzykowej świń oraz sprzęt niezbędny do 

zapakowania są opisane w Załączniku 3. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Do badań należy pobrać próbki krwi pełnej od świń chorych lub 

ozdrowieńców, które miały styczność ze zwierzętami zakażonymi lub 

podejrzanymi o zakażenie wirusem SVD. Z igły krew powinna wolno 

spływać do probówki po ścianie wewnętrznej do 2/3 pojemności, nie 

dopuścić do hemolizy krwinek. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Po pobraniu pełną krew należy stopniowo schłodzić, ale nie zamrażać i 

transportować schłodzoną +5°C (±3

 

°C). 

Surowicę schłodzić lub zamrozić. Transportować schłodzoną +5°C(±3°C) lub 

zamrożoną. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Przewóz próbki z podejrzeniem pryszczycy i/lub choroby pęcherzykowej 

świń nie może być zlecany przedsiębiorstwom spedycyjnym, świadczącym 

usługi transportowe.  

Próbki musi dostarczyć kurier najszybszym możliwym środkiem 

transportu, niezwłocznie po pobraniu, najpóźniej przed upływem 24 

godzin od pobrania. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 
METODY 

 

Zakład PIWet-PIB w Zduńskiej Woli 

PRAWODAWSTWO  UE 

·  Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie 

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz 

wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną 

·  Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 

82/894/EWG w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we 

wspólnocie poprzez włączenie niektórych chorób do wykazu chorób 

wymagających zgłaszania oraz skreśleniu z tego wykazu 

enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia u świń 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

31

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 
prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt
 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 
zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt
 

 

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

32

ZWIERZĘTA ŚWINIOWATE 

 

KIERUNEK BADANIA 

KLASYCZNY POMÓR ŚWIŃ 

CZĘŚĆ I 

Classical swine fever - CSF, Hog cholera 

METODA / TEST 

Rozpoznanie wirusologiczne. 

Izolacja wirusa klasycznego pomoru 

świń w hodowli komórkowej. 

PCR 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Najwłaściwszym materiałem do badań laboratoryjnych są migdałki 

(pierwszy narząd, w którym dochodzi do namnażania się wirusa, 
i w którym utrzymuje się on najdłużej), węzły chłonne żuchwowe, śledziona 

i nerki. 

W  przewlekłych  i  nietypowych  przypadkach  choroby  wskazanym  jest 

przesłanie  do  badań  również  końcowego  odcinka  jelita  biodrowego  oraz 

mózgu. 

W  przypadku, gdy padła świnia uległa autolizie  do badań laboratoryjnych 

pobrać należy kość długą i/lub mostek. 

Do wczesnego wykrywania CSFV bardzo przydatne są próbki pełnej krwi. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

W celu kontroli występowania CSF corocznie bada się próbki w ilości 

zgodnej z rozporządzeniem Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 
grudnia 2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt. 

W czasie wystąpienia CSF, liczba pobieranych próbek powinna być zgodna 

z Decyzją Komisji 2002/106/WE  

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

W zależności od pobieranego materiału: 

·  igła, 

·  próbówka, 

·  sprzęt niezbędny do przeprowadzenia sekcji. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Narządy: materiał patologiczny przeznaczony do badań laboratoryjnych 

pobiera się od zwierząt wykazujących objawy choroby (gorączka) ubitych 

diagnostycznie lub świeżo padłych (do 4 godzin).  

Krew:  do  badań  należy  przesłać  około  5ml  krwi  pobranej,  do  probówek  z 

wersenianem potasu (K3EDTA) w proporcji 1,8mg EDTA/ 1ml. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 
PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Każda próbka tkanki powinna zostać umieszczona w oddzielnym 

plastikowym woreczku, odpowiednio zamknięta, włożona do drugiego 
woreczka i opisana. 

Próbki należy przechowywać i transportować w szczelnych, odpornych na 

zniszczenie pojemnikach.  

Próbki nie mogą być zamrażane. Należy je transportować w temperaturze 

lodówki.  

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Próbki należy poddać badaniu w ciągu 24 godzin od pobrania. 

Każdorazowo, przed wysyłką próbek, należy o tym powiadomić 

laboratorium rozpoznawcze. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

 

 

PRAWODAWSTWO UE 

· Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie 

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz 

wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną 

·  Decyzja Komisji nr 2002/106/WE zatwierdzająca Podręcznik 

Diagnostyczny ustalający procedury diagnostyczne, metody pobierania 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

33

próbek oraz kryteria do oceny testów laboratoryjnych służących do 

potwierdzenia klasycznego pomoru świń 

·  Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 

82/894/EWG w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we 

wspólnocie poprzez włączenie niektórych chorób do wykazu chorób 
wymagających zgłaszania oraz skreśleniu z tego wykazu 

enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia u świń 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt 

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji 

o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi 

zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób 

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także 

związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 18 grudnia 

2006 r. w sprawie zwalczania klasycznego pomoru świń 

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

34

ZWIERZĘTA ŚWINIOWATE 

 

KIERUNEK BADANIA 

KLASYCZNY POMÓR ŚWIŃ 

CZĘŚĆ II 

Classical swine fever - CSF, Hog cholera 

METODA / TEST 

Rozpoznanie serologiczne - służy jedynie jako pomoc w przypadkach 

podejrzenia klasycznego pomoru świń. Jeśli od świń podejrzanych o CSF 

albo z materiału pochodzącego z gospodarstw, które miały kontakt z 

przypadkami choroby nie wyizolowano wirusa lub nie wykryto jego 

antygenu względnie materiału genetycznego, to celowe jest 

przeprowadzenie badań serologicznych. 
NPLA 

ELISA 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Krew zwierząt podatnych. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

W celu kontroli występowania CSF corocznie bada się próbki w ilości 

zgodnej z rozporządzeniem Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 

grudnia 2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt. 

W czasie wystąpienia CSF, liczba pobieranych próbek powinna być zgodna 

z Decyzją Komisji 2002/106/WE  

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

·  Igła, 

·  próbówka. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Próbki krwi do badań powinny być pobrane od ozdrowieńców oraz od świń, 

które miały styczność z zakażonymi lub podejrzanymi o zakażenie wirusem 

CSF zwierzętami. Dla dokładnej oceny sytuacji zdrowotnej w stadzie oraz 

określenia dynamiki szerzenia się zakażenia wskazane byłoby pobranie 

próbek krwi od zwierząt z różnych grup technologicznych (w różnym 
wieku).  

Krew, w objętości do 5ml, należy pobrać z żyły czczej przedniej (vena cava 

cranialis) lub z żyły jarzmowej (vena jugularis) do odpowiednich probówek.  

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Probówki z pobraną krwią zostawia się w temperaturze pokojowej na okres 

2-3 godzin. Po tym czasie należy oddzielić skrzep od ściany probówki przy 

użyciu szklanej bagietki lub długiej, jałowej igły a następnie wstawić 

probówki do lodówki na okres 14-18 godzin (na noc). Po tym czasie 

uzyskaną surowicę należy przelać do małych, zamykanych szczelnym 

kapslem probówek typu Eppendorf o pojemności 1,5ml. Tak przygotowane 

próbki należy odpowiednio ponumerować (identyfikacja zwierząt!) 
i przesłać, w temperaturze lodówki, do laboratorium. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Jak najszybciej, nie później niż w ciągu 24 godzin. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 
METODY 

 

·  ZHW w Bydgoszczy 

·  ZHW w Gdańsku 

·  ZHW w Kielcach 

·  ZHW w Poznaniu 

·  PIWet-PIB w Puławach 

PRAWODAWSTWO  UE 

· Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie 

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz 

wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną 

·  Decyzja Komisji nr 2002/106/WE zatwierdzająca Podręcznik 

Diagnostyczny ustalający procedury diagnostyczne, metody pobierania 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

35

próbek oraz kryteria do oceny testów laboratoryjnych służących do 

potwierdzenia klasycznego pomoru świń 

·  Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 

82/894/EWG w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we 

wspólnocie poprzez włączenie niektórych chorób do wykazu chorób 
wymagających zgłaszania oraz skreśleniu z tego wykazu 

enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia u świń 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt 

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji 

o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi 

zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób 

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także 

związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 18 grudnia 

2006 r. w sprawie zwalczania klasycznego pomoru świń 

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

36

ZWIERZĘTA JEDNOKOPYTNE 

 

KIERUNEK BADANIA 

AFRYKAŃSKI POMÓR KONI 

African horse sickness 

METODA / TEST 

Badanie wirusologiczne. 

Badanie serologiczne. 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Zwierzęta żywe - pełna krew. 

Zwierzęta padłe - wycinki śledziony, 

płuc, węzłów chłonnych. 

Krew zwierząt podatnych. 

REPREZENTATYWNA 
LICZBA PRÓBEK 

Od każdego zwierzęcia podejrzanego o chorobę, od zwierząt padłych z 
podejrzeniem choroby. 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

W zależności od pobieranego materiału: 

- krew: sterylna igła i próbówka, 

- wycinki – czyste, jałowe narzędzia, najlepiej jednorazowego użytku. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Zwierzęta żywe - pełna krew (co 

najmniej 10ml) pobrana od zwierząt 

chorych w okresie gorączkowym na 

antykoagulant (EDTA, heparyna); 
Zwierzęta padłe - wycinki pobierać 

do 10% zbuforowanego roztworu 

glicerolu, pH 7,4. 

Od zwierząt, które przeżyły 

zakażenie wirusem AHS należy 

pobrać po około 20ml krwi. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Próbki należy przechowywać w 

temperaturze 4°C. Do laboratorium 

należy je dostarczyć jak najszybciej, 

najlepiej w termo torbach z 

wkładami chłodzącymi, które 

utrzymują temp. około 4°C podczas 

transportu próbek. 

 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Jak najszybciej. 

W przypadku pobierania próbek w związku z podejrzeniem choroby, próbki 

należy dostarczyć do Laboratorium Zakładu Wirusologii Państwowego 

Instytutu Weterynaryjnego - Państwowego Instytutu Badawczego (ul. 

Partyzantów 57, 24-100 Puławy). 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

 

 

PRAWODAWSTWO  UE  Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 82/894/EWG 

w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we wspólnocie poprzez 

włączenie niektórych chorób do wykazu chorób wymagających zgłaszania 

oraz skreśleniu z tego wykazu enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia 

u świń 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 18 maja 2004 

r. w sprawie szczegółowego sposobu i trybu zwalczania afrykańskiego 

pomoru koni 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

37

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

38

ZWIERZĘTA JEDNOKOPYTNE 

 

KIERUNEK BADANIA 

NIEDOKRWISTOŚĆ ZAKAŹNA KONI 

Equine infectious anaemia 

METODA / TEST 

AGID 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Krew zwierząt podatnych. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

W przypadku podejrzenia choroby od wszystkich podejrzanych zwierząt.  

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

·  sterylne probówki i igły lub  

·  tubostrzykawki. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Krew należy pobierać jałową igłą z żyły jarzmowej. Probówkę bez 

antykoagulantu po napełnieniu krwią do około 7ml należy zamknąć 

szczelnie korkiem i niezwłocznie oznakować. 

Zaleca się stosowanie zestawów jednorazowego użytku zawierających 

wkładkę ułatwiającą wydzielanie się surowicy i hermetycznie zamykanych. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Nie zamrażać. 

Surowica uzyskana z próbki krwi nie może mieć znamion hemolizy lub być 

zanieczyszczona florą bakteryjną. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

W ciągu 24 godzin. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

·  ZHW w Łodzi 

·  ZHW w Krośnie 

·  ZHW w Poznaniu 

·  ZHW w Szczecinie 

PRAWODAWSTWO  UE  Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 82/894/EWG 

w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we wspólnocie poprzez 

włączenie niektórych chorób do wykazu chorób wymagających zgłaszania 

oraz skreśleniu z tego wykazu enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia 

u świń 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 
informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

39

ZWIERZĘTA JEDNOKOPYTNE 

 

KIERUNEK BADANIA 

NOSACIZNA 

Glanders 

METODA / TEST 

OWD 

UWAGI SPECJALNE 

Ze względu na 

potencjalne ryzyko zakażenia osób

 zaangażowanych w 

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności. 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Krew zwierząt podatnych. 

REPREZENTATYWNA 
LICZBA PRÓBEK 

Od każdego zwierzęcia podejrzanego o chorobę. 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

·  sterylne probówki i igły lub  

·  tubostrzykawki. 

 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Krew należy pobierać jałową igłą z żyły jarzmowej. Probówkę bez 

antykoagulantu po napełnieniu krwią do około 7ml należy zamknąć 

szczelnie korkiem i niezwłocznie oznakować. 

Zaleca się stosowanie zestawów jednorazowego użytku zawierających 
wkładkę ułatwiającą wydzielanie się surowicy i zamykanych hermetycznie. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Surowica uzyskana z próbki krwi nie może mieć znamion hemolizy lub być 

zanieczyszczona florą bakteryjną. 

Można przesyłać też surowicę w ilości 2-3ml. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

W ciągu 24 godzin.  

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

·  ZHW w Krośnie 

·  ZHW w Gdańsku 

·  ZHW w Szczecinie 

·  PIWet-PIB w Puławach 

PRAWODAWSTWO  UE  Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 82/894/EWG 

w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we wspólnocie poprzez 

włączenie niektórych chorób do wykazu chorób wymagających zgłaszania 

oraz skreśleniu z tego wykazu enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia 
u świń
 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

40

ZWIERZĘTA JEDNOKOPYTNE 

 

KIERUNEK BADANIA 

WIRUSOWE ZAPALENIE TĘTNIC KONI 

Equine viral arteritis-EVA 

METODA / TEST 

SN 

Test izolacji. 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Krew zwierząt podatnych. 

 

W przypadku podejrzenia 

wystąpienia EVA: wymazy z worka 

spojówkowego i nosogardzieli lub 

próbki krwi. 

W przypadku śmierci lub poronienia 
źrebiąt: wycinki narządów 

wewnętrznych (płuca, śledzina, 

wątroba, łożysko) i  węzły chłonne 

krezkowe. 

W celu wykluczenia siewstwa 

wirusa z nasieniem do badania 

należy przesłać próbki nasienia 

pobrane od ogierów serologicznie 

dodatnich. 

REPREZENTATYWNA 
LICZBA PRÓBEK 

Od każdego zwierzęcia podejrzanego o chorobę. 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Sterylna próbówka i igły. 

·  wymazówki (przyżyciowo) 

·  sprzęt niezbędny do sekcji (w 

przypadku zwierząt padłych) 

 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Krew pobierać do sterylnych 

probówek z zachowaniem zasad 

aseptyki. 

 

Wymazy i próbki krwi – próbki krwi 

pobrać na antykoagulant z 

wyjątkiem heparyny. Próbki należy 

pobrać możliwie jak najwcześniej po 

wystąpieniu gorączki u zakażonych 

zwierząt. 

Nasienie - należy pobrać i przesłać 

do badania frakcję nasienia bogatą 

w plemniki. Zaleca się pobranie 
dwóch ejakulatów pobranych 

najlepiej w odstępie kilku godzin lub 

dni. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Nie zamrażać. 

Przesyłać w temperaturze lodówki 

po wcześniejszym uformowaniu 

skrzepu w temperaturze pokojowej.  

 

 

Wycinki - próbki należy schłodzić 

lub zamrozić i jak najszybciej wysłać 

do laboratorium. 

Nasienie należy schłodzić i w stanie 

schłodzonym przesłać jak 

najszybciej do laboratorium. Jeżeli 

nasienie nie może być natychmiast 
wysłane do laboratorium należy je 

zamrozić w -20°C i przesłać do 

laboratorium w stanie zamrożenia. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Jak najszybciej. 

 

Jak najszybciej. 

Jeżeli nasienie nie może być 

natychmiast wysłane do 

laboratorium należy je zamrozić 

w -20°C i przesłać do laboratorium 

w stanie zamrożenia. 

LABORATORIUM 

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

41

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 
AKREDYTACJĘ 

METODY 
PRAWODAWSTWO  UE   
PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

42

ZWIERZĘTA JEDNOKOPYTNE 

 

KIERUNEK BADANIA 

ZARAZA STADNICZA 

Dourine 

METODA / TEST 

OWD metodą probówkową (metodą 

makro). 

OWD metodą mikromiareczkową 

(mikrometodą, metodą płytkową). 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Krew zwierząt podatnych. 

REPREZENTATYWNA 
LICZBA PRÓBEK 

Od wszystkich zwierząt podejrzanych o chorobę . 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Sterylne igły, probówki. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

 Krew pobiera się z żyły jarzmowej w ilości około 7ml.  

WYMAGANIA 
ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Świeżo pobrane próbki krwi należy pozostawić na około 2 godziny w 
temperaturze pokojowej (od 18ºC do 25ºC), a następnie dostarczyć do 

laboratorium. W czasie transportu próbki krwi chronić przed 

przemarznięciem lub nadmiernym przegrzaniem, gdyż powoduje to 

hemolizę lub przerośnięcie próbek. 

Surowice wydzielone z próbek krwi silnie zhemolizowanych lub 

zanieczyszczonych florą bakteryjną nie nadają się do badań OWD. 

Silnie antykomplementarnie działają także wszystkie związki chemiczne, 

które wiążą jony Mg i Ca np. wersenian sodowy, stosowany jako 

antykoagulant przy pobieraniu krwi. 

DOKUMENTACJA 
TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 
POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

W dniu pobrania. 

W razie trudności dostarczenia próbek krwi do laboratorium w dniu ich 
pobrania, można, po uformowaniu się skrzepu w temperaturze pokojowej, 

do dnia następnego przechować je w chłodni (2-8°C). 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

·  ZHW w Krośnie 

·  ZHW w Białymstoku 

·  ZHW w Szczecinie 
 

·  ZHW w Krośnie 

·  ZHW w Białymstoku 

·  ZHW w Szczecinie 

·  PIWet-PIB w Puławach 

PRAWODAWSTWO  UE  Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 82/894/EWG 

w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we wspólnocie poprzez 

włączenie niektórych chorób do wykazu chorób wymagających zgłaszania 

oraz skreśleniu z tego wykazu enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia 

u świń 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 
 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

43

MAŁE PRZEŻUWACZE 

 

KIERUNEK BADANIA 

TRZĘSAWKA OWIEC 

Scrapie 

METODA / TEST 

ELISA 

UWAGI SPECJALNE 

Ze względu na 

potencjalne ryzyko zakażenia osób

 zaangażowanych w 

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności. 

Przedmiotem  badania jest wykrywanie patologicznej formy białka 

prionowego (PrP

Sc

) szybkimi testami w próbkach pnia mózgu. 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Rdzeń przedłużony  z regionem zasuwki. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Zgodnie z programem zwalczania. 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Łyżeczka (szpatułka). 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Do badania należy pobrać rdzeń przedłużony małych przeżuwaczy, z 

rejonem zasuwki. W przypadku podejrzenia postaci atypowej zaleca się 
pobieranie dodatkowo próbek móżdżku. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Nie zamrażać, przesyłać w temperaturze lodówki. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Jak najszybciej. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

·  ZHW w Krakowie 

·  ZHW w Gdańsku 

·  ZHW w Poznaniu Prac. w Lesznie 

·  PIWet-PIB 

PRAWODAWSTWO  UE 

· Rozporządzenie Parlamentu Europejskiego i Rady  nr 999/2001 z dnia 22 

maja 2001 r. ustanawiające zasady dotyczące zapobiegania, kontroli i 

zwalczania niektórych przenośnych gąbczastych encefalopatii 

· Rozporządzenie Komisji (WE) nr 21/2008 z dnia 11 stycznia 2008 r. 

zmieniające załącznik X do rozporządzenia (WE) nr 999/2001 

Parlamentu Europejskiego i Rady w odniesieniu do wykazów szybkich 

testów 

PRAWODAWSTWO 
POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji 
o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi 

zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób 

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także 

związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 30 maja 2007 r. w sprawie 

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła, 

gruźlicy bydła, brucelozy u bydła, wścieklizny, gąbczastej encefalolopatii 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

44

oraz programu zwalczania i kontroli zakażeń wirusami wysoce zjadliwej 

grypy ptaków dawny pomór drobiu u drobiu i ptaków dzikich 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 
zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt
 

 

 

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

45

PTAKI 

 

KIERUNEK BADANIA 

CHLAMYDIOZA PTAKÓW 

Avian chlamydiosis 

METODA / TEST 

OWD 

UWAGI SPECJALNE 

Ze względu na 

potencjalne ryzyko zakażenia osób

 zaangażowanych w 

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności. 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Krew zwierząt podatnych. 

REPREZENTATYWNA 
LICZBA PRÓBEK 

Liczba próbek powinna być adekwatna do częstotliwości występowania 
poszukiwanego czynnika w populacji.  

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

·  jałowa igła 

·  próbówka bez antykoagulantu 
Zaleca się stosowanie zestawów jednorazowego użytku, zawierających 

wkładkę ułatwiającą wydzielanie się surowicy i hermetycznie 

zamykanych. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Przed pobraniem krwi upoważniony lekarz weterynarii powinien 

sporządzić listę zwierząt zgodnie ze wzorem zawartym w Załączniku 2. 

Krew należy pobierać jałową igłą z żyły skrzydłowej. Do probówki bez 

antykolagulantu pobrać 1 do 2 ml krwi, zamknąć szczelnie korkiem i 

niezwłocznie oznakować.  

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 
PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Uzyskana z próbki krwi surowica nie może być zhemolizowana lub 

zanieczyszczona florą bakteryjną. Świeżo pobrane próbki krwi należy 
pozostawić na około 2 godziny w temperaturze pokojowej. 

W czasie transportu próbki krwi chronić przed przemarznięciem lub 

nadmiernym przegrzaniem, gdyż powoduje to hemolizę lub przerośnięcie 

próbek.  

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 
MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

W dniu pobrania próbki (zalecane). 

W razie trudności dostarczenia próbek krwi do laboratorium w dniu ich 

pobrania, można je do dnia następnego przechować w chłodni (2-8ºC), ale 
po kilku godzinach formowania się skrzepu w temperaturze pokojowej. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

 

PRAWODAWSTWO  UE   
PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 
obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

46

PTAKI 

 

KIERUNEK BADANIA 

GRYPA PTAKÓW 

Avian influenza 

METODA / TEST 

HA 

UWAGI SPECJALNE 

Ze względu na 

potencjalne ryzyko zakażenia osób

 zaangażowanych w 

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności.  

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Od ptaków padłych do badań pobiera się: tchawicę, płuca, mózg, śledzionę, 

serce, wątrobę, nerki oraz jelita z treścią lub kał.  

Przyżyciowo pobiera się od ptaków wymazy z tchawicy i szpary 

podniebiennej oraz wymazy z kloaki wraz z kałem. Wskazane jest również 
pobranie próbki z innych zmienionych narządów.  

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Próbki do izolacji wirusa AI powinny pochodzić od co najmniej 5 ptaków 

świeżo padłych i/lub chorych, poddanych humanitarnemu ubojowi. 

Wymazy z kloaki wraz z kałem należy pobrać od co najmniej 20 ptaków. 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

·  sterylne plastikowe pojemniki lub podwójne, wodoszczelne, szczelnie 

zamykane plastikowe woreczki 

·  waciki do pobierania wymazów z kloaki 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Ze stada podejrzanego o zakażenie należy pobrać wymazy z kloaki wraz z 

kałem (na waciku musi być wyraźnie widoczny kał).  

Próbki należy pobierać z zachowaniem zasad aseptyki, do sterylnych 

plastikowych pojemników lub podwójnych wodoszczelnych plastikowych 

woreczków, szczelnie zamykanych, oddzielnie lub jako próbki zbiorcze, z 

wyjątkiem kału i treści jelit, które puluje się oddzielnie.  

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Przechowywać i transportować w temperaturze 4°C. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Natychmiast po pobraniu. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 
POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

 

PRAWODAWSTWO  UE  Decyzja Komisji 2006/437/WE zatwierdzająca podręcznik diagnostyczny 

dotyczący grypy ptaków, przewidziany w dyrektywie Rady 2005/94/WE 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 
także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe
 

·  Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 30 maja 2007 r. w sprawie 

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła, 

gruźlicy bydła, brucelozy u bydła, wścieklizny, gąbczastej 

encefalolopatii oraz programu zwalczania i kontroli zakażeń wirusami 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

47

wysoce zjadliwej grypy ptaków dawny pomór drobiu w drobiu i ptaków 

dzikich 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 18 grudnia 

2007 r. w sprawie zwalczania grypy ptaków 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

48

PTAKI 

 

KIERUNEK BADANIA 

MYKOPLAZMY DROBIU 

Avian mycoplasmosis 

METODA / TEST 

·  Wykrycie zarazków Mycoplasma poprzez wykazanie wzrostu na 

podłożach PPLO charakterystycznych kolonii mykoplazm, a następnie 

ich identyfikacja na selektywnych dla mykoplazm podłożach, z 

zastosowaniem testów biochemicznych i/lub immunologicznych. 

·  Odczyn aglutynacji płytowej z użyciem antygenów (zinaktywowanych). 

·  ELISA. 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Od ptaków żywych należy pobrać próbki krwi i/lub wymaz z tchawicy, ze 

szczeliny podniebiennej, kloaki lub prącia. W stadach gdzie prowadzona 

jest inseminacja należy pobrać próbki spermy. W zakładzie wylęgowym do 

badań pobiera się zamarłe w czasie klucia zarodki (z nie uszkodzoną 

skorupą) 

Od ptaków padłych lub dobitych należy pobrać próbki z jamy nosowej, 

zatok, tchawicy, worków powietrznych, jajnika i z jajowodu, kloaki lub 
prącia. 

W środowisku kurnika pobrać wymazy z systemów wentylacyjnych, z 

poideł i karmideł. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Zawsze należy pobierać 60 próbek danego materiału. 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Sterylne igły, probówki, wymazówki i pęsety.  

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Próbki krwi pobrać od ptaków losowo schwytanych (z żyły skrzydłowej lub 

po skrwawieniu). 

W  laboratorium  do  badania  można  łączyć  (pulować)  po  10  próbek 

indywidualnych. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Przechowywać w temperaturze od 2 do 8°C. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Jak najszybciej. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 
AKREDYTACJĘ 

METODY 

·  ZHW w Krakowie 

  - odczyn aglutynacji płytowej z użyciem antygenów (zinaktywowanych) 

  - ELISA  

·  ZHW w Warszawie 
 

- odczyn aglutynacji płytowej z użyciem antygenów (zinaktywowanych) 

·  ZHW w Poznaniu 

  - odczyn aglutynacji płytowej z użyciem antygenów (zinaktywowanych) 

  - ELISA  

·  ZHW w Szczecinie 

  - odczyn aglutynacji płytowej z użyciem antygenów (zinaktywowanych) 

  - ELISA  

·  PIWet-PIB w Puławach 

  - odczyn aglutynacji płytowej z użyciem antygenów (zinaktywowanych) 

 

- ELISA  

PRAWODAWSTWO  UE  Dyrektywa Rady 90/539/EWG z 15 października 1990 roku  w sprawie 

warunków zdrowotnych zwierząt, regulujących handel 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

49

wewnątrzwspólnotowy i przywóz z państw trzecich drobiu i jaj wylęgowych 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji 

o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi 
zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób 

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także 

związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

50

PTAKI 

 

KIERUNEK BADANIA 

RZEKOMY POMÓR DROBIU 

Newcastle disease - ND 

METODA / TEST 

Izolacja wirusa i jego identyfikacja metodą HA. 

UWAGI SPECJALNE 

Ze względu na 

potencjalne ryzyko zakażenia osób

 zaangażowanych w 

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności.  

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Od ptaków padłych i/lub chorych poddanych humanitarnemu zabiciu do 

badań pobiera się: tchawicę, płuca, mózg, śledzionę, wątrobę, nerki oraz  

jelita z treścią lub kał.  

Przyżyciowo pobiera się od ptaków wymazy z tchawicy i szpary 
podniebiennej oraz wymazy z kloaki wraz z kałem. Wskazane jest również 

pobranie próbki z innych zmienionych narządów.  

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Próbki do izolacji wirusa ND powinny pochodzić od co najmniej 5 ptaków 

świeżo padłych i/lub chorych, poddanych humanitarnemu ubojowi. 

Wymazy z kloaki wraz z kałem należy pobrać od co najmniej 20 ptaków. 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

·  Sterylne plastikowe pojemniki lub podwójne, wodoszczelne, szczelnie 

zamykane plastikowe woreczki; 

·  Waciki do pobierania wymazów z kloaki. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Ze stada podejrzanego o zakażenie należy pobrać wymazy z kloaki wraz z 

kałem (na waciku musi być wyraźnie widoczny kał) i umieścić w podłożu 

transportowym (1-2ml PBS z dodatkiem antybiotyków: penicylina 10 tys. 

JM/ml, streptomycyna 10mg/ml, gentamycyna 0,25 mg/ml, mykostatyna 5 

tys. JM/ml ). 

Próbki należy pobierać z zachowaniem zasad aseptyki, do sterylnych 

plastikowych pojemników lub podwójnych wodoszczelnych plastikowych 

woreczków, szczelnie zamykanych, oddzielnie lub jako próbki zbiorcze, z 

wyjątkiem kału i treści jelit, które puluje się oddzielnie.  

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Transportować w temperaturze od 2 do 8°C. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

Załącznik 1 - Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 
MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

PIWet-PIB w Puławach 

PRAWODAWSTWO  UE  Dyrektywa Rady 92/66/EWG wprowadzająca wspólnotowe środki 

zwalczania rzekomego pomoru drobiu 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 29 lipca 2005 

r. w sprawie zwalczania rzekomego pomoru drobiu 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 
informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

51

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

52

PSZCZOŁY 

 

KIERUNEK BADANIA 

ZGNILEC AMERYKAŃSKI PSZCZÓŁ 

American foulbrood 

METODA / TEST 

Izolacja i identyfikacja bakterii Paenibacillus larvae z badanego materiału 

w drodze badań mikrobiologicznych (hodowlanych i mikroskopowych). 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

1.  Patologicznie zmieniony czerw

*

 - przy stwierdzeniu w rodzinach 

pszczelich obecności patologicznie zmienionego czerwiu; 

2.  Miód lub zapasy pokarmu - z rodzin podejrzanych o zakażenie, w 

których nie stwierdza się klinicznych objawów choroby. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Z kilku pni chorych lub podejrzanych o chorobę. 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Metalowa łyżka, duży skalpel albo nóż używany w pasiece lub duży nóż 

stołowy. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Patologicznie zmieniony czerw - z chorych rodzin, z plastra z czerwiem 

krytym  należy wyciąć fragment o wymiarach 10 x 10 cm (wg OIE około 20 
cm

2

). Pobrany wycinek powinien zawierać możliwie dużo komórek ze 

zmienionym chorobowo czerwiem, natomiast niepożądana jest w nim 

obecność miodu. 

Miód lub zapasy pokarmu - metalową łyżką wybrać próbki zapasów 

pokarmu z komórek plastrów z czerwiem. Próby można pobrać z 

pojedynczych rodzin lub można pobrać próby zbiorcze, wówczas 1 próba 

zbiorcza stanowi zapasy pokarmu z 6 rodzin. Wielkość 1 próby powinna 

wynosić około 50ml miodu (zapasu pokarmu).  

Próby miodu do badań można również pobrać z miodu już odwirowanego 

(przeznaczonego do sprzedaży). Jednak w takim przypadku, wykrycie w 

próbce obecności przetrwalników nie pozwala na dokładną identyfikację 
zakażonych rodzin. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Patologicznie zmieniony czerw - w przypadku wycinków plastrów, pobrane 

próby należy luźno opakować w papier i najlepiej umieścić w twardym, 

kartonowym lub drewnianym pudełku, zabezpieczającym przed 

zgnieceniem. Do pakowania prób nie należy używać materiałów 

utrudniających przepływ powietrza (torby plastikowe, folia aluminiowa, 

opakowania szklane lub metalowe), które sprzyjają rozwojowi pleśni i 

utrudniają wykonanie badań.  

Miód lub zapasy pokarmu - próby miodu powinny być umieszczone w 

czystych, szklanych opakowaniach, zabezpieczonych dodatkowo przed 
stłuczeniem.  

Oznakowanie próbek - na papierowym opakowaniu, w który zapakowano 

pobrane wycinki plastrów, umieszcza się numer ula. Każdą próbkę (miód i 

wycinki) zaopatruje się w etykietę zawierającą opis i numer 

identyfikacyjny, rodzaj próbki, datę i miejsce jej pobrania, imię i nazwisko 

oraz adres posiadacza pszczół.  

Temperatura - czynności przygotowawcze przeprowadza się w 

temperaturze pokojowej. Transport i przechowywanie prób w temp. poniżej 

0ºC. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych

 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Jak najszybciej, nie później niż przed upływem 24 godzin od pobrania. 

                                                

*

 

Czerw – w pszczelarstwie łączna nazwa stadiów rozwojowych pszczoły miodnej od jaja do poczwarki.

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

53

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 
POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

 

PRAWODAWSTWO  UE   
PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 14 września 

2005 r. w sprawie zwalczania zgnilca amerykańskiego pszczół 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

54

PSZCZOŁY 

 

KIERUNEK BADANIA 

ZGNILEC EUROPEJSKI 

European foulbrood 

METODA / TEST 

Izolacja i identyfikacja bakterii Melissococcus plutonius z badanego 

materiału w drodze badań mikrobiologicznych (hodowlanych i 

mikroskopowych). 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Patologicznie zmieniony czerw

*

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Z kilku pni chorych lub podejrzanych o chorobę. 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Metalowa łyżka, duży skalpel albo nóż używany w pasiece lub duży nóż 

stołowy. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Z chorych rodzin, z plastra z czerwiem krytym  należy wyciąć fragment o 

wymiarach 10 x 10 cm (wg OIE około 20 cm

2

). Pobrany wycinek powinien 

zawierać możliwie dużo komórek ze zmienionym chorobowo czerwiem, 
natomiast niepożądana jest w nim obecność miodu. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

W przypadku wycinków plastrów, pobrane próby należy luźno opakować w 

papier i najlepiej umieścić w twardym, kartonowym lub drewnianym 

pudełku, zabezpieczającym przed zgnieceniem. Do pakowania prób nie 

należy używać materiałów utrudniających przepływ powietrza (torby 

plastikowe, folia aluminiowa, opakowania szklane lub metalowe), które 

sprzyjają rozwojowi pleśni i utrudniają wykonanie badań.  

Czynności przygotowawcze przeprowadza się w temperaturze pokojowej. 

Transport i przechowywanie prób w temp. poniżej 0ºC. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Jak najszybciej, nie później niż w ciągu 24 godzin.  

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 
AKREDYTACJĘ 

METODY 

 

PRAWODAWSTWO  UE   
PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

· 

Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 
zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt
 

· 

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 
2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

· 

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 
2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

 

                                                

*

 

Czerw – w pszczelarstwie łączna nazwa stadiów rozwojowych pszczoły miodnej od jaja do poczwarki.

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

55

ZWIERZĘTA AKWAKULTURY 

 

KIERUNEK BADANIA 

BONAMIOZA 

Bonamia ostreae 

METODA / TEST 

Mikroskopowa identyfikacja Bonamia ostreae na podstawie cech 

morfologicznych barwionych preparatów odciskowych i histologicznych. 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Do laboratorium należy dostarczyć żywe ostrygi lub prawidłowo pobrane 

próbki, zabezpieczone w płynie utrwalającym (Załącznik 8 – Przygotowanie 

płynów utrwalających). Materiał do badań stanowią preparaty odciskowe 

oraz histologiczne przygotowane z ostryg. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Liczba ostryg stanowiących próbę zależy od wielkości produkcji danego 

obiektu, jednak nie mniej niż 30 sztuk.  

Zależność wielkości próby od liczebności produkcji i prawdopodobieństwa 

wykrycia patogenu, przy założonym rozpowszechnieniu patogenu w grupie 

i stuprocentowej czułości metody badawczej, obrazuje poniższa tabela 

autorstwa Ossiander i Wedemeyer, zawarta w podręczniku do diagnostyki 

chorób zwierząt wodnych OIE: 

Liczebność 

produkcji  

Przy 2% 

rozpowszechnieniu, 

wielkość próby  

Przy 5% 

rozpowszechnieniu, 

wielkość próby  

Przy 10% 

rozpowszechnieniu, 

wielkość próby  

50  

50  

35  

20  

100  

75  

45  

23  

250  

110  

50  

25  

500  

130  

55  

26  

1000  

140  

55  

27  

1500  

140  

55  

27  

2000  

145  

60  

27  

4000  

145  

60  

27  

10.000 

145  

60  

27  

100.000 

lub 

więcej  

150  

60  

30  

 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Skalpel, nożyce i nożyczki, kasetka do badań histologicznych lub probówka, 

płyn utrwalający.  

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Żywe ostrygi powinny być pobierane z obiektu/strefy hodowli w taki sposób, 

aby dana próba umożliwiła przegląd i ocenę stanu zdrowotnego całej 

populacji mięczaków, a więc wszystkich grup wiekowych.  

Próbki zabezpieczone w płynie utrwalającym - w czasie przeprowadzania 

sekcji skalpelem dokonuje się poprzecznego cięcia poprzez tkanki miękkie 
ostrygi tak, aby preparat zawierał przekrój przez jak najwięcej narządów. 

Próbkę umieszcza się w kasetce do badań histologicznych lub probówce i 

utrwala w płynie utrwalającym minimum 2 dni. Stosunek płynu do próbki 

powinien wynosić 1:10 (Załącznik 8 – Przygotowanie płynów 

utrwalających).  

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Ostrygi transportowane do laboratorium muszą być tak zabezpieczone, aby 

nie uległy uszkodzeniu ani nie wystąpiły śnięcia.  

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych

 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Transport żywych ostryg do laboratorium powinien odbyć się do 24 godzin 

od odłowu. 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

56

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 
POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

 

PRAWODAWSTWO  UE 

·  Dyrektywa  Rady  91/67/EWG  dotycząca  warunków  zdrowotnych 

zwierząt,  obowiązujących  przy  wprowadzaniu  na  rynek  zwierząt  i 

produktów akwakultury 

·  Dyrektywa  Rady  95/70/WE  wprowadzająca  minimalne  wspólnotowe 

środki zwalczania niektórych chorób małży 

·  Decyzja  Komisji  2002/878/WE  ustanawiająca  plany  pobierania  próbek 

oraz  metody  diagnostyczne  stosowane  w  celu  wykrywania  i 

potwierdzania występowania u mięczaków Bonamiosis (Bonami ostreae) 

i Marteiliosis (Marteilia refringens) 

·  Decyzja 

Komisji 

2008/650/WE 

zmieniająca 

Dyrektywę 

Rady 

82/894/EWG  w  sprawie  wykazu  zgłaszania  chorób  zwierząt  we 

wspólnocie  poprzez  włączenie  niektórych  chorób  do  wykazu  chorób 

wymagających 

zgłaszania 

oraz 

skreśleniu 

tego 

wykazu 

enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia u świń 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt 

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji 

o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi 
zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób 

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także 

związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 12 kwietnia 

2006 r. w sprawie zwalczania niektórych chorób zakaźnych mięczaków 

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

57

ZWIERZĘTA AKWAKULTURY 

 

KIERUNEK BADANIA 

MARTEILIOZA 

Marteilia refringens 

METODA / TEST 

Mikroskopowa identyfikacja Marteilia refringens na podstawie cech 

morfologicznych barwionych preparatów odciskowych i histologicznych. 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Do laboratorium należy dostarczyć żywe ostrygi lub prawidłowo pobrane 

próbki, zabezpieczone w płynie utrwalającym (Załącznik 8 – Przygotowanie 

płynów utrwalających). Materiał do badań stanowią preparaty odciskowe 

oraz histologiczne przygotowane z ostryg. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Liczba ostryg stanowiących próbę zależy od wielkości produkcji danego 

obiektu, jednak nie mniej niż 30 sztuk.  

Zależność wielkości próby od liczebności produkcji i prawdopodobieństwa 

wykrycia patogenu, przy założonym rozpowszechnieniu patogenu w grupie 

i stuprocentowej czułości metody badawczej, obrazuje poniższa tabela 

autorstwa Ossiander i Wedemeyer, zawarta w podręczniku do diagnostyki 

chorób zwierząt wodnych OIE: 

Liczebność 

produkcji  

Przy 2% 

rozpowszechnieniu, 

wielkość próby  

Przy 5% 

rozpowszechnieniu, 

wielkość próby  

Przy 10% 

rozpowszechnieniu, 

wielkość próby  

50  

50  

35  

20  

100  

75  

45  

23  

250  

110  

50  

25  

500  

130  

55  

26  

1000  

140  

55  

27  

1500  

140  

55  

27  

2000  

145  

60  

27  

4000  

145  

60  

27  

10.000 

145  

60  

27  

100.000 

lub 

więcej  

150  

60  

30  

 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Skalpel, nożyce, nóż, kasetka do badań histologicznych lub probówka, płyn 

utrwalający. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Żywe ostrygi powinny być pobierane z obiektu/strefy hodowli w taki sposób, 

aby dana próba umożliwiła przegląd i ocenę stanu zdrowotnego całej 

populacji mięczaków, a więc wszystkich grup wiekowych.  

Próbki zabezpieczone w płynie utrwalającym. W czasie przeprowadzania 

sekcji skalpelem dokonuje się poprzecznego cięcia poprzez tkanki miękkie 
ostrygi tak, aby preparat zawierał przekrój przez jak najwięcej narządów. 

Próbkę umieszcza się w kasetce do badań histologicznych lub probówce i 

utrwala w płynie utrwalającym minimum 2 dni. Stosunek płynu do próbki 

powinien wynosić 1:10 (Załącznik 8 – Przygotowanie płynów 

utrwalających). 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Ostrygi transportowane do laboratorium muszą być tak zabezpieczone, aby 

nie uległy uszkodzeniu ani nie wystąpiły śnięcia.  

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych

 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Transport żywych ostryg do laboratorium powinien odbyć się do 24 godzin 

od odłowu. 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

58

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 
POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

 

PRAWODAWSTWO  UE 

·  Dyrektywa  Rady  91/67/EWG  dotycząca  warunków  zdrowotnych 

zwierząt,  obowiązujących  przy  wprowadzaniu  na  rynek  zwierząt  i 

produktów akwakultury 

·  Dyrektywa  Rady  95/70/WE  wprowadzająca  minimalne  wspólnotowe 

środki zwalczania niektórych chorób małży 

·  Decyzja  Komisji  2002/878/WE  ustanawiająca  plany  pobierania  próbek 

oraz  metody  diagnostyczne  stosowane  w  celu  wykrywania  i 

potwierdzania występowania u mięczaków Bonamiosis (Bonami ostreae) 

i Marteiliosis (Marteilia refringens) 

·  Decyzja 

Komisji 

2008/650/WE 

zmieniająca 

Dyrektywę 

Rady 

82/894/EWG  w  sprawie  wykazu  zgłaszania  chorób  zwierząt  we 

wspólnocie  poprzez  włączenie  niektórych  chorób  do  wykazu  chorób 

wymagających 

zgłaszania 

oraz 

skreśleniu 

tego 

wykazu 

enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia u świń 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

· Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt 

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji 

o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi 
zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób 

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także 

związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 12 kwietnia 

2006 r. w sprawie zwalczania niektórych chorób zakaźnych mięczaków 

· Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

59

ZWIERZĘTA AKWAKULTURY 

 

KIERUNEK BADANIA 

WIOSENNA WIREMIA KARPI 

Spring viraemia of carp - SVC 

METODA / TEST 

Identyfikacja wirusa (ELISA) wyizolowanego uprzednio w hodowli 

komórkowej. 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Ryby (żywe lub martwe). 

REPREZENTATYWNA 
LICZBA PRÓBEK 

Ilość ryb 
1.  od 30 szt. do 150 szt. ryb dwukrotnie w ciągu roku - w przypadku próbek 

pobieranych do badań monitoringowych; 

2.  10 szt. ryb z objawami klinicznymi - w przypadku podejrzenia choroby; 

3.  150 szt. ryb dwukrotnie w ciągu roku - w przypadku próbek do badań w 

ramach realizacji programu zwalczania SVC. 

Zasada priorytetów przy doborze ryb w próbce:  

1.  ryby wykazujące objawy chorobowe oraz ryby o osłabionej kondycji, 

2.  ryby należące do najbardziej wrażliwych na infekcję wirusów, wg 

załączonego wykazu: 

a.  Karp (Cyprinus carpio) i koi karp 

b.  Amur (Ctenopharyngodon idella
c.  Tołpyga biała (Hypophthalmichthys molitrix

d.  Tołpyga pstra (Aristichthys nobilis

e.  Karaś srebrzysty (Carassius auratus

f.  Karaś pospolity (Carassius carassius

g.  Karaś „złota rybka” (Carassius auratus

h.  Lin (Tinca tinca

i.  Sum (Silurus glanis). 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 
DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Plombownica do zaplombowania próbki oraz: 
Żywe ryby  - pojemniki (kontenery) zapewniające bezpieczeństwo, 

odpowiednią przestrzeń i warunki, a w szczególności: wentylację, właściwą 

temperaturę, zaopatrzenie w wodę i tlen. 

Uśmiercone ryby: 

·  worek foliowy (2 szt.), 

·  papier posiadający właściwości absorpcyjne, 

·  lód lub wkłady chłodzące, 

·  pudełko styropianowe. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Do badań monitoringowych w kierunku SVC, próbki pobiera się, gdy 

temperatura wody w ciągu doby nie przekracza 15ºC. Próbki ryb do 

badania pobiera się dwa razy w ciągu roku w odstępie minimum 4 miesięcy 

(w miesiącach marzec-maj i wrzesień-grudzień). 

W przypadku podejrzenia wystąpienia klinicznej postaci SVC nie stosuje 

się ograniczeń termicznych, czy też czasowych. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Każda próbka ryb powinna być zaplombowana przez nadzorującego 

pobranie urzędowego lekarza (ewentualnie upoważnioną przez niego osobę) 

oraz zaopatrzona w pismo przewodnie. 

Żywe ryby transportuje się w pojemnikach (kontenerach) zapewniających 

bezpieczeństwo, odpowiednią przestrzeń i warunki, a w szczególności: 
wentylację, właściwą temperaturę, zaopatrzenie w wodę i tlen. 

Uśmiercone ryby umieszcza się w worku foliowym, zawija się w papier 

posiadający właściwości absorpcyjne, a następnie układa między 

warstwami lodu lub wkładów chłodzących. Całość umieszcza się w worku 

foliowym, a następnie w pudełku styropianowym. Temperatura wewnątrz 

opakowania na początku transportu powinna wynosić około 4°C, natomiast 

na końcu, tj. przy odbiorze w laboratorium, nie powinna przekraczać 10°C. 

Ryby nie mogą być zamrożone! 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

60

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 
POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Czas transportu próbek do laboratorium może wynosić maksymalnie: 

- w przypadku ryb żywych - 6 h. 
- w przypadku ryb uśmierconych - 12 h. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

·  ZHW w Bydgoszczy 

PRAWODAWSTWO  UE  Decyzja  Komisji  2001/183/WE  ustanawiająca  plany  pobierania  próbek  i 

metody diagnostyczne do celów wykrywania i potwierdzania występowania 

niektórych chorób ryb oraz uchylająca decyzję 92/532/EWG 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

· 

Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 
zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt
 

· 

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 
2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

· 

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 
2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

61

ZWIERZĘTA AKWAKULTURY 

 

KIERUNEK BADANIA 

WIRUSOWA POSOCZNICA KRWOTOCZNA 

Viral haemorrhagic septicaemia - VHS 

METODA / TEST 

Identyfikacja wirusa (ELISA) wyizolowanego uprzednio w hodowli 

komórkowej. 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Ryby (żywe lub martwe). 

REPREZENTATYWNA 
LICZBA PRÓBEK 

Ilość ryb 

1.  od 30 szt. do 150 szt. ryb dwukrotnie w ciągu roku - w przypadku 

próbek pobieranych do badań monitoringowych; 

2.  10 szt. ryb z objawami klinicznymi - w przypadku podejrzenia choroby; 

3.  150 szt. ryb dwukrotnie w ciągu roku  - w przypadku próbek do badań 

w ramach realizacji programu zwalczania VHS i IHN. 

Zasada priorytetów przy doborze ryb w próbce:  

1.  ryby wykazujące objawy chorobowe oraz ryby o osłabionej kondycji, 

2.  ryby należące do najbardziej wrażliwych na infekcję wirusów, wg 

załączonego wykazu: 

·  Pstrąg tęczowy (Oncorhynchus mykiss

·  Pstrąg źródlany (Salvelinus fontinalis

·  Pstrąg potokowy (Salmo trutta

·  Łosoś atlantycki (Salmo salar

·  Szczupak (Esox lucius

·  Lipień (Thymallus thymallus) 

·  Korygonidy (Corygonus sp.

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Plombownica do zaplombowania próbki oraz: 

Żywe ryby - pojemniki (kontenery) zapewniające bezpieczeństwo, 

odpowiednią przestrzeń i warunki, a w szczególności: wentylację, właściwą 

temperaturę, zaopatrzenie w wodę i tlen. 

Uśmiercone ryby: 

·  worek foliowy (2 szt.), 

·  papier posiadający właściwości absorpcyjne, 

·  lód lub wkłady chłodzące, 

·  pudełko styropianowe. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Do badań monitoringowych w kierunku VHS, próbki pobiera się, gdy 

temperatura wody w ciągu doby nie przekracza 15ºC. Próbki ryb do 

badania pobiera się dwa razy w ciągu roku w odstępie minimum 4 miesięcy 

(w miesiącach marzec-maj i wrzesień-grudzień). 

W przypadku podejrzenia wystąpienia klinicznej postaci VHS nie stosuje 

się ograniczeń termicznych, czy też czasowych. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 
I TRANSPORTEM 

Każda próbka ryb powinna być zaplombowana przez nadzorującego 

pobranie urzędowego lekarza (ewentualnie upoważnioną przez niego osobę) 

oraz zaopatrzona w pismo przewodnie. 
Żywe ryby transportuje się w pojemnikach (kontenerach) zapewniających 

bezpieczeństwo, odpowiednią przestrzeń i warunki, a w szczególności: 

wentylację, właściwą temperaturę, zaopatrzenie w wodę i tlen. 

Uśmiercone ryby umieszcza się w worku foliowym, zawija się w papier 

posiadający właściwości absorpcyjne, a następnie układa między 

warstwami lodu lub wkładów chłodzących. Całość umieszcza się w worku 

foliowym, a następnie w pudełku styropianowym. Temperatura wewnątrz 

opakowania na początku transportu powinna wynosić około 4°C, natomiast 

na końcu, tj. przy odbiorze w laboratorium, nie powinna przekraczać 10°C. 

Ryby nie mogą być zamrożone! 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych

 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

Czas transportu próbek do laboratorium może wynosić maksymalnie: 

- w przypadku ryb żywych - 6 godzin 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

62

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 
LABORATORIUM 

- w przypadku ryb uśmierconych - 12 godzin. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

·  ZHW w Bydgoszczy 

PRAWODAWSTWO  UE  Decyzja Komisji 2001/183/WE ustanawiająca plany pobierania próbek i 

metody diagnostyczne do celów wykrywania i potwierdzania występowania 

niektórych chorób ryb oraz uchylająca decyzję 92/532/EWG 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 
prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt
 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 29 marca 

2005 r. w sprawie zwalczania chorób zakaźnych ryb 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

63

ZWIERZĘTA AKWAKULTURY 

 

KIERUNEK BADANIA 

ZAKAŹNA ANEMIA ŁOSOSI 

Infectious salmon anaemia - ISA 

METODA / TEST 

Identyfikacja wirusa (IFAT) wyizolowanego uprzednio w hodowli 

komórkowej. 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Ryby (żywe lub martwe). 

REPREZENTATYWNA 
LICZBA PRÓBEK 

Ilość ryb 

1.  od 30 szt. do 150 szt. ryb dwukrotnie w ciągu roku - w przypadku 

próbek pobieranych do badań monitoringowych; 

2.  10 szt. ryb z objawami klinicznymi - w przypadku podejrzenia 

choroby. 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Plombownica do zaplombowania próbki oraz: 

Żywe ryby - pojemniki (kontenery) zapewniające bezpieczeństwo, 

odpowiednią przestrzeń i warunki, a w szczególności: wentylację, właściwą 

temperaturę, zaopatrzenie w wodę i tlen. 

Uśmiercone ryby: 

·  worek foliowy (2 szt.), 

·  papier posiadający właściwości absorpcyjne, 

·  lód lub wkłady chłodzące, 

·  pudełko styropianowe. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Do badań monitoringowych w kierunku IHN próbki pobiera się, gdy 

temperatura wody w ciągu doby nie przekracza 15ºC. Próbki ryb do 

badania pobiera się dwa razy w ciągu roku w odstępie minimum 4 miesięcy 

(w miesiącach marzec-maj i wrzesień-grudzień). 

W przypadku podejrzenia wystąpienia klinicznej postaci IHN nie stosuje 
się ograniczeń termicznych, czy też czasowych. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Każda próbka ryb powinna być zaplombowana przez nadzorującego 

pobranie urzędowego lekarza (ewentualnie upoważnioną przez niego osobę) 

oraz zaopatrzona w pismo przewodnie. 

Żywe ryby transportuje się w pojemnikach (kontenerach) zapewniających 

bezpieczeństwo, odpowiednią przestrzeń i warunki, a w szczególności: 

wentylację, właściwą temperaturę, zaopatrzenie w wodę i tlen. 

Uśmiercone ryby umieszcza się w worku foliowym, zawija się w papier 

posiadający właściwości absorpcyjne, a następnie układa między 

warstwami lodu lub wkładów chłodzących. Całość umieszcza się w worku 

foliowym, a następnie w pudełku styropianowym. Temperatura wewnątrz 
opakowania na początku transportu powinna wynosić około 4°C, natomiast 

na końcu, tj. przy odbiorze w laboratorium, nie powinna przekraczać 10°C. 

Ryby nie mogą być zamrożone! 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych

 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 
LABORATORIUM 

Czas transportu próbek do laboratorium może wynosić maksymalnie: 

- w przypadku ryb żywych - 6 godzin 

- w przypadku ryb uśmierconych - 12 godzin. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

 

PRAWODAWSTWO  UE 

·  Decyzja Komisji 2001/183/WE ustanawiająca plany pobierania próbek i 

metody diagnostyczne do celów wykrywania i potwierdzania 

występowania niektórych chorób ryb oraz uchylająca decyzję 

92/532/EWG 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

64

·  Decyzja Komisji 203/466/WE ustanawiająca kryteria podziału na strefy 

i urzędowego nadzoru w następstwie podejrzenia lub potwierdzenia 

występowania niedokrwistości zakaźnej łososia (ISA) 

PRAWODAWSTWO 
POLSKIE 

· 

Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 
zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt
 

· 

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 29 marca 
2005 r. w sprawie zwalczania chorób zakaźnych ryb 

· 

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 
2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 
obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

· 

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 
2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

65

ZWIERZĘTA AKWAKULTURY 

 

KIERUNEK BADANIA 

ZAKAŹNA MARTWICA UKŁADU KRWIOTWÓRCZEGO 

Infectious haematopoietic necrosis - IHN 

METODA / TEST 

Identyfikacja wirusa (RT-PCR) wyizolowanego uprzednio w hodowli 

komórkowej. 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Ryby (żywe lub martwe). 

REPREZENTATYWNA 
LICZBA PRÓBEK 

Ilość ryb 

1.  od 30 szt. do 150 szt. ryb dwukrotnie w ciągu roku - w przypadku 

próbek pobieranych do badań monitoringowych; 

2.  10 szt. ryb z objawami klinicznymi - w przypadku podejrzenia 

choroby; 

3.  150 szt. ryb dwukrotnie w ciągu roku  - w przypadku próbek do 

badań w ramach realizacji programu zwalczania VHS i IHN. 

Zasada priorytetów przy doborze ryb w próbce:  

1.  ryby wykazujące objawy chorobowe oraz ryby o osłabionej kondycji, 

2.  ryby należące do najbardziej wrażliwych na infekcję wirusów, wg 

załączonego wykazu: 

·  Pstrąg tęczowy (Oncorhynchus mykiss)  

·  Łosoś atlantycki (Salmo salar

·  Pstrąg potokowy (Salmo trutta

·  Pstrąg źródlany (Salvelinus fontinalis

·  Pstrąg arktyczny (Salvelinus alpinus

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Plombownica do zaplombowania próbki oraz: 

Żywe ryby - pojemniki (kontenery) zapewniające bezpieczeństwo, 

odpowiednią przestrzeń i warunki, a w szczególności: wentylację, właściwą 

temperaturę, zaopatrzenie w wodę i tlen. 

Uśmiercone ryby: 

·  worek foliowy (2 szt.), 

·  papier posiadający właściwości absorpcyjne, 

·  lód lub wkłady chłodzące, 

·  pudełko styropianowe. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Do badań monitoringowych w kierunku IHN próbki pobiera się, gdy 

temperatura wody w ciągu doby nie przekracza 15ºC. Próbki ryb do 

badania pobiera się dwa razy w ciągu roku w odstępie minimum 4 miesięcy 

(w miesiącach marzec-maj i wrzesień – grudzień). 

W przypadku podejrzenia wystąpienia klinicznej postaci IHN nie stosuje 

się ograniczeń termicznych, czy też czasowych. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Każda próbka ryb powinna być zaplombowana przez nadzorującego 

pobranie urzędowego lekarza (ewentualnie upoważnioną przez niego osobę) 

oraz zaopatrzona w pismo przewodnie. 

Żywe ryby transportuje się w pojemnikach (kontenerach) zapewniających 

bezpieczeństwo, odpowiednią przestrzeń i warunki, a w szczególności: 

wentylację, właściwą temperaturę, zaopatrzenie w wodę i tlen. 

Uśmiercone ryby umieszcza się w worku foliowym, zawija się w papier 

posiadający właściwości absorpcyjne, a następnie układa między 

warstwami lodu lub wkładów chłodzących. Całość umieszcza się w worku 

foliowym, a następnie w pudełku styropianowym. Temperatura wewnątrz 
opakowania na początku transportu powinna wynosić około 4°C, natomiast 

na końcu, tj. przy odbiorze w laboratorium, nie powinna przekraczać 10°C. 

Ryby nie mogą być zamrożone! 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych

 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

Czas transportu próbek do laboratorium może wynosić maksymalnie: 

- w przypadku ryb żywych - 6 godzin 

- w przypadku ryb uśmierconych - 12 godzin. 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

66

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 
LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

 

PRAWODAWSTWO  UE  Decyzja  Komisji  2001/183/WE  ustanawiająca  plany  pobierania  próbek  i 

metody diagnostyczne do celów wykrywania i potwierdzania występowania 

niektórych chorób ryb oraz uchylająca decyzję 92/532/EWG 

PRAWODAWSTWO 
POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 29 marca 

2005 r. w sprawie zwalczania chorób zakaźnych ryb 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 
informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

67

RÓŻNE GATUNKI ZWIERZĄT 

 

KIERUNEK BADANIA 

BRUCELOZA 

Brucellosis 

METODA / TEST 

OA 

OKAP 

OWD 

UWAGI SPECJALNE 

Ze względu na 

potencjalne ryzyko zakażenia osób

 zaangażowanych w 

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności. 

W obrębie rodzaju Brucella wyróżnia się 6 podstawowych gatunków 

mających wśród zwierząt swoich głównych żywicieli: B. abortus (bydło), B. 

melitensis (kozy, owce), B. suis (świnie), B. canis (psy), B. ovis (owce) i B. 

neotomae (szczur pustynny). 
Źródłem zakażenia dla ludzi mogą być chore na brucelozę zwierzęta oraz 

produkty pochodzące od tych zwierząt, a szczególnie mleko i jego 

przetwory. 

Największą zjadliwością dla człowieka odznaczają się B. melitensis i B. suis 

wywołujące zazwyczaj długo trwającą chorobę o ciężkim przebiegu. 

Człowiek wrażliwy jest też na zakażenie pałeczkami B. abortus i B. canis

Wyjątek stanowi B. suis biotyp 2, który uważany jest za niepatogenny lub 

mało patogenny dla człowieka. Nie stwierdzono dotychczas zachorowań u 

ludzi wywołanych przez B. ovis i B. neotomae

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Krew zwierząt podatnych, pobrana od każdego zwierzęcia.  

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Zgodnie z programem zwalczania. 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

·  jednorazowa igła 

·  sterylna probówka 
lub 

·   tubostrzykawka, 

·  antykoagulant - w sytuacji określonej poniżej 

·  mocny, sterylny, szklany lub plastikowy pojemnik, zamykany 

szczelnym przykryciem zabezpieczającym przed wyciekiem 

·  wodoodporna, samoprzylepna taśma 

·  środek do odkażania zewnętrznej części pojemnika oraz woda do jego 

przemycia 

·  ręczniki do osuszenia pojemnika 

PROCEDURA 
POBRANIA PRÓBKI 

Krew pobierana jest od zwierząt, z wyjątkiem samic: 

- ciężarnych, u których poród powinien nastąpić w terminie 2 tygodni; 

- u których poród nastąpił w terminie do 2 tygodni od dnia pobrania 

próbki. 

W przypadku samic, które poroniły, do badań serologicznych pobiera się, w 
terminie od 12 do 20 dni po poronieniu, krew

1

- z dodatkiem środka zapobiegającego krzepliwości (antykoagulanta), w 

przypadku badań na wykrycie bakterii we krwi (okres bakteremii); 

- bez dodatku środka zapobiegającego krzepliwości, w przypadku badań 

na wykrycie przeciwciał brucelozy. 

Probówkę napełnia się w taki sposób, aby krew spływała wolno po jej 

wewnętrznej ścianie, aż do napełnienia probówki w 2/3 jej pojemności. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Pobraną krew stopniowo schładza się. 

Niedopuszczalne jest zamrażanie pobranej krwi. 

Próbki krwi z antykoagulantem powinny zostać 

wymieszane. 

Każdą próbkę umieszcza się w mocnym, 

sterylnym, szklanym lub plastikowym 

pojemniku, zamykanym szczelnym przykryciem 

Surowice otrzymane z 

próbek krwi silnie 

zhemolizowanych lub 

zanieczyszczonych florą 

bakteryjną nie nadają 

się do badań w OWD.  

Świeżo pobrane próbki 

                                                

1

 

Pobranie krwi do badań bakteriologicznych między 12 a 20 dniem po poronieniu nie zwalnia z obowiązku 

wcześniejszego wysłania do laboratorium poronionego płodu w całości lub wycinków narządów wewnętrznych 

oraz wycinku łożyska.

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

68

zabezpieczającym przed wyciekiem. Przykrycie 

okleja się dookoła wodoodporną taśmą 
samoprzylepną. 

Powierzchnię zewnętrzną pojemnika, po jego 

zamknięciu, odkaża się, a następnie płucze się 

czystą wodą i osusza. 

Na pojemniku umieszcza się etykietę zawierającą 

opis zwierzęcia i jego numer identyfikacyjny, 

rodzaj próbki, datę i miejsce jej pobrania, imię i 

nazwisko oraz adres posiadacza zwierzęcia. 

Próbki zapakowane w wyżej opisany sposób, 

umieszcza się w mocnym kartonie lub 

drewnianym pudełku i transportuje do 

laboratorium w temperaturze 4°C. 

krwi należy pozostawić 

na około 2 godziny w 
temperaturze 

pokojowej, a następnie 

dostarczyć do 

laboratorium. W czasie 

transportu próbki krwi 

należy chronić przed 

przemarznięciem lub 

nadmiernym 

przegrzaniem, gdyż 

powoduje to hemolizę 

lub przerośnięcie florą 

bakteryjną próbek.  

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 5 – Arkusz wyników badań w kierunku brucelozy 

u bydła/kóz/owiec/świń 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Próbki przesyła się bezpośrednio do 

laboratorium, przed upływem 24 godzin od ich 

pobrania. 

O przewidywanym terminie dostarczenia 

przesyłki powiadamia się laboratorium. 

W dniu pobrania 

próbki.  

W razie trudności 

dostarczenia próbek 

krwi do laboratorium w 

dniu ich pobrania, 

można je po kilku 

godzinach formowania 

się skrzepu w 
temperaturze 

pokojowej, przechować 

do dnia następnego w 

chłodni (2-8

o

C). 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

·  ZHW w Bydgoszczy 

·  ZHW w Krośnie 

·  ZHW w ZHW w 

Białymstoku 

·  ZHW w ZHW w 

Białymstoku Oddz. 

w Łomży 

·  ZHW w Gdańsku 

·  ZHW w Poznaniu 

·  ZHW w Poznaniu 

Prac. w Koninie 

·  ZHW w Szczecinie 

·  PIWet-PIB w 

Puławach 

 

·  ZHW w Bydgoszczy 

·  ZHW w Bydgoszczy, 

OT we Włocławku 

·  ZHW w Łodzi 

·  ZHW w Krakowie 

·  ZHW w Warszawie 

TP w Siedlcach 

·  ZHW w Warszawie 

TP w Ostrołęce 

·  ZHW w Opolu 

·  ZHW w Krośnie 

·  ZHW w ZHW w 

Białymstoku 

·  ZHW w ZHW w 

Białymstoku Oddz. 

w Łomży 

·  ZHW w Gdańsku 

·  ZHW w Katowicach 

·  ZHW w Kielcach 

·  ZHW w Poznaniu 

Prac. w Lesznie 

·  ZHW w Poznaniu 

·  ZHW w Poznaniu 

Prac. w Koninie 

·  ZHW w Szczecinie 

·  PIWet-PIB w 

Puławach 

·  ZHW w Bydgoszczy 

·  ZHW w Krośnie 

·  ZHW w ZHW w 

Białymstoku 

·  ZHW w Gdańsku 

·  ZHW w Poznaniu 

·  ZHW w Poznaniu 

Prac. w Koninie 

·  ZHW w Szczecinie 

·  PIWet-PIB w 

Puławach 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

69

 

PRAWODAWSTWO  UE   
PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 20 kwietnia 

2005 r. w sprawie zwalczania brucelozy 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zakażeń zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 22 lutego 2006 

r. zmieniające rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju z dnia 17 

grudnia 2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zakażeń zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 27 czerwca 

2005 r. w sprawie szczegółowych wymagań weterynaryjnych niezbędnych 

do uzyskania i zachowania uznania stada lub gospodarstwa za urzędowo 

wolne lub wolne od chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji 

o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi 

zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób 

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także 

związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 30 maja 2007 r. w sprawie 

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła, 

gruźlicy bydła, brucelozy u bydła, wścieklizny, gąbczastej encefalolopatii 

oraz programu zwalczania i kontroli zakażeń wirusami wysoce zjadliwej 
grypy ptaków dawny pomór drobiu w drobiu i ptaków dzikich
 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

70

RÓŻNE GATUNKI ZWIERZĄT 

 

KIERUNEK BADANIA 

GORĄCZKA Q 

Q fever 

METODA / TEST 

OWD 

UWAGI SPECJALNE 

Ze względu na 

potencjalne ryzyko zakażenia osób

 zaangażowanych w 

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności. 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Krew zwierząt podatnych. 

REPREZENTATYWNA 
LICZBA PRÓBEK 

Od wszystkich zwierząt podejrzanych o chorobę.  

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

·  jednorazowa igła 

·  probówka bez antykoagulantu 

Zaleca się stosowanie zestawów jednorazowego użytku, zawierających 

wkładkę ułatwiającą wydzielanie się surowicy i hermetycznie 

zamykanych. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Przed pobraniem krwi upoważniony lekarz weterynarii powinien 

sporządzić listę zwierząt zgodną z Załącznikiem 2. 

Krew należy pobierać jałową igłą z żyły jarzmowej. Probówkę bez 

antykoagulantu po napełnieniu krwią do 2/3 objętości (ok. 7 ml) należy 

zamknąć szczelnie korkiem i niezwłocznie oznakować. Probówki z krwią 

należy oznaczyć liczbą bieżącą, pod którą badane zwierzę zostało wpisane 

na listę. Zaleca się stosowanie zestawów jednorazowego użytku, 

zawierających wkładkę ułatwiającą wydzielanie się surowicy i 
hermetycznie zamykanych. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Surowice wydzielone z próbek krwi silnie zhemolizowanych lub 

zanieczyszczonych florą bakteryjną nie nadają się do badań serologicznych. 

Silnie antykomplementarnie działają również wszystkie związki 

chemiczne, które wiążą jony Mg i Ca, np. wersenian sodowy. 

Świeżo pobrane próbki krwi należy odstawić na około 2 godziny w 

temperaturze pokojowej, a następnie (najlepiej tego samego dnia) 

dostarczyć do laboratorium.  

W czasie transportu próbki krwi chronić przed przemarznięciem lub 

nadmiernym przegrzaniem, gdyż powoduje to hemolizę lub przerośnięcie 
próbek.  

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

W dniu pobrania próbki. 

W razie trudności dostarczenia próbek krwi do laboratorium w dniu ich 

pobrania, można je do dnia następnego przechować w chłodni (2-8ºC), ale 

po kilku godzinach formowania się skrzepu w  temperaturze pokojowej. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 
METODY 

PIWet-PIB w Puławach 

PRAWODAWSTWO  UE   
PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

· 

Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 
zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

· 

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 
2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

· 

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

71

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

72

RÓŻNE GATUNKI ZWIERZĄT 

 

KIERUNEK BADANIA 

LISTERIOZA 

Listeriosis 

METODA / TEST 

Horyzontalna metoda wykrywania obecności i oznaczania liczby Listeria 

monocytogenes; metoda wykrywania obecności – zgodnie z opisem 

zawartym w PN-EN ISO 11290-1 oraz PN-EN ISO 11290-1:1999/A1. 

UWAGI SPECJALNE 

Ze względu na 

potencjalne ryzyko zakażenia osób

 zaangażowanych w 

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności. 

MATERIAŁ DO 
BADANIA 

W zależności od postaci klinicznej choroby do badań diagnostycznych 
pobiera się: 

-  krew 
-  chorobowo zmienione narządy wewnętrzne 
-  mózg 
-  rdzeń kręgowy 
-  płyn mózgowo-rdzeniowy 
-  poroniony płód 
-  mleko. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Od zwierząt chorych, podejrzanych o chorobę i padłych z podejrzeniem 

listeriozy. 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Próbki materiału pobiera się czystymi, jałowymi narzędziami, najlepiej 

jednorazowego użytku.  

Dodatkowo: 

·  mocny, sterylny, szklany lub plastikowy pojemnik, zamykany 

szczelnym przykryciem zabezpieczającym przed wyciekiem, 

·  wodoodporna, samoprzylepna taśma, 

·  środek do odkażania zewnętrznej części pojemnika oraz woda do jego 

przemycia, 

·  ręczniki do osuszenia pojemnika. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Każdą próbę umieszcza się w mocnym, sterylnym, szklanym lub 

plastikowym pojemniku, zamykanym szczelnym przykryciem 

zabezpieczającym przed wyciekiem zawartości. Przykrycie okleja się 

dookoła wodoodporną taśmą samoprzylepną. Powierzchnię zewnętrzną 

pojemnika po jego zamknięciu odkaża się, a następnie płucze się czystą 

wodą i osusza. Każdy pojemnik zaopatruje się w etykietę zawierającą opis 

zwierzęcia i jego numer identyfikacyjny, rodzaj próby, datę i miejsce jej 
pobrania, imię i nazwisko oraz adres posiadacza zwierzęcia. 

Próby zapakowane w sposób określony powyżej umieszcza się w 

kontenerze, mocnym kartonie lub drewnianym pudełku i transportuje do 

laboratorium w temperaturze 4-8°C (do czasu wysłanie próbki należy 

przechowywać w temperaturze 4°C. Dopuszcza się transport zamrożonych 

prób, bez rozmrażania ich w trakcie transportu. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Próbki przesyła się bezpośrednio do laboratorium, w możliwie najkrótszym 

terminie.  

O przewidywanym terminie dostarczenia przesyłki powiadamia się to 

laboratorium. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

·  ZHW w Krakowie 

PRAWODAWSTWO  UE  Dyrektywa  2003/99/WE  Parlamentu  Europejskiego  i  Rady  z  dnia  17 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

73

listopada  2003  r.  w  sprawie  monitorowania  chorób  odzwierzęcych  i 

odzwierzęcych  czynników  chorobotwórczych,  zmieniająca  decyzję  rady 
90/424/EWG i uchylająca dyrektywę Rady 92/117/EWG
 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa  z  dnia  11  marca  2004  r.  o  ochronie  zdrowia  zwierząt  oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005  r.  w  sprawie  zakresu,  sposobu  i  terminów  przekazywania 

informacji  o  występowaniu  chorób  zakaźnych  zwierząt  podlegających 

obowiązkowi  zwalczania  i  rejestracji  oraz  o  wynikach  monitorowania 

chorób  odzwierzęcych  i  odzwierzęcych  czynników  chorobotwórczych  a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciwdrobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008  r.  w  sprawie  sposobu  prowadzenia  dokumentacji  związanej  ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

74

RÓŻNE GATUNKI ZWIERZĄT 

 

KIERUNEK BADANIA 

PĘCHERZYKOWE ZAPALENIE JAMY USTNEJ 

Vesicular stomatitis 

METODA / TEST 

ELISA – rozpoznanie serologiczne; 

test w wersji liquid-phase blocking 

(LPBE). 

ELISA – rozpoznanie 

wirusologiczne. 

UWAGI SPECJALNE 

 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Krew zwierząt podatnych. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Liczba próbek powinna być adekwatna do częstotliwości występowania 

poszukiwanego czynnika w populacji, jeśli choroba występuje w formie 

klinicznej, pobrać próbki od 2-4 zwierząt.  

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

·  igła jednorazowa 

·  sterylna probówka (lub tubostrzykawka) bez dodatku środka 

konserwującego 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Do badań należy pobrać próbki krwi pełnej od zwierząt chorych lub 

ozdrowieńców, które miały styczność ze zwierzętami zakażonymi lub 
podejrzanymi o zakażenie wirusem VS. Z igły krew powinna wolno spływać 

do probówki po ścianie wewnętrznej do 2/3 pojemności. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Po pobraniu krew należy stopniowo schłodzić, ale nie zamrażać. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 
LABORATORIUM 

W ciągu 24 godzin. 

W przypadku pobierania próbek w związku z podejrzeniem choroby, próbki 

należy dostarczyć do Laboratorium Zakładu Wirusologii Państwowego 

Instytutu Weterynaryjnego - Państwowego Instytutu Badawczego (ul. 
Partyzantów 57, 24-100 Puławy). 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

 

PRAWODAWSTWO  UE  Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 82/894/EWG 

w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we wspólnocie poprzez 

włączenie niektórych chorób do wykazu chorób wymagających zgłaszania 
oraz skreśleniu z tego wykazu enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia 

u świń 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 24 czerwca 

2004 r. w sprawie sposobu i trybu zwalczania niektórych chorób 

zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi zwalczania 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

75

RÓŻNE GATUNKI ZWIERZĄT 

 

KIERUNEK BADANIA 

PRYSZCZYCA 

CZĘŚĆ I 

Foot and mouth disease - FMD 

METODA / TEST 

ELISA – rozpoznanie serologiczne; 

test w wersji liquid-phase blocking 

(LPBE). 

SN - rozpoznanie serologiczne. 

UWAGI SPECJALNE 

Ze względu na 

potencjalne ryzyko zakażenia osób

 zaangażowanych w 

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności. 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Krew zwierząt podatnych. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

W celu kontroli występowania pryszczycy corocznie bada się, na obszarze 

powiatu, próbki krwi pobrane od 10 sztuk bydła albo świń. 

Liczba próbek powinna być adekwatna do częstotliwości występowania 

poszukiwanego czynnika w populacji (nie mniej jak od 3 zwierząt chorych). 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

·  Igła jednorazowa, 

·  sterylna probówka (lub tubostrzykawka) bez dodatku środka 

konserwującego. 

Zalecany sposób pakowania materiałów biologicznych z podejrzeniem 

pryszczycy i/lub choroby pęcherzykowej świń oraz sprzęt niezbędny do 

zapakowania są opisane w Załączniku 3 Podręcznika. 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Do  badań  należy  pobrać  próbki  krwi  pełnej  od  zwierząt  chorych  lub 

ozdrowieńców,  które  miały  styczność  ze  zwierzętami  zakażonymi  lub 

podejrzanymi  o  zakażenie  wirusem  FMD.  Z  igły  krew  powinna  wolno 
spływać do probówki po ścianie wewnętrznej do 2/3 pojemności. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Po pobraniu krew należy stopniowo schłodzić, ale nie zamrażać. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Przewóz  próbki  z  podejrzeniem  pryszczycy  nie  może  być  zlecany 

przedsiębiorstwom spedycyjnym, świadczącym usługi transportowe.  

Próbki musi dostarczyć kurier najszybszym możliwym środkiem 

transportu, niezwłocznie po pobraniu, najpóźniej przed upływem 24 godzin 

od pobrania. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

Zakład PIWet-PIB w Zduńskiej Woli 

PRAWODAWSTWO  UE  Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 82/894/EWG 

w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we wspólnocie poprzez 

włączenie niektórych chorób do wykazu chorób wymagających zgłaszania 

oraz skreśleniu z tego wykazu enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia 
u świń
 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

76

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 10 lutego 

2006 r. w sprawie szczegółowego sposobu i trybu zwalczania pryszczycy 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

77

RÓŻNE GATUNKI ZWIERZĄT 

 

KIERUNEK BADANIA 

PRYSZCZYCA 

CZĘŚĆ II 

Foot and mouth disease - FMD 

METODA / TEST 

RT-PCR - rozpoznanie 

wirusologiczne. 

ELISA - rozpoznanie 

wirusologiczne. 

UWAGI SPECJALNE 

Ze względu na 

potencjalne ryzyko zakażenia osób

 zaangażowanych w 

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności. 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Do badania pobiera się: 

·  nabłonek (materiał najbardziej odpowiedni) 

·  płynna zawartość pęcherzy 

·  mleko 

·  krew 

Dodatkowo: 

·  płyn z jamy gardłowej (probang) 

·  wymaz z nosa i pyska 

·  nasienie 

 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Nie mniej jak od 3 zwierząt chorych.  

W celu kontroli występowania pryszczycy corocznie bada się, na obszarze 

powiatu, próbki krwi pobrane od 10 sztuk bydła albo świń. 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Zalecany sposób pakowania materiałów biologicznych z podejrzeniem 

pryszczycy i/lub choroby pęcherzykowej świń oraz sprzęt niezbędny do 

zapakowania są opisane w Załączniku 3. 

Próbki pobiera się czystymi, jałowymi narzędziami, do jałowych naczyń, 
najlepiej jednorazowych. 

·  zawartość pęcherza: strzykawka z igłą, 

·  krew: probówka z etykietą, w systemie próżniowym, 

·  mleko: naczynie z szeroką szyjką i z zakręcanym przykryciem. 
 

·  Śluz z cieśni gardłowo–

przełykowej (probang sample) od 

bydła, wymaz z nosa od świń: 
zgłębnik przełykowy, 

·  wymazy z nosa: jałowy wacik, 

Uwaga! Naczynie na próbkę ok. 

10 ml musi być przystosowane do 

ewentualnego zamrażania, 

szczelnie zamykane, aby gaz nie 

przedostał się do jego wnętrza, 

ponieważ spowoduje obniżenie 

pH i inaktywację wirusa (próbka 

taka jest nieprzydatna do 

badania). 

·  nasienie: jałowe naczynie. 

 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Nabłonek - próbkę ze ścian nieuszkodzonego lub świeżo rozerwanego 

pęcherza, nie mniej niż 1g (wielkość znaczka pocztowego 2 cm

2

). 

Zawartość pęcherzy - pobrać strzykawką z igłą, tyle ile tylko możliwe.  
Mleko - ok. 20ml od bydła w okresie laktacji. Próbkę mleka po kilku 

strzyknięciach do przedzdajacza pobiera się do naczyń z szeroką szyjką i z 

zakręcanym przykryciem. 

Krew - 5-10ml zarówno od zwierząt zdrowych, podejrzanych, chorych i 

rekonwalescentów oraz od których trudno pobrać inny materiał w ilości 

wystarczającej, szczególnie owiec, kóz i świń. 

Próbkę krwi pobrać jałowo. Podczas pobierania krew powinna powoli 

spływać po ściance probówki, do 2/3 objętości, nie dopuścić do hemolizy 

krwinek. 
Śluz z cieśni gardłowo–przełykowej 
(probang sample) od bydła, wymaz z 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

78

nosa od świń - pobrać co najmniej 2 

ml, od dorosłego bydła, cieląt,  owiec 
i kóz ,wyjątkowo od świń. 

Technika pobierania śluzu:  

a.  Zwierzę poskromić stosownie do 

gatunku i wielkości, otworzyć 

jamę gębową.  

b.  Zbiorniczek zgłębnika 

przełykowego (rozmiarze 

dostosowanym do gatunku i 

wielkości zwierzęcia) umieścić za 

korzeniem języka w kierunku 

przełyku.  

c.  Zgłębnik przesuwać w dół 

przełyku do momentu aż 

zbiorniczek będzie wyczuwalny 

palcami w grzbietowej części 

gardła przed wejściem do krtani.  

d.  Zgłębnik przesuwać do przodu i 

do tyłu w celu zeskrobania śluzu 

z komórkami z błony śluzowej 

gardła i przełyku, a następnie 

wycofać.  

Od świń żywych wymazy z nosa, 

jamy gębowej pobiera się jałowym 
wacikiem i natychmiast umieszcza 

w buforze (płyn Eagle`a do hodowli 

tkankowej /gliceryna) z 

antybiotykiem, jak w punkcie 

1).Transport +5ºC (±3ºC). 

Nasienie - pobiera się do jałowych 

naczyń szczelnie zamykanych. 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 
I TRANSPORTEM 

Wirus pryszczycy wrażliwy jest zarówno na wahania temperatury jak i pH. 

Optymalne warunki dla wirusa: wartość pH 7,2 – 7,6 i temp. stabilna +4ºC. 
Nabłonek – próbkę nabłonka schłodzić, nie zamrażać. Transport w +5º

(±3ºC). 

Zawartość pęcherza - warunki transportu  - pH 7.2 – 7.6, temperatura 

+5

0

C(±

 

3

 0

C). 

Mleko – do pobranej próbki  należy dodać bufor (płyn Eagle

`

a do hodowli 

tkankowej /gliceryna) i antybiotyk, schładza i  transportować w +5º

(±3ºC). 

Krew  –  po  pobraniu  krew  i  środek  zapobiegający  krzepnięciu  (EDTA    - 

kwas etylenodwu-aminoczterooctowym) łagodnie wymieszać, schłodzić. Nie 

zamrażać. Krew transportować schłodzoną +5ºC (±3ºC). 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

79

Śluz z cieśni gardłowo–przełykowej - 

śluz ze zbiorniczka - 2ml przelać do 
czystego naczynia szklanego, 

przezroczystego z szerokim 

otworem, upewnić się, że zawiera 

tkanki i materiał komórkowy, nie 

powinno w nim być widocznych 

zanieczyszczeń pokarmem. Dodać 

2ml buforu transportowego, 

łagodnie wstrząsnąć. Próbki 

zanieczyszczone treścią pokarmową 

odrzuca się (są nieodpowiednie do 

badania w hodowli komórek) i 

pobieranie powtarza się po 
przepłukaniu jamy gębowej 

zwierzęcia czystą wodą lub 

roztworem płynu fizjologicznego. 

Próbki zanieczyszczone krwią 

są nieprzydatne do badania.  

U owiec śluzu jest zwykle mało, 

ponadto jest gęsty i trudno przelać 

go ze zgłębnika, dlatego po pobraniu 

(ok.2 ml) śluz wypłukuje się 

buforem w objętości 2ml. 

Wymazy pobrane od świń 
natychmiast umieszcza się w 

buforze (płyn Eagle`a do hodowli 

tkankowej /gliceryna) z 

antybiotykiem. Transport +5º

(±3ºC). 

Nasienie - do próbki dodać bufor i 

antybiotyk. Transportować w +5º

(±3

 

ºC). 

 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

CZAS NA 
DOSTARCZENIE 

POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Przewóz  próbki  z  podejrzeniem  pryszczycy  nie  może  być  zlecany 
przedsiębiorstwom spedycyjnym, świadczącym usługi transportowe.  

Próbki musi dostarczyć kurier najszybszym możliwym środkiem 

transportu, niezwłocznie po pobraniu, najpóźniej przed upływem 24 godzin 

od pobrania. 

Nabłonek - do laboratorium dostarczyć natychmiast. W czasie do 10 godzin 

może być przewożona bez buforu. Jeśli czas transportu może być dłuższy, 

nabłonek należy umieścić w małej ilości buforu 2 – 5 ml, składającego się z 

równych części 0,04 M buforu fosforanowego i gliceryny (PBS/gliceryna, lub 

innego równoważnego buforu (ważne pH), transportować w +5ºC (±3ºC). 

Ponadto, dla ochrony próbki przed rozwojem mikroorganizmów do buforu 

należy dodać jeden z antybiotyków w stężeniu: penicylina 1 000 IU, 
siarczan neomycyny 100 IU, siarczan polimyksyny B 50 IU lub 

mykostatyna 100 IU. 
Śluz – w ciągu kilku godzin. Gdy 

zachodzi obawa, że transport może 

trwać powyżej kilku godzin, próbkę 

zamraża się w suchym lodzie lub 

ciekłym azocie. 

 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 
POSIADAJĄCE 

 

Zakład PIWet-PIB w Zduńskiej Woli 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

80

AKREDYTACJĘ 

METODY 
PRAWODAWSTWO  UE  Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 82/894/EWG 

w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we wspólnocie poprzez 

włączenie niektórych chorób do wykazu chorób wymagających zgłaszania 

oraz skreśleniu z tego wykazu enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia 

u świń 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 10 lutego 

2006 r. w sprawie szczegółowego sposobu i trybu zwalczania pryszczycy 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 
zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt
 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

81

RÓŻNE GATUNKI ZWIERZĄT 

 

KIERUNEK BADANIA 

WĄGLIK 

Anthrax 

METODA / TEST 

Badanie materiału na wąglik powinno obejmować:  

·  badanie 

mikroskopowe 

przesłanych 

rozmazów 

jak 

również 

sporządzonych w laboratorium barwionych według  metod stosowanych 

w celu uwidocznienia otoczek, 

·  posiew materiału na podłoża bakteriologiczne w celu izolacji i 

identyfikacji patogenu, 

·  próbę  biologiczną  na  myszkach  jeżeli  uzyskane  wyniki  innych  badań 

były ujemne, 

·  odczyn termoprecypitacyjny Ascoliego, 

·  testy alternatywne – metoda PCR. 

UWAGI SPECJALNE 

Ze względu na 

potencjalne ryzyko zakażenia osób

 zaangażowanych w 

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności. 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

Do badań laboratoryjnych pobiera się: 

a) od zwierząt żywych krew oraz preparaty mazane na szkiełkach 

podstawowych, 

b) małżowinę uszną w przypadku, gdy zwłoki wykazują rozkład gnilny 

oraz gdy nie przeprowadza się sekcji zwierzęcia, 

c) kość długą w przypadku daleko posuniętego rozkładu zwłok, 
d) wyjątkowo, od zwierząt poddanych ubojowi lub padłych pobiera się 

wycinki śledziony lub chorobowo zmienionego narządu, 

e) od świń podejrzanych o postać gardzielowo-językową wąglika (glosso-

anthrax) węzły chłonne okołogardzielowe oraz wycinki galaretowato 

obrzękłych tkanek, 

f) jeśli zachodzi konieczność badania skór - wycinki o rozmiarach 5x10 

cm, a gdy to nie jest możliwe ze względu na wartość skóry, skrawki z 

części nieprzedstawiających większych wartości. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

Zwierzęta chore, podejrzane o chorobę, padłe z rozpoznaniem lub 

podejrzeniem wąglika. 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

Próbki materiału pobiera się czystymi, jałowymi narzędziami, najlepiej 

jednorazowego użytku. 

Dodatkowo: 

·  mocny, sterylny, szklany lub plastikowy pojemnik, zamykany 

szczelnym przykryciem zabezpieczającym przed wyciekiem, 

·  wodoodporna, samoprzylepna taśma, 

·  środek do odkażania zewnętrznej części pojemnika oraz woda do jego 

przemycia, 

· 

ręczniki do osuszenia pojemnika.

 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 
I TRANSPORTEM 

Każdą próbę umieszcza się w mocnym, sterylnym, szklanym lub 

plastikowym pojemniku, zamykanym szczelnym przykryciem 

zabezpieczającym przed wyciekiem zawartości. Przykrycie okleja się 
dookoła wodoodporną taśmą samoprzylepną. Powierzchnię zewnętrzną 

pojemnika po jego zamknięciu odkaża się, a następnie płucze się czystą 

wodą i osusza. Każdy pojemnik zaopatruje się w etykietę zawierającą opis 

zwierzęcia i jego numer identyfikacyjny, rodzaj próby, datę i miejsce jej 

pobrania, imię i nazwisko oraz adres posiadacza zwierzęcia. 

Próby zapakowane w sposób określony powyżej umieszcza się w 

kontenerze, mocnym kartonie lub drewnianym pudełku i transportuje do 

laboratorium w temperaturze 4 - 8°C. Dopuszcza się transport 

zamrożonych prób, bez rozmrażania ich w trakcie transportu. 

DOKUMENTACJA 
TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

82

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 
POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Próbki przesyła się bezpośrednio do laboratorium, w możliwie najkrótszym 

terminie.  
O przewidywanym terminie dostarczenia przesyłki powiadamia się to 

laboratorium. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

 

PRAWODAWSTWO  UE 

·  Dyrektywa Rady 92/117/EWG dotycząca środków ochrony przed 

określonymi chorobami odzwierzęcymi i odzwierzęcymi czynnikami 

chorobotwórczymi u zwierząt i w produktach pochodzenia zwierzęcego, w 

celu zapobieżenia zakażeniom i zatruciom przenoszonym przez żywność 

·  Dyrektywa Rady 64/432/EWG z dnia 26 czerwca 1964 r. w sprawie 

problemów zdrowotnych zwierząt wpływających na handel wewnątrz 
wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną.
 

·  Dyrektywa Rady 90/426/WE z dnia 26 czerwca 1990 w sprawie 

warunków zdrowotnych zwierząt, regulujących przemieszczanie i 
przywóz zwierząt z rodziny koniowatych z państw trzecich

·  Dyrektywa Parlamentu Europejskiego i Rady 2003/99/WE z dnia 17 

listopada 2003 r. w sprawie monitorowania chorób odzwierzęcych i 

odzwierzęcych czynników chorobotwórczych, zmieniająca decyzję rady 

90/424/EWG i uchylająca dyrektywę Rady 92/117/EWG 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa  z  dnia  11  marca  2004r.  o  ochronie  zdrowia  zwierząt  oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 5 maja 2005 r. 

w sprawie zwalczania wąglika 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania informacji 

o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających obowiązkowi 

zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania chorób 

odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a także 

związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 

zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt 

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

83

RÓŻNE GATUNKI ZWIERZĄT 

 

KIERUNEK BADANIA 

WŚCIEKLIZNA 

Rabies 

METODA / TEST 

Test immunofluorescencji 

bezpośredniej. 

MIT 

UWAGI SPECJALNE 

Ze względu na 

potencjalne ryzyko zakażenia osób

 zaangażowanych w 

próbkobranie należy zachować szczególnie surowe środki ostrożności. 

MATERIAŁ DO 

BADANIA 

W zależności od wielkości zwierzęcia do badania przesyła się: 

·  całe zwłoki – w przypadku małych zwierząt( w tym nietoperzy); 

·  głowę – w przypadku domowych zwierząt mięsożernych (psy, koty) lub 

wolno żyjących zwierząt mięsożernych (lisy, jenoty, borsuki, kuny itp.); 

·  mózgowie – w przypadku dużych zwierząt; pobrane mózgowie musi 

zawierać kompletny pień mózgu oraz móżdżek i róg Ammona. 

REPREZENTATYWNA 

LICZBA PRÓBEK 

W przypadku podejrzenia wścieklizny: 

·  każde padłe zwierzę z podejrzeniem wścieklizny oraz 

·  każde podejrzane zwierzę, w przypadku jego kontaktu z 

człowiekiem. 

W celu kontroli występowania wścieklizny u lisów wolnożyjacych, materiał 

pobiera się od 8 lisów odstrzelonych na każdych 100 km

2

 obszaru, na 

którym lisy zostały objęte szczepieniem ochronnym przeciw wściekliźnie. 

SPRZĘT NIEZBĘDNY 

DO POBRANIA 

POJEDYNCZEJ 

PRÓBKI 

·  czyste, jałowe narzędzia, najlepiej jednorazowego użytku 

·  papier absorpcyjny nasączony 10% wodnym  roztworem formaliny 

·  plastikowy, mocny, szczelnie zamykany worek lub metalowy pojemnik 

hermetycznie zamykany 

·  duży szczelnie zamykany worek 

·  polistyrenowy pojemnik 

·  lód (ew. suchy lód) 

·  materiał absorbujący (np. lignina) 

·  samoprzylepna taśma 

· 

pudełko kartonowe wyściełane folią

 

PROCEDURA 

POBRANIA PRÓBKI 

Głowa - głowę zwierzęcia oddziela się od zwłok tak aby pozostały przy niej 

dwa pierwsze kręgi szyjne; 

Mózgowie - należy otworzyć czaszkę i pobrać mózg i przesłać do 

laboratorium. Pobrane mózgowie musi zawierać kompletny  pień mózgu, 

a także móżdżek i  róg Ammona (hippocampus). 

WYMAGANIA 

ZWIĄZANE Z 

PRZECHOWYWANIEM 

I TRANSPORTEM 

Zwłoki małych zwierząt lub głowy zwierząt dużych są zawijane w papier 

absorpcyjny nasączony 10% wodnym  roztworem formaliny, a następnie 

wkłada się je do plastikowego worka (mocnego, szczelnie 

zamkniętego).Jeżeli pobrany został tylko mózg (duże zwierzęta) należy 

włożyć go do plastikowego worka lub metalowego pojemnika hermetycznie 

zamykanego. Numer kolejny próbki powinien być napisany pisakiem 

wodoodpornym na worku lub pojemniku.  

Pierwsza paczka wkładana jest do dużego worka, który jest szczelnie 

zamykany i umieszczany wewnątrz polistyrenowego pojemnika wraz z 

workami z lodem i materiałem absorbującym (np. lignina). Przy 

transporcie na większe odległości można użyć suchego lodu do chłodzenia 
próbki. Pudełko polistyrenowe oklejane jest mocną taśmą samoprzylepną. 

Koperta zawierająca wszystkie potrzebne informacje o próbce jest 

dołączana do pudełka, które umieszczone jest wewnątrz pudełka 

kartonowego wyściełanego folią. Pudełko powinno posiadać wyraźne 

oznaczenia o materiale zakaźnym. 

DOKUMENTACJA 

TOWARZYSZĄCA 

·  Załącznik 1 – Pismo przewodnie do próbek przekazywanych do 

laboratoryjnych badań diagnostycznych 

W punkcie „Uwagi” należy wskazać, czy stwierdzono kontakt zakaźny 

z ludźmi/zwierzętami oraz opisać charakter powyższego kontaktu. 

·  Załącznik 2 – Protokół pobrania prób (ewentualnie) 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

84

CZAS NA 

DOSTARCZENIE 
POBRANEGO 

MATERIAŁU DO 

LABORATORIUM 

Materiał do badania wirusologicznego powinien nadejść do laboratorium w 

stanie świeżym. 

LABORATORIUM 

WETERYNARYJNE 

POSIADAJĄCE 

AKREDYTACJĘ 

METODY 

·  ZHW w Warszawie TP w 

Ostrołęce 

·  ZHW w Opolu 

·  ZHW w Krośnie 

·  ZHW w Katowicach 

·  ZHW w Poznaniu 

·  PIWet-PIB w Puławach 

·  ZHW w Krośnie 

PRAWODAWSTWO  UE  Decyzja Komisji 2008/650/WE zmieniająca Dyrektywę Rady 82/894/EWG 

w sprawie wykazu zgłaszania chorób zwierząt we wspólnocie poprzez 
włączenie niektórych chorób do wykazu chorób wymagających zgłaszania 

oraz skreśleniu z tego wykazu enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia 

u świń 

PRAWODAWSTWO 

POLSKIE 

·  Ustawa z dnia 11 marca 2004 r. o ochronie zdrowia zwierząt oraz 

zwalczaniu chorób zakaźnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 

2004 r. w sprawie określenia jednostek chorobowych, sposobu 

prowadzenia kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 7 stycznia 

2005 r. w sprawie zwalczania wścieklizny 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 

2005 r. w sprawie zakresu, sposobu i terminów przekazywania 

informacji o występowaniu chorób zakaźnych zwierząt podlegających 

obowiązkowi zwalczania i rejestracji oraz o wynikach monitorowania 

chorób odzwierzęcych i odzwierzęcych czynników chorobotwórczych a 

także związanej z nimi oporności na środki przeciw drobnoustrojowe 

·  Rozporządzenie Rady Ministrów z dnia 30 maja 2007 r. w sprawie 

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła, 

gruźlicy bydła, brucelozy u bydła, wścieklizny, gąbczastej 

encefalolopatii oraz programu zwalczania i kontroli zakażeń wirusami 

wysoce zjadliwej grypy ptaków dawny pomór drobiu w drobiu i ptaków 
dzikich
 

·  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 

2008 r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze 
zwalczaniem chorób zakaźnych zwierząt
 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

85

IV.  Dane adresowe laboratoriów weterynaryjnych 

 

 

WOJEWÓDZTWO 

NAZWA LABORATORIUM 

DANE ADRESOWE 

DOLNOŚLĄSKIE 

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

we Wrocławiu 

50-900 Wrocław, ul. Pułaskiego 52 

tel.: 0-71 341-70-67, 071 341-70-68 

fax: 0-71 717-45-37 

zhw.wroclaw@wroc.wiw.gov.pl 

www.wroc.wiw.gov.pl  

KUJAWSKO-

POMORSKIE 

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Bydgoszczy 

85-090 Bydgoszcz,ul. Powstańców Wielkp. 10 

tel.: 0-52 349-33-38, 322-83-44    

fax: 0-52 349-33-41 

bydgoszcz.zhw@wetgiw.gov.pl 

bydgoszcz.zhw@wp.pl 

www.bydgoszczwiw.neostrada.pl/zhw.htm 

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Bydgoszczy, Oddział 

Terenowy w Toruniu 

87-100 Toruń, ul. Antczaka 39/41 

tel.: 0-56 655-30-26 do 29     

fax: 0-56 659-85-06 

torun.zhw@wetgiw.gov.pl  

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Bydgoszczy, Oddział 

Terenowy we Włocławku 

87-800 Włocławek, ul. Planty 16/18 

tel.: 0-54 234-10-38 

wiwwloc@neostrada.pl  

LUBELSKIE 

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Lublinie 

20-336 Lublin, ul. Słowicza 2 

tel./fax: 0-81 744-36-91, 92 

lublin.zhw@wetgiw.gov.pl 

www.wiw.lublin.pl  

LUBUSKIE 

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Gorzowie Wlkp. 

66-400 Gorzów Wlkp., ul. Boh. Warszawy 4 

tel.: 0-95 720-42-63      

fax: 0-95 720-42-64 

gorzówwlkp.zhw@wet.zgora.pl  

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Gorzowie Wlkp. Pracownia 

Badań Serologicznych w 
Zielonej Górze  

65-358 Zielona Góra, ul. Olbrychta 1 

tel.: 0-68 453-73-61 
zielonagora.zhw@wet.zgora.pl  

ŁÓDZKIE 

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Łodzi 

93-569 Łódź,  ul. Proletariacka 2/6,  

tel.: 0-42 635-14-14      

fax: 0-42 636-86-24 
zhwlodz@wp.pl  

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Łodzi Oddział w Piotrkowie 
Trybunalskim 

97-300 Piotrków Trybunalski,  

ul. Rzemieślnicza 26 
tel.: 0-44 646-46-76 

zhwpiotrkowtryb@om.pl  

MAŁOPOLSKIE 

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Krakowie 

30-695 Kraków 69, ul. Brodowicza 13 b 

tel.: 0-12 411-81-22;  411-30-90 

fax: 0-12 411-82-18 

sekretariat@zhwkrakow.internetdsl.pl  

 
 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

86

 

WOJEWÓDZTWO 

NAZWA LABORATORIUM 

DANE ADRESOWE 

MAZOWIECKIE 

Zakład Higieny Weterynaryjnej 
w Warszawie 

02-156 Warszawa, ul. Lechicka 21 

tel.: 0-22 846-01-68;  846-30-51 do 55 

fax: 0-22 846-30-51 
zhw@op.pl  

zhw.wawa@wiw.siedlce.com  

www.zhw.wawa.eta.pl 

ZHW w Warszawie Terenowa 

Pracownia w Siedlcach  

08-110  Siedlce, ul. Kazimierzowska 29 

tel.: 0-25 631-10-85; 644-01-91 w. 24, 25 

zhw.siedlce@wiw.siedlce.com 

www.wiw.siedlce.com  

ZHW w Warszawie Terenowa 

Pracownia w Ostrołęce  

07-412 Ostrołęka, ul. Składowa 8a 

tel.: 0-29 769-01-00; 769-06-26 

zhw.ostroleka@wiw.siedlce.com  

OPOLSKIE 

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Opolu 

45 - 836 Opole, ul. Wrocławska 170 

tel./fax: 0-77 457-50-10  wew. 317 

zhw@wiw.opole.pl  

PODKARPACKIE 

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Krośnie 

38-400 Krosno, ul. Ściegiennego 6/A 

tel.: 0-13 432-59-23     

fax: 0-13 432-69-33 

krosno.zhw@wetgiw.gov.pl

  

ZHW w Krośnie Pracownia 

Mikrobiologii i Immunologii w 

Rzeszowie  

35-959 Rzeszów, ul. Warszawska 12 

tel.: 0-17 852-12-42  

ZHW w Krośnie  Pracownia 

Chorób Ryb i Chorób 

Zakaźnych Zwierząt w 

Przemyślu  

37-700 Przemyśl, ul. Lwowska 7 

tel.: 0-16 678-75-93 

PODLASKIE 

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Białymstoku  

15-959 Białystok, ul. Zwycięstwa 26 

tel./fax: 0-85  651-62-91 

zhw.bial@wiw.bianet.com.pl 

sekretariat.zhw@wiw.bianet.com.pl  

Zakład Higieny Weterynaryjnej 
w Białymstoku Oddział w 

Łomży  

18-400 Łomża, ul. Nowogrodzka  160 
tel.: 0-86  216-34-58 

fax: 0-86 216-26-05 

zhwlomza@op.pl  

POMORSKIE 

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Gdańsku 

80-316 Gdańsk, ul. Kaprów 10 

tel.: 0-58 552-12-68; 552-12-69 

fax: 0-58 552-25-63 

 zhwo@gdansk.wiw.gov.pl  

80-125 Gdańsk, ul. Kartuska 249 

tel.: 0-58 302-04-04; 322-38-75 

zhwgd@gdansk.wiw.gov.pl  

LOM Laboratorium Oceny 

Mleka  

82-200 Malbork, ul. Boczne 8 

tel.: 0-55 272-24-35 

lom@malbork. com  

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

87

WOJEWÓDZTWO 

NAZWA LABORATORIUM 

DANE ADRESOWE 

ŚLĄSKIE 

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Katowicach  

40-585 Katowice, ul. Brynowska 25a 

tel.: 0-32 609-16-39;  609-16-31 

tel./fax: 0-32 609-16-34 
zhw@katowice.wiw.gov.pl 

www.katowice.wiw.gov.pl  

ŚWIĘTOKRZYSKIE  Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Kielcach  

25-116  Kielce, ul. Ściegiennego 205 

tel.: 0-41 361-64-98 

fax: 0-41 361-67-54 

kielce.zhw@wetgiw.gov.pl 
zhw@wiw.kielce.pl 

www.wiw.kielce.pl/zhw  

WARMIŃSKO-

MAZURSKIE 

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Olsztynie 

10-702  Olsztyn, ul. Warszawska 109 

tel.: 0-89 524-05-07 

fax: 0-89 524-05-78 

zhw@olsztyn.wiw.gov.pl 
zhwkierownik@olsztyn.wiw.gov.pl 

www.olsztyn.wiw.gov.pl  

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Olsztynie Oddział w 

Ostródzie  

14-100  Ostróda, ul. Sienkiewicza 13 

tel./fax: 0-89 646-63-23 

ozhwostroda@olsztyn.wiw.gov.pl  

WIELKOPOLSKIE 

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Poznaniu 

60-166 Poznań, ul. Grunwaldzka 250 

tel.: 0-61 868-93-47      

fax: 0-61 868-47-00 

biuro.zhw@wiw.poznan.pl 

www.wiw.poznan.pl  

Pracownia ZHW w Kaliszu  

62-800 Kalisz, ul. Warszawska 63a 

tel.: 0-62 767-20-25      

fax: 0-62 767-66-23 

zhw.kalisz@wiw.poznan.pl  

Pracownia Badań 
Serologicznych ZHW w Koninie 

Kierownik  

62-500 Konin, ul. Kościuszki 37b 
tel./fax: 0-63 242-84-94 

zhw.konin@wiw.poznan.pl  

Pracownia ZHW w Lesznie 

64-100 Leszno, ul. Święciechowska 150 

tel./fax: 0-65 520-64-98 

zhw.leszno@wiw.horyzont.net 

Międzywojewódzka Pracownia 

Diagnostyki TSE w Lesznie  

64-100 Leszno, ul. Święciechowska  150 

tel.: 0-65 529-58-01      

fax: 0-65  529-27-05 

bse.leszno@wiw.poznan.pl  

ZACHODNIO-

POMORSKIE 

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Szczecinie 

71-337 Szczecin, ul. Ostrawicka 2 

tel.: 0-91 489-82-25   

fax: 0-91 489-82-45 

zhwsekretariat@wiw.szczecin.pl  

Zakład Higieny Weterynaryjnej 

w Szczecinie Oddział ZHW w 
Koszalinie 

75-816 Koszalin, ul. Połczyńska 70 

tel.: 0-94 343-90-48 

fax: 0-94 342-62-84 
sekretariat@zhwkoszalin.pl 

www.zhwkoszalin.pl  

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

88

WOJEWÓDZTWO 

NAZWA LABORATORIUM 

DANE ADRESOWE 

LUBELSKIE 

Państwowy Instytut 

Weterynaryjny - Państwowy 
Instytut Badawczy w Puławach 

24-100 Puławy, Aleja Partyzantów 57 

tel.: 0-81 889 30 00 

fax: 0-81 886 25 95 
sekretariat@piwet.pulawy.pl  

www.piwet.pulawy.pl  

ŁÓDZKIE 

Zakład Pryszczycy 

Państwowego Instytutu 
Weterynaryjnego - 

Państwowego Instytutu 

Badawczego w Zduńskiej Woli 

98-220 Zduńska Wola, ul. Wodna 7 
tel.: 0-43 823 51 34 

fax : 0-43 823 52 75 

KUJAWSKO-

POMORSKIE 

Oddział Państwowego Instytutu 

Weterynaryjnego - 

Państwowego Instytutu 

Badawczego w Bydgoszczy, 

Zakład Fizjopatologii Rozrodu i 

Gruczołu Mlekowego 

85-090 Bydgoszcz, ul. Powstańcowi Wlkp. 10 

tel. 0-52-349-31-40 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

89

V. 

Aktualizacja i zgłaszanie uwag do Podręcznika

 

 

 
Aktualizacja Podręcznika 

 

Zaktualizowane  części  niniejszego  Podręcznika,  jak  również  dodatkowe  fragmenty 

rozszerzające jego treść, są dostępne na stronie internetowej Głównego Inspektoratu 

Weterynarii (www.wetgiw.gov.pl).  

 

 

Uwagi do Podręcznika 

 
Uwagi do Podręcznika można zgłaszać na adres: 

podrecznik@wetgiw.gov.pl

.   

 

 

 

 

 

 

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

90

VI.  Bibliografia 

 

 

Niniejszy Podręcznik został opracowany w oparciu o następujące dokumenty i 

akty prawne: 

 

1. 

Zbiór Metod Diagnostycznych 2007 

2. 

Ustawa  z  dnia  11  marca  2004  r.  o  ochronie  zdrowia  zwierząt  oraz 

zwalczania chorób zakaźnych zwierząt (Dz. U. Nr 69 p oz. 625 z późn. zm.) 

3. 

Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals 2008 

4. 

Manual of Diagnostic Tests for Aquatic animals 2006 

 

Rozporządzenia: 

 

5. 

Rozporządzenie Parlamentu Europejskiego i Rady (WE) nr 999/2001  z dnia 

22  maja  2001  r.  ustanawiające  zasady  dotyczące  zapobiegania,  kontroli  i 

zwalczania niektórych przenośnych gąbczastych encefalopatii 

6. 

Rozporządzenie  Komisji  (WE)  nr  1226/2002  z  dnia  8  lipca  2002  r. 

zmieniające załącznik B do dyrektywy Rady 64/432/EWG  

7. 

Rozporządzenie  Komisji  (WE)  nr  21/2008  z  dnia  11  stycznia  2008  r. 

zmieniające załącznik X do rozporządzenia (WE) nr 999/2001  Parlamentu 
Europejskiego i Rady w odniesieniu do wykazów szybki ch testów
 

8. 

Rozporządzenie Ministra  Rolnictwa  i Rozwoju Wsi z dnia 18 maja 2004  r. 

w sprawie szczegółowego sposobu i trybu zwalczania afrykańskiego pomoru 

koni (Dz. U. Nr 131 poz. 1408) 

9. 

Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 23 czerwca  2004 

r.  w  sprawie  zwalczania  afrykańskiego  pomoru  świń  (Dz.  U.  Nr  158  poz. 

1658) 

10.  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 24 czerwca  2004 

r.  w  sprawie  sposobu  i  trybu  zwalczania  niektórych  chorób  zakaźnych 
zwierząt podlegających obowiązkowi zwalczania 
(Dz. U. Nr 158 poz. 1659) 

11.  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 23 listopada 2004 

r. w sprawie zwalczania gruźlicy bydła (Dz. U. Nr 258 poz. 2585) 

12.  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 17 grudnia 2004 

r.  w  sprawie  określenia  jednostek  chorobowych,  sposobu  prowadzenia 

kontroli oraz zakresu badań kontrolnych zwierząt (Dz. U. Nr 282, poz. 2813 

z późn. zm.) 

13.  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 7 stycznia 2005 r. 

w sprawie zwalczania wścieklizny (Dz. U. Nr 13, poz. 103) 

14.  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 29 marca 2005 r. 

w sprawie zwalczania chorób zakaźnych ryb (Dz. U. Nr 60, poz. 528) 

15.  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 20 kwietnia 2005 

r. w sprawie zwalczania brucelozy (Dz. U. Nr 79 poz. 690) 

16.  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 5 maja 2005 r. 

sprawie zwalczania wąglika (Dz. U. Nr 88, poz. 750) 

17.  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 27 czerwca  2005 

r.  w  sprawie  szczegółowych  wymagań  weterynaryjnych  niezbędnych  do 

uzyskania  i  zachowania  uznania  stada  lub  gospodarstwa  za  urzędowo 

wolne lub wolne od chorób zakaźnych zwierząt (Dz. U. Nr 126, poz. 1058) 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

91

18.  Rozporządzenie Ministra  Rolnictwa  i Rozwoju Wsi z dnia  29 lipca 2005  r.  

w sprawie zwalczania rzekomego pomoru drobiu (Dz. U. Nr 158, poz. 1330) 

19.  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 14 września 2005 

r.  w  sprawie  zwalczania  zgnilca  amerykańskiego  pszczół  (Dz.  U.  Nr  187, 

poz. 1574) 

20.  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 25 listopada 2005 

r.  w  sprawie  zakresu,  sposobu  i  terminów  przekazywania  informacji  o 

występowaniu  chorób  zakaźnych  zwierząt  podlegających  obowiązkowi 

zwalczania  i  rejestracji  oraz  o  wynikach  monitorowania  chorób 

odzwierzęcych  i  odzwierzęcych  czynników  chorobotwórczych  a  także 

związanej  z  nimi  oporności na  środki przeciw  drobnoustrojowe  (Dz.  U.  Nr 
242,  poz. 2045) 

21.  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 10 lutego 2006 r. 

w sprawie szczegółowego  sposobu  i trybu zwalczania pryszczycy (Dz.  U. Nr 

28, poz. 205) 

22.  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 12 kwietnia 2006 

r.  w  sprawie  zwalczania  niektórych  chorób  zakaźnych  mięczaków  (Dz.  U. 

Nr 73,  poz. 512) 

23.  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 18 grudnia 2006 

r. w  sprawie zwalczania klasycznego  pomoru świń (Dz.  U.  z 2007  r.  Nr  2, 
poz. 17) 

24.  Rozporządzenie  Rady  Ministrów  z  dnia  30  maja  2007  r.  w  sprawie 

wprowadzenia programu zwalczania enzootycznej białaczki bydła, gruźlicy 

bydła,  brucelozy  u  bydła,  wścieklizny,  gąbczastej  encefalolopatii  oraz 

programu  zwalczania  i  kontroli  zakażeń  wirusami  wysoce  zjadliwej  grypy 

ptaków dawny pomór drobiu w drobiu i ptaków dzikich (Dz. U. Nr 104 poz. 

714) 

25.  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 14 września 2007 

r. w sprawie zwalczania zarazy płucnej bydła (Dz. U. Nr 178 poz. 1261) 

26.  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 18 grudnia 2007 

r. w sprawie zwalczania grypy ptaków (Dz. U. Nr 239 poz. 1752) 

27.  Rozporządzenie  Rady  Ministrów  z  dnia  18  grudnia  2007  r.  w  sprawie 

wprowadzenia  programu  zwalczania  enzootycznej  białaczki  bydła  (Dz.  U. 

Nr 249 poz. 1852) 

28.  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 16 stycznia 2008 

r. w sprawie sposobu prowadzenia dokumentacji związanej ze zwalczaniem 

chorób zakaźnych zwierząt (Dz. U. Nr 17, poz. 107) 

29.  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa i Rozwoju Wsi z dnia 26 lutego 2008 r. 

w sprawie sposobu i trybu zwalczania choroby  pęcherzykowej świń (Dz.  U. 

Nr 40 ,poz. 237) 

30.  Rozporządzenie Ministra Rolnictwa  i Rozwoju Wsi z dnia 5 marca  2008  r. 

w sprawie zwalczania enzootycznej białaczki bydła (Dz. U. Nr 47 ,poz. 278) 

31.  Rozporządzenie  Rady  Ministrów  z  dnia  19  marca  2008  r.  w  sprawie 

wprowadzenia  programu  zwalczania  choroby  Aujeszkyego  u  świń  (Dz.  U. 

Nr 64 poz. 397) 

 

 

 

 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

92

Dyrektywy:  

 

32.  Dyrektywa  Rady 64/432/EWG  w sprawie problemów  zdrowotnych zwierząt 

wpływających na handel wewnątrz wspólnotowy bydłem i trzodą chlewną 

33.  Dyrektywa  Rady  90/426/WE  w  sprawie  warunków  zdrowotnych  zwierząt, 

regulujących  przemieszczanie  i  przywóz  zwierząt  z  rodziny  koniowatych  z 

państw trzecich 

34.  Dyrektywa Rady 90/539/EWG  w sprawie warunków zdrowotnych zwierząt, 

regulujących  handel  wewnątrzwspólnotowy  i  przywóz  z  państw  trzecich 

drobiu i jaj wylęgowych 

35.  Dyrektywa  Rady  91/67/EWG  dotycząca  warunków  zdrowotnych  zwierząt, 

obowiązujących  przy  wprowadzaniu  na  rynek  zwierząt  i  produktów 

akwakultury 

36.  Dyrektywa  Rady  92/66/EWG  wprowadzająca  wspólnotowe  środki 

zwalczania rzekomego pomoru drobiu 

37.  Dyrektywa  Rady  92/117/EWG  dotycząca  środków  ochrony  przed 

określonymi  chorobami  odzwierzęcymi  i  odzwierzęcymi  czynnikami 

chorobotwórczymi  u  zwierząt  i  w  produktach  pochodzenia  zwierzęcego,  w 

celu zapobieżenia zakażeniom i zatruciom przenoszonym przez żywność

 

38.  Dyrektywa Rady 95/70/WE wprowadzająca minimalne wspólnotowe środki 

zwalczania niektórych chorób małży 

39.  Dyrektywa  Rady  98/46/EC  z  dnia  24  czerwca  1998  r.  nowelizująca 

załączniki A,D (Rozdział I) oraz F do Dyrektywy 64?432/EEC o p roblemach 

zdrowia zwierząt w handlu bydłem i trzodą chlewną wewnątrz Wspólnoty 

40.  Dyrektywa  Parlamentu  Europejskiego  i  Rady  2003/99/WE  z  dnia  17 

listopada  2003  r.  w  sprawie  monitorowania  chorób  odzwierzęcych  i 

odzwierzęcych  czynników  chorobotwórczych,  zmieniająca  decyzję  rady 

90/424/EWG  i uchylająca dyrektywę Rady 92/117/EWG  

 
Decyzje:  

 

41.  Decyzja  Komisji  2001/183/WE  ustanawiająca  plany  pobierania  próbek  i 

metody diagnostyczne do celów wykrywania i potwierdzania występowania 

niektórych chorób ryb oraz uchylająca decyzję 92/532/EWG  

42.  Decyzja  Komisji  2001/618WE  ograniczająca  możliwość  obrotu  i  handlu 

świniami  między  krajami lub  regionami  różnym  statusie  epizootycznym  w 

zakresie choroby Aujeszkyego 

43.  Decyzja  Komisji  2002/106/WE  zatwierdzająca  Podręcznik  Diagnostyczny 

ustalający  procedury  diagnostyczne,  metody  pobierania  próbek  oraz 

kryteria  do  oceny  testów  laboratoryjnych  służących  do  potwierdzenia 

klasycznego pomoru świń

 

44.  Decyzja Komisji 2002/878/WE ustanawiająca plany pobierania próbek oraz 

metody  diagnostyczne  stosowane  w  celu  wykrywania  i  potwierdzania 

występowania  u  mięczaków  Bonamiosis  (Bonami  ostreae)  i  Marteiliosis 

(Marteilia refringens) 

45.  Decyzja  Komisji  203/466/WE  ustanawiająca  kryteria  podziału  na  strefy  i 

urzędowego  nadzoru  w  następstwie  podejrzenia  lub  potwierdzenia 

występowania niedokrwistości zakaźnej łososia (ISA) 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

93

46.  Decyzja  Komisji  2006/437/WE  zatwierdzająca  podręcznik  diagnostyczny 

dotyczący grypy ptaków, przewidziany w dyrektywie Rady 2005/94/WE  

47.  Decyzja  Komisji  2008/185/WE  wprowadzająca  zakaz  handlu  świniami  dla 

krajów,  które  nie  są  wolne  od  choroby  Aujeszkyego  lub,  w  których  nie  jest 

realizowany program zwalczania tej choroby 

48.  Decyzja Komisji 2008/650WE  zmieniająca Dyrektywę Rady 82/894/EWG  w 

sprawie  wykazu  zgłaszania  chorób  zwierząt  we  wspólnocie  poprzez 

włączenie  niektórych  chorób  do  wykazu  chorób  wymagających  zgłaszania 

oraz skreśleniu z tego wykazu enterowirusowego zapalanie mózgu i rdzenia 

u świń 

 

 
 

background image

 

PODRĘCZNIK POBIERANIA PRÓBE K 
 

94

VII. Załączniki