background image

 

ZESZYTY PROBLEMOWE POSTĘPÓW NAUK ROLNICZYCH 2008 z. 530: 405-418

 

 
 
 
 
 
 

 

SKROBIA MODYFIKOWANA FIZYCZNIE  

 

JAKO POTENCJALNY PREBIOTYK

 

 
 
Joanna

 Le Thanh

, Aneta 

Burchardt

, Joanna 

Menclewicz

, Anna 

Sip

,  

GraŜyna 

Lewandowicz

 

 

Katedra Biotechnologii i Mikrobiologii śywności,  
Uniwersytet Przyrodniczy w Poznaniu

 

 
 
 
 

Wstęp

 

 

WaŜnym  czynnikiem  bezpośrednio  zaleŜnym  od  zachowań  konsumenta,  tj.  jego 

warunków ekonomicznych, upodobań i nawyków Ŝywieniowych, jest rodzaj stosowanej 
diety.  Jej  skład  decyduje  o  właściwościach  składników,  które  docierają  do  jelita 
grubego. Wiele produktów Ŝywnościowych zawiera składniki,  które nie  są trawione  w 
górnej części przewodu pokarmowego (na odcinku Ŝołądek - jelito cienkie). Przykładem 
takich  składników  jest  skrobia  oporna,  nieskrobiowe  polisacharydy  (błonnik 
pokarmowy) oraz oligosacharydy 

[F

OOKS

  i  in.  1999;  L

ESZCZYŃSKI

  2004]

. Składniki, które 

w  postaci  niestrawionej  docierają  do  jelita  grubego  mogą  być  metabolizowane  przez 
mikroflorę  jelitową  i  niejednokrotnie  stymulować  jej  rozwój.  Źródłem  składników 
wykorzystywanych przez bakterie jelitowe jest wiele produktów dietetycznych 

[G

IDLEY

 i 

in. 1995; L

EWANDOWICZ

,

 

S

ORAL

MIETANA

 2004].

 

Na  skład  mikroflory  jelitowej  moŜna  oddziaływać  nie  tylko  za  pośrednictwem 

diety  ale  równieŜ  poprzez  stosowanie  preparatów  probiotycznych  zawierających 
wyselekcjonowane  szczepy  bakterii  Lactobacillus  czy  Bifidobacterium.  Powszechnie 
wiadomo,  Ŝe  dodatek  drobnoustrojów  probiotycznych  do  diety  wywiera  korzystny 
wpływ  na  zdrowie,  przede  wszystkim  z  uwagi  na  ich  zdolność  do  antagonistycznego 
działania  na  drobnoustroje  chorobotwórcze  oraz  bakterie  gnilne.  Liczebność 
korzystnych  bakterii  w  produktach  spoŜywczych  podczas  ich  przechowywania,  a 
następnie  podczas  pasaŜu  jelitowego  obniŜa  się.  Z  tego  teŜ  względu  bakterie 
probiotyczne  często  nie  są  w  stanie  utrzymać  przewagi  populacyjnej  w przewodzie 
pokarmowym. W związku z tym w ostatnich latach uwaga naukowców koncentruje się 
na  identyfikacji,  a  takŜe  opracowywaniu  funkcjonalnych  składników  Ŝywności,  za 
pośrednictwem  których  moŜna  by  manipulować  składem  mikroflory  jelitowej  w  taki 
sposób  by  korzystnie  oddziaływała  ona  na  nasze  zdrowie.  Modyfikacja  składu 
mikroflory  jelitowej  jest  zatem  moŜliwa  zarówno  poprzez  doustne  podanie  Ŝywych 
drobnoustrojów w postaci preparatów probiotycznych lub Ŝywności probiotycznej oraz 
za  pośrednictwem  Ŝywności  zawierającej  nietrawione  w  przewodzie  pokarmowym 
składniki,  które  selektywnie  stymulują  wzrost  i/lub  aktywność  określonych  grup 
drobnoustrojów. 

Pierwotnie  błonnik  zawarty  w  ścianach  komórkowych  roślin  uwaŜany  był  za 

główne  źródło  materiału  opornego  na  hydrolizę  enzymatyczną  (trawienie),  jednakŜe 
niedawno  okazało  się,  Ŝe  równieŜ  oligosacharydy,  jak  i  „oporne”  frakcje  skrobi, 

background image

 

J. Le Thanh i inni 

 
 

406 

stanowią interesujące źródło węglowodanów wykorzystywanych przez mikroorganizmy 
w jelicie grubym

 [ASP 1996; L

ESZCZYŃSKI

 2004].

 Wśród tego typu produktów szczególne 

miejsce  zajmują  substancje  o  działaniu  prebiotycznym,  takie  jak  polisacharydy 
nieskrobiowe,  a  takŜe  tzw.  „resistant  starch”  czyli  skrobia  oporna  na  enzymy 
amylolityczne. Substancje te nie są trawione przez enzymy amylolityczne w przewodzie 
pokarmowym  człowieka,  natomiast  stanowią  źródło  węglowodanów  dla  mikroflory 
jelitowej.  W  wyniku  zachodzących  tam  procesów  fermentacyjnych  tworzą  się 
krótkołańcuchowe kwasy tłuszczowe uczestniczące w formowaniu nabłonka jelitowego 
i  wykazujące  udowodnione  działanie  antykancerogenne 

[B

ROUNS

  i  in.  2002]

.  Prebiotyki 

stymulują zatem rozwój probiotyków. Prebiotyki w sposób pośredni wpływają więc na 
skład  mikroflory  jelitowej,  motorykę  jelit,  gospodarkę  mineralną,  syntezę  witamin  z 
grupy B oraz poziom cholesterolu i syntezy triglicerydów. Są pomocne  w profilaktyce 
nowotworów,  a takŜe  mogą  zmniejszać  ryzyko  powstawania  wielu  chorób 
cywilizacyjnych  takich  jak:  osteoporoza  (poprzez  poprawę  wchłaniania  wapnia), 
otyłość  (obniŜenie  indeksu  glikemicznego),  wrzodziejące  zapalenie  jelita  grubego, 
zaparcia,  czy  choroba  wieńcowa 

[G

IBSON

  2004].

  Pomimo  szeregu  dostępnych 

komercyjnie  preparatów  prebiotycznych  i  coraz  większej  ilości  informacji  na  temat 
mikroflory jelitowej,  wiedza dotycząca przemian jakim zarówno  w  warunkach in vitro 
jak  i  in  vivo  ulegają  prebiotyki  jest  nadal  niewielka.  Pierwszą  próbę  opracowania 
ilościowej,  a tym  samym  porównywalnej,  metody  oceny  przebiegu  fermentacji 
substancji  prebiotycznych  w  warunkach  in  vitro  opracowali  Palframan  i  wsp.,  którzy

 

wprowadzili pojęcie indeksu prebiotycznego PI 

[V

ULEVIC

 i in. 2004].

 Do wyznaczenia PI 

zaproponowali  równanie,  określające  zmiany  liczebności  populacji  kluczowych  grup 
bakterii bytujących w jelicie grubym (Bifidobacterium, Lactobacillus, Clostridium oraz 
Bacteroides

[V

ULEVIC

  i  in.  2004].

  Częściej  jednak  badania  nad  prebiotykami  dotyczą 

określenia  ich  wpływu  na  liczebność  wybranego  szczepu  bakterii  probiotycznych  np. 
Bifidobacterium
 

[S

ORAL

MIETANA

  i  in.  2005]

  lub  Lactobacillus 

[L

IBUDZISZ

  2006

].  W 

badaniach  tych  ocenia  się  takŜe  ilość  powstających  krótkołańcuchowych  kwasów 
tłuszczowych oraz tempo asymilacji substratu i na ich podstawie określa się tzw. efekt 
prebiotyczny 

[S

ORAL

MIETANA

 i in. 2005; L

IBUDZISZ

 2006].

 

Ze  względu  na  właściwości  fizykochemiczne  skrobi  oraz  jej  znaczenie  w Ŝy-

wieniu  człowieka,  ogromne  nadzieje  wiąŜe  się  z  produktami  jej  modyfikacji  jako 
produktami  dietetycznymi 

[L

E

  T

HANH

,  L

EWANDOWICZ

  2007].

  W  szczególności  duŜe 

oczekiwania  istnieją  w  odniesieniu  do  procesów  modyfikacji  fizycznej,  które 
w odróŜnieniu  od  sposobów  polegających  na  reakcjach  chemicznych  nie  budzą  za-
strzeŜeń z punktu widzenia Ŝywieniowego. W Katedrze Biotechnologii i Mikrobiologii 
ś

ywności Uniwersytetu Przyrodniczego w Poznaniu opracowano metodę otrzymywania 

skrobi 

podwyŜszonej 

oporności 

na 

enzymy 

amylolityczne 

na 

drodze 

wysokociśnieniowej  homogenizacji  kleiku 

[G

RAJEK

  i  in.  2004]

.  Metodą  tą  moŜna 

otrzymać produkt o strawności obniŜonej do 50%.  

Celem  niniejszej  pracy  było  ustalenie  czy  skrobia  modyfikowana  fizycznie 

otrzymana  w  wyniku  wysokociśnieniowej  homogenizacji  kleików  skrobiowych  jest 
metabolizowana  przez  probiotyczne  szczepy  bakterii  z  rodzaju  Lactobacillus.  Uzy-
skanie  tych  informacji  moŜe  w  przyszłości  doprowadzić  do  opracowania  na  ich  bazie 
preparatów prebiotycznych i/lub gotowych symbiotyków.  

 
 

 

Materiały i metody

 

 

Materiał  badawczy  stanowiła  skrobia  ziemniaczana  modyfikowana  fizycznie 

otrzymana na drodze wysokociśnieniowej homogenizacji kleiku skrobiowego 

[G

RAJEK

 i 

background image

 

SKROBIA MODYFIKOWANA FIZYCZNIE  ... 

 
 

407 

in. 2004].

 Do celów porównawczych zastosowano takŜe maltodekstrynę niskoscukrzoną 

(DE  =  4,9)  pochodzącą  z  Przedsiębiorstwa  Przemysłu  Ziemniaczanego  w  Łobzie  oraz 
skrobię ziemniaczaną natywną wyprodukowaną przez WWPZ w Luboniu. 

Masę  cząsteczkową  skrobi  ziemniaczanej,  maltodekstryny  N  oraz  homogenizatu 

oznaczano  techniką  GFC  (ang.  Gel  Filtration  Chromatography).  UŜyto  trzech 
sprzęŜonych szeregowo kolumn Ultrahydrogel

TM

 (Waters). Analizy wykonano aparatem 

firmy  Waters  (Alliance  HPLC  System  2695)  z  detektorem  refraktometrycznym  (RI) 
Waters  2414.  Dane  przetwarzano  za  pomocą  oprogramowania  Empower  Pro  w  opcji 
GPC. Analizę chromatograficzną prowadzono w następujących warunkach: temperatura 
injektora 25

°

C, temperatura kolumn 40

°

C, temperatura celi pomiarowej 35

°

C, przepływ 

rozpuszczalnika  (woda  dejonizowana)  0,700  ml/min.  Krzywą  kalibracyjną  otrzymano 
przy  uŜyciu  standardów  mas  cząsteczkowych  dekstranu  (Polymer  Standards  Service-
USA, Inc.). 

Badaniom  poddano  probiotyczne  szczepy  bakterii  Lactobacillus  acidophilus,  L. 

casei, L. plantarum oraz L. ramnosus. Wszystkie badane bakterie pochodziły z kolekcji 
czystych  kultur  Katedry  Biotechnologii  i  Mikrobiologii  śywności  Uniwersytetu 
Przyrodniczego w Poznaniu. 

 Hodowle probiotycznych bakterii Lactobacillus prowadzono bez regulacji pH w 

temperaturze  37

°

C  w  płynnym  podłoŜu  MRS  (standardowym  podłoŜu  dla  bakterii  z 

rodzaju Lactobacillus) oraz w zmodyfikowanych podłoŜach MRS. Modyfikacja podłoŜa 
MRS  polegała  na  usunięciu  z  niego  glukozy  i  zastąpieniu  jej  równowaŜną  ilością  - 
maltodekstryny,  naturalnej  skrobi  ziemniaczanej  lub  skrobi  modyfikowanej  fizycznie 
(homogenizatu).  Sterylizację  podłoŜy  prowadzono  po  dodaniu  do  nich  alternatywnych 
w  stosunku  do  glukozy  źródeł  węgla.  W  trakcie  hodowli,  w  określonych  interwałach 
czasowych,  oznaczano  liczebność  komórek  Lactobacillus  metodą  rozcieńczeń 
dziesiętnych  i  wyraŜano  ją  w  jtk/ml.  Wszystkie  oznaczenia  wykonywano  w  trzech 
powtórzeniach.  Na  podstawie  otrzymanych  danych  określano  maksymalną  liczbę 
komórek  badanych  bakterii,  obliczano  ilość  podziałów,  czas  generacji,  maksymalną 
szybkość  wzrostu (częstość podziałów) oraz czas trwania  fazy  wykładniczej. Hodowlę 
kontrolną  (klasyczne  podłoŜe  MRS)  prowadzono  przez  50  godz.,  natomiast  hodowle 
testowe  (zmodyfikowane  podłoŜa  MRS)  przez  75  godz.  Czas  hodowli  testowych 
wydłuŜono  o  50%  by  dokładnie  prześledzić  sposób  oddziaływania  zastosowanych 
ź

ródeł węgla na ich przebieg. 

Zawartość  krótkołańcuchowych  kwasów  tłuszczowych  SCFA  oznaczono  wy-

korzystując  technikę  wysokosprawnej  chromatografii  cieczowej  HPLC.  Oznaczenia 
wykonano  na  chromatografie  cieczowym  Merck-Hitachi  L-7250,  wyposaŜonym  w 
kolumnę  Amnimex 

HPX-87H 

300

  x  7,8mm  oraz  prekolumnę  i  detektor 

refraktometryczny  typ 

DAD  MERCK-HITACHI  L-7455

.  Jako  eluent  stosowano  0,005M 

H

2

SO

4

, przy przepływie 0,6 ml

min

-1

. Próby sączono przez sączki 0,45 µ m (Milipore) i 

nanoszono  na  kolumnę  w  ilości  30  µl.  Identyfikacji  jakościowej  oraz  ilościowej 
dokonano  metodą  standardu  zewnętrznego  z  wykorzystaniem  powierzchni  pików 
(pomiar i integracja komputerowa). 

 

 
 

Wyniki i dyskusja

 

 

Skrobia  modyfikowana  fizycznie  na  drodze  wysokociśnieniowej  homogenizacji 

kleiku  skrobiowego  wykazuje  obniŜoną  do  50%  strawność  czyli  zaledwie  połowa 
skrobi  ulega  hydrolizie  do  glukozy  po  16-tu  godzinach  inkubacji  w  obecności 

α

-

amylazy  trzustkowej  i  glukoamylazy.  Pod  względem  strukturalnym  preparat  ten  w 
niewielkim  stopniu  róŜni  się  od  naturalnej  skrobi  ziemniaczanej,  a  najpowaŜniejszą 

background image

 

J. Le Thanh i inni 

 
 

408 

zmianą  jaką  powoduje  zastosowany  sposób  obróbki  jest  częściowa  degradacja 
makrocząsteczek  tego  polisacharydu  (rys.  1).  Na  wykresie  obrazującym  rozkład  mas 
cząsteczkowych  naturalnej  skrobi  ziemniaczanej  moŜna  zaobserwować  ostry  pik 
amylopektyny  dla  czasu  retencji  16,6  min,  oraz  trzy  szerokie  piki  (czas  retencji  22,5; 
24,9;  30,7  min)  odpowiadające  amylozie  (rys.  1).  Handlowa  maltodekstryna 
niskoscukrzona  DE  =  4,9  (co  odpowiada  stopniowi  polimeryzacji  DP 

  20)  wykazuje 

duŜy  szeroki  pik  z  dwoma  maksimami  dla  czasów  retencji  40,5  i  36,2  min 
odpowiadający  dominującej  frakcji  niskocząsteczkowej,  oraz  mały  pik  dla  czasu 
retencji  17,9  min,  wskazujący  na  obecność  w  produkcie  niewielkiej  ilości  relatywnie 
wysokocząsteczkowej  frakcji  polisacharydowej.  W  odróŜnieniu  od  pozostałych 
zastosowanych wielkocząsteczkowych źródeł węgla, homogenizat skrobiowy wykazuje 
trimodalny rozkład mas cząsteczkowych. Najbogatszą frakcję stanowi niezdegradowana 
amylopektyna, ponadto  występują frakcje odpowiadające zdegradowa.ym cząsteczkom 
skrobiowym. Charakterystyczny jest fakt, iŜ pik amylopektyny homogenizatu występuje 
przy  nieco  niŜszym  czasie  retencji  (16,4 min)  niŜ  pik  amylopektyny  naturalnej  skrobi 
ziemniaczanej 

(16,7 

min). 

PowyŜsza 

obserwacja 

wskazuje, 

iŜ 

proces 

wysokociśnieniowej homogenizacji spowodował nie tylko degradację makrocząsteczek 
skrobiowych,  ale  równieŜ  pewną  zmianę  konformacyjną  frakcji  amylopektyny 
poprawiającą  termodynamiczną  zgodność  polimer-rozpuszczalnik  w  układzie 
homogenizat-woda  co  w  konsekwencji  przesunęło  pik  GPC  w  kierunku  niŜszych 
czasów retencji. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

 
 

Rys. 1.      Rozkład mas cząsteczkowych określony metodą filtracji Ŝelowej (GPC), 1 - skrobia,  
                 2- homogenizat skrobi, 3 - maltodekstryna N 

 

 

 

Fig. 1.  

Molecular  mass  distribution  determined  by  the  gel  permeation  chromatography 
method (GPC), 1 - starch, 2 - homogenised starch, 3 - maltodextrin N

 

 

Zastąpienie glukozy w poŜywce MRS poliglukanami skrobiowymi o róŜnej masie 

cząsteczkowej  czyli:  maltodesktryną,  naturalną  skrobią  ziemniaczaną  oraz  skrobią 
modyfikowaną  fizycznie  wpłynęło  na  przebieg  hodowli  badanych  bakterii  z  rodzaju 
Lactobacillus  (tab.  1).  W  trakcie  fazy  wzrostu  wykładniczego  składniki  odŜywcze  w 
komercyjnych  podłoŜach  hodowlanych  występują  zwykle  w  nadmiarze  dlatego 
szybkość  wzrostu  bakterii  jest  największa,  a  zarazem  maksymalna  i  charakterystyczna 
dla poszczególnych gatunków. Zdolność bakterii do wzrostu zaleŜy jednak nie tylko od 
indywidualnych  właściwości  bakterii  ale  w  duŜej  mierze  jest  uzaleŜniona  od 
stosowanego  substratu 

[V

ULEVIC

  i  in.  2004].

  Jak  wynika  z  danych  zamieszczonych  w 

tabeli  1,  w  przypadku  hodowli  prowadzonych  na  podłoŜu  z  glukozą  maksymalna 
liczebność komórek wykazywała niewielkie zróŜnicowanie gatunkowe i wynosiła dla L. 
acidophilus
  9,8

10

8

  jtk

ml

-1

,  dla  L.  casei  9,0

10

8

  jtk

ml

-1

  oraz  dla  L.  plantarum  i  L. 

ramnosus  2,0

10

9

  jtk

ml

-1

.  Maltodekstryna,  która  charakteryzowała  się  stopniem 

polimeryzacji  DP 

  20  była  równieŜ  źródłem  węgla  bardzo  efektywnie 

wykorzystywanym  przez  bakterie  z  rodzaju  Lactobacillus.  UmoŜliwiła  ona  wszystkim 

background image

 

SKROBIA MODYFIKOWANA FIZYCZNIE  ... 

 
 

409 

badanym bakteriom intensywny wzrost, jednak maksymalna gęstość ich populacji była 
się  nieco  niŜsza  od  otrzymywanej  w  podłoŜu  z glukozą.  Wzrost  bakterii  z  rodzaju 
Lactobacillus  w  pozostałych  podłoŜach  był  słabszy  niŜ  w  kontroli  glukozowej,  co 
moŜna  tłumaczyć  bardziej  skomplikowaną  strukturą  wchodzących  w  ich  skład 
substratów.  Ze  względu  na  to,  iŜ  pozostałymi  źródłami  węgla  były  cukry  złoŜone, 
badane  bakterie,  do  ich  rozkładu  musiały  uruchomić  syntezę  specyficznych  enzymów. 
To  z  kolei  powodowało  stopniową  zmianę  ich  metabolizmu.  Zmiana  ta  wpłynęła  na 
obniŜenie  liczebności  komórek  oraz  na  wydłuŜenie  niektórych  faz  wzrostu  -  głównie 
fazy  wykładniczego  wzrostu  (tab. 1).  W  przypadku  skrobi  ziemniaczanej  czas  trwania 
fazy  wykładniczej  wydłuŜył  się  do  13  godz.  dla  Lactobacillus  acidophilus  (tab.  1), 
natomiast  dla  pozostałych  bakterii  aŜ  do  24  godz.  (tab.  1).  Maksymalna  liczebność 
komórek wszystkich badanych lactobacillusów w podłoŜu ze skrobią ziemniaczaną była 
niŜsza  niŜ  w podłoŜu  z  glukozą  i  wynosiła  średnio  8,2

10

8

  jtk

ml

-1

  (tab.  1).  Wyjątek 

stanowiły  bakterie  Lactobacillus  plantarum,  których  populacja  w  podłoŜu  ze  skrobią 
ziemniaczaną  osiągnęła  liczebność  porównywalną  do  klasycznego  podłoŜa  MRS 
(tab. 1).  Gęstość  komórek  w  podłoŜu  z  homogenizatem  była  natomiast  zbliŜona  do 
wartości uzyskiwanych dla skrobi natywnej, co moŜe być spowodowane zbliŜoną masą 
cząsteczkową  obu  związków.  Na  uwagę  zasługuje  równieŜ  fakt,  Ŝe  czas  trwania  fazy 
wykładniczej  wszystkich  badanych  probiotycznych  szczepów  Lactobacillus  na 
podłoŜach z homogenizatem  był dwu- trzykrotnie  krótszy  niŜ  na podłoŜach ze skrobią 
natywną. 

 
 

Tabela 1; Table 1 

 

 

Parametry wzrostu bakterii z rodzaju Lactobacillus w klasycznym podłoŜu MRS  

 

z glukozą oraz w zmodyfikowanych podłoŜach MRS 

 
 

Parameters of Lactobacillus growth  

 

in classic as well as modified MRS broth

 

  

Wyszczególnienie; Specification 

 

Glukoza 

Glucose 

 

Maltodek-

stryna 

Maltodextrin 

 

Skrobia 

Potato 

starch 

 

Homogenizat 

skrobi 

Homogenised 

starch 

 

 

 

 

 

 

Lactobacillus acidophilus 

 
Log maksymalnej liczebności komórek (jtk

ml

-1

The log of maximum cells viability (cfu

ml

-1

 

8,99 

 

8,6 

 

7,97 

 

7,85 

 
Czas trwania fazy wykładniczej - t (godz.) 
Time of exponential phase - t (h) 

 

10 

 

 

13 

 

 

 

 

 

 

 
Liczba podziałów (pokoleń) - n 
Number of generations - n 

 

9,9 

 

4,8 

 

3,7 

 

2,7 

 
Maksymalna właściwa szybkość wzrostu - v (godz.) 
Maximum specific growth rate - v (h) 

 

1,0 

 

0,6 

 

0,3 

 

0,3 

 
Czas generacji - g (godz.) 
Generation time - g (h) 

 

1,0 

 

1,7 

 

3,3 

 

3,3 

 

Lactobacillus casei 

 
Log maksymalnej liczebności komórek (jtk

ml

-1

The log of maximum cells viability (cfu

ml

-1

 

8,82 

 

8,58 

 

7,74 

 

7,39 

 
Czas trwania fazy wykładniczej - t (godz.) 
Time of exponential phase - t (h) 

 

10 

 

13 

 

24 

 

 
Liczba podziałów (pokoleń) - n  

 

5,14 

 

6,5 

 

4,5 

 

4,9 

background image

 

J. Le Thanh i inni 

 
 

410 

Number of generations - n 

 
Maksymalna właściwa szybkość wzrostu - v (godz.) 
Maximum specific growth rate - v (h) 

 

0,5 

 

0,5 

 

0,2 

 

0,6 

 
Czas generacji - g (godz.) 
Generation time - g (h) 

 

2,0 

 

2,0 

 

 

1,7 

 

Lactobacillus plantarum 

 
Log maksymalnej liczebności komórek (jtk

ml

-1

The log of maximum cells viability (cfu

ml

-1

 

9,15 

 

8,99 

 

9,16 

 

8,75 

 
Czas trwania fazy wykładniczej - t (godz.) 
Time of exponential phase - t (h) 

 

13 

 

 

24 

 

 
Liczba podziałów (pokoleń) - n  
Number of generations - n 

 

10,5 

 

4,8 

 

9,4 

 

6,4 

 
Maksymalna właściwa szybkość wzrostu - v (godz.) 
Maximum specific growth rate - v (h) 

 

0,8 

 

0,6 

 

0,4 

 

0,8 

 
Czas generacji - g (godz.) 
Generation time - g (h) 

 

1,2 

 

1,6 

 

2,5 

 

1,25 

 

Lactobacillus ramnosus 

 
Log maksymalnej liczebności komórek (jtk

ml

-1

The log of maximum cells viability (cfu

ml

-1

 

9,13 

 

8,83 

 

7,95 

 

7,86 

 
Czas trwania fazy wykładniczej - t (godz.) 
Time of exponential phase - t (h) 

 

10 

 

 

24 

 

 
Liczba podziałów (pokoleń) - n 
Number of generations - n 

 

5,8 

 

6,9 

 

4,3 

 

3,4 

 
Maksymalna właściwa szybkość wzrostu - v (godz.) 
Maximum specific growth rate (h) 

 

0,6 

 

1,4 

 

0,2 

 

0,4 

 
Czas generacji - g (godz.) 
Generation time - g (h) 

 

1,6 

 

0,7 

 

5,6 

 

2,5 

 

Wytwarzanie  krótkołańcuchowych  kwasów  tłuszczowych  (SCFA)  jest  typową 

cechą  fizjologiczną  bakterii  z  rodzaju  Lactobacillus  i  jedną  z  przyczyn  korzystnego 
oddziaływania  tych  mikroorganizmów  na  organizm  człowieka.  W  związku  z tym,  Ŝe 
krótkołańcuchowe  kwasy  tłuszczowe  wytwarzane  podczas  fermentacji  wywierają 
pozytywny  wpływ  na  organizm  ludzki  podwyŜszone  stęŜenia  tych  kwasów  w  jelicie 
grubym  są  uznawane  za  poŜądane.  Wszystkie  kwasy  tłuszczowe  wytwarzane  przez 
Lactobacillus  obniŜają  pH  jelit  powodując  tym  samym  zmniejszenie  ilości 
niekorzystnej  dla  nas  mikroflory.  SCFA  mogą  takŜe  stymulować  rozwój  nabłonka 
jelitowego  (kwas  masłowy),  a  nawet  wpływać  korzystnie  na  rozwój  hepatocytów 
(głównie  kwas  propionowy) 

[L

IBUDZISZ

  2006].

  Jak  wykazały  przeprowadzone  badania 

ilość  kwasów  wydzielanych  przez  cztery  probiotyczne  szczepy  bakterii  Lactobacillus 
zaleŜała  od  rodzaju  źródła  węgla  obecnego  w  podłoŜu.  Na  rysunku 2  przedstawiono 
profil  zmian  stęŜenia  najwaŜniejszych  krótkołańcuchowych  kwasów  tłuszczowych  w 
hodowli  bakterii  Lactobacillus  acidophilus  na  podłoŜu  zawierającym  glukozę  jako 
ź

ródło  węgla.  Rysunek  ten  obrazuje  sposób  w  jaki  bakterie  Lactobacillus  wytwarzały 

krótkołańcuchowe kwasy tłuszczowe w sytuacji gdy zapewniono im optymalne warunki 
wzrostu.  Fermentacja  glukozy,  będącej  preferowanym  źródłem  węgla  przez  bakterie, 
dała  stosunkowo  wysoką  produkcję  kwasu  mlekowego.  Jego  stęŜenie  w  50  godz. 
hodowli  oscylowało  w  granicach  25 g

dm

-3

.  Drugim,  pod  względem  ilościowym, 

metabolitem wydzielanym podczas fermentacji do podłoŜa był kwas octowy. Jego ilość 
rosła  stopniowo  do  wartości  5 g

dm

-3

.  W  mniejszych  ilościach  wytwarzane  były  inne 

SCFA.  Maksymalne  stęŜenie  kwasu  propionowego  w  podłoŜu  hodowlanym 

background image

 

SKROBIA MODYFIKOWANA FIZYCZNIE  ... 

 
 

411 

zarejestrowano  w  50  godz.  hodowli.  Wynosiło  ono  1,7  g

dm

-3

.  Kwas  masłowy  był 

natomiast  wydzielany  w  śladowych  ilościach.  Produkcja  wszystkich  SCFA  zaczynała 
się  około  6  godziny  hodowli,  czyli  mniej  więcej  w  połowie  fazy  wzrostu 
wykładniczego.  Analizując  dane  zamieszczone  na  rysunku  2  stwierdzono  równieŜ,  Ŝe 
przez  cały  czas  trwania  hodowli  bakterie  Lactobacillus  nie  utylizowały 
krótkołańcuchowych kwasów tłuszczowych. 
 

 

-- kwas mlekowy; lactic acid   

 

-- kwas octowy; acetic acid 

-- kwas propionowy; propionic acid   

-

×

- kwas masłowy; butyric acid

 

 

Rys. 2. Zawartość  krótkołańcuchowych  kwasów  tłuszczowych  podczas  hodowli  Lactobacillus 

acidophilus w poŜywce zawierającej glukozę jako źródło węgla 

 
Fig. 2.  

The short chain fatty acids concentration during Lactobacillus acidophilus growth in 
the medium with glucose as a carbon source

 

 

Zastosowanie  do  hodowli  L.  acidophillus  podłoŜa  z  maltodekstryną  zamiast 

glukozy obniŜyło produkcję wszystkich SCFA (rys. 3). Maksymalne uzyskane stęŜenie 
kwasu mlekowego wynosiło 8,44 g

dm

-3

, kwasu octowego 3,79 g

dm

-3

, natomiast kwasu 

propionowego  1,03  g

dm

-3

.  Jedynie  kwas  masłowy  podczas  hodowli  na  podłoŜu  z 

maltodekstryną  był  produkowany  w  porównywalnych  ilościach  jak  w trakcie  hodowli 
kontrolnych (podłoŜa z glukozą). W podłoŜu MRS zmodyfikowanym maltodekstryną L. 
acidophillus
  potrzebowały  jednocześnie  znacznie  więcej  czasu  na  wykorzystanie 
substratu  stąd  teŜ  produkcja  SCFA  zaczynała  się  znacznie  później  w  porównaniu  z 
hodowlami kontrolnymi. 
 

background image

 

J. Le Thanh i inni 

 
 

412 

 

-- kwas mlekowy; lactic acid   

 

-- kwas octowy; acetic acid 

-- kwas propionowy; propionic acid   

-

×

- kwas masłowy; butyric acid

 

 

Rys. 3.  

Zawartość  krótkołańcuchowych  kwasów  tłuszczowych  podczas  hodowli  Lacto-
bacillus acidophilus
 w poŜywce zawierającej maltodekstrynę jako źródło węgla 

 
Fig. 3.  

The short chain fatty acids concentration during Lactobacillus acidophilus growth in 
the medium with maltodekstrin as a carbon source

 

 

Zastosowanie  naturalnej  skrobi  ziemniaczanej  jako  źródła  węgla  spowodowało 

zmianę 

proporcji 

ilościowych 

wytwarzanych 

krótkołańcuchowych 

kwasów 

tłuszczowych  w  porównaniu  z  kontrolą  glukozową  (rys.  4).  W  trakcie  hodowli  na 
podłoŜu  ze  skrobią  ziemniaczaną  L.  acidophillus  produkowały  najwięcej  kwasu 
octowego.  Kolejnym  pod  względem  ilości  wytwarzanym  SCFA  był  kwas  mlekowy,  a 
następnie kolejno kwas propionowy i masłowy. 

Poziom  produkcji  krótkołańcuchowych  kwasów  tłuszczowych  w  podłoŜu 

zawierającym homogenizat róŜnił się wyraźnie od stwierdzonego w pozostałych typach 
podłoŜy (rys. 5). Największe zmiany nastąpiły w produkcji kwasu mlekowego, mniejsze 
natomiast  w  produkcji  kwasu  octowego  oraz  propionowego.  Bakterie  L.  acidophilus 
hodowane  w  podłoŜu  z  homogenizatem,  podobnie  jak  w podłoŜu  ze  skrobią, 
produkowały, więcej kwasu octowego niŜ kwasu mlekowego. Podobne wyniki uzyskała

 

W

RONKOWSKA

  i  in.  [2006]

,  w  badaniach  24-godzinnej  fermentacji  róŜnych  substratów 

skrobiowych  z  udziałem  wybranych  szczepów  Bifidobacterium,  gdzie  w  przypadku 
próby kontrolnej, czyli podłoŜa z glukozą głównym  metabolitem  fermentacji był  kwas 
mlekowy,  a  fermentacja  pozostałych  substratów  (tj.  skrobi  natywnych  i  skrobi 
modyfikowanych,  opornych  na  enzymy  amylolityczne)  dała  wysokie  stęŜenia  kwasu 
octowego 

[W

RONKOWSKA

 i in. 2006

].  

 
 
 
 
 
 
 

background image

 

SKROBIA MODYFIKOWANA FIZYCZNIE  ... 

 
 

413 

 

 

-- kwas mlekowy; lactic acid   

 

-- kwas octowy; acetic acid 

-- kwas propionowy; propionic acid   

-

×

- kwas masłowy; butyric acid

 

 

Rys. 4. Zawartość  krótkołańcuchowych  kwasów  tłuszczowych  podczas  hodowli  Lactobacillus 

acidophilus w poŜywce zawierającej skrobię jako źródło węgla 

 
Fig. 4.  

The short chain fatty acids concentration during Lactobacillus acidophilus growth in 
the medium with potato starch as a carbon source

 

 
 

 

 

-- kwas mlekowy; lactic acid   

 

-- kwas octowy; acetic acid 

-- kwas propionowy; propionic acid   

-

×

- kwas masłowy; butyric acid

 

 

Rys. 5.  

Zawartość  krótkołańcuchowych  kwasów  tłuszczowych  podczas  hodowli  Lacto-
bacillus acidophilus
 w poŜywce zawierającej homogenizat skrobi jako źródło węgla 

 
Fig. 5.  

The  short  chain  fatty  acids  during  Lactobacillus  acidophilus  growth  in  the  medium 
with homogenized starch as a carbon source

 

W badaniach 

V

ULEVIC

A

 i in. [2004]

 zaobserwowano wyŜszą produkcję kwasu octowego 

niŜ  mlekowego  przy  zastosowaniu  jako  źródła  węgla  zamiast  glukozy  trans-galakto-
oligosacharydów,  frukto-oligosacharydów, sacharozy, czy teŜ gumy  guar 

[V

ULEVIC

  i  in. 

2004].

 Kwas octowy,  który okazał się być  głównym  metabolitem  fermentacji  natywnej 

skrobi  ziemniaczanej  oraz  skrobi  modyfikowanej  fizycznie  prowadzonej  przez 
probiotyczne  szczepy  bakterii  z  rodzaju  Lactobacillus  jest  związkiem  wykazującym 
silną  antagonistyczną  aktywność  względem  wielu  bakterii,  droŜdŜy  i  pleśni.  Ponadto 
ustalono,  Ŝe  jest  absorbowany  z  jelita  grubego  i  stanowi  zapasowe  źródło  energii  dla 
tkanek 

[W

RONKOWSKA

 i in. 2006].

 

background image

 

J. Le Thanh i inni 

 
 

414 

Proces  produkcji  krótkołańcuchowych  kwasów  tłuszczowych  przez  pozostałe 

badane  szczepy  bakterii  z  rodzaju  Lactobacillus  miał  podobny  przebieg  jak 
w przypadku L. acidophilus. Ponadto charakter zmian wywołanych obecnością róŜnych 
ź

ródeł węgla w podłoŜu był analogiczny (tab. 2).  

 

Tabela 2; Table 2 

 

 

Ilości krótkołańcuchowych kwasów tłuszczowych wytworzonych  

 

przez bakterie z rodzaju Lactobacillus w klasycznym podłoŜu MRS  

 

z glukozą oraz podłoŜach zmodyfikowanych po 50 godz. fermentacji 

 
 

Production of short chain fatty acids by Lactobacillus in classic  

 

as well as modified MRS broth after 50h fermentation

 

  

Ź

ródło węgla w podłoŜu 

Carbon source  

 

StęŜenie kwasu w podłoŜu po 50 godz. fermentacji 

Concentration of acids in broth after 50 h fermentation 

(g

dm

-3

 
 

 

mlekowy 

lactic 

 

octowy 

acetic 

 

propionowy 

propionic 

 

masłowy 

butyric 

 

 

L. acidophilus 

 
Glukoza; Glucose 

 

24,71 

 

5,12 

 

1,66 

 

0,02 

 
Maltodekstryna; Maltodextrin 

 

7,98 

 

3,69 

 

1,00 

 

0,09 

 

Skrobia; Starch 

 

1,46 

 

3,33 

 

1,08 

 

0,09 

 

Homogenizat skrobi; Homogenised starch 

 

1,19 

 

3,32 

 

0,91 

 

0,03 

 
 

L. casei 

 
Glukoza; Glucose 

 

26,47 

 

5,15 

 

1,69 

 

 

Maltodekstryna; Maltodextrin 

 

8,54 

 

2,15 

 

1,02 

 

0,06 

 

Skrobia; Starch 

 

1,67 

 

2,65 

 

1,02 

 

0,12 

 
Homogenizat skrobi; Homogenised starch 

 

1,05 

 

2,69 

 

0,85 

 

0,05 

 

 

L. plantarum 

 

Glukoza; Glucose 

 

14,89 

 

2,56 

 

0,73 

 

0,05 

 

Maltodekstryna; Maltodextrin 

 

19,40 

 

2,80 

 

0,81 

 

0,06 

 
Skrobia; Starch 

 

10,67 

 

4,41 

 

1,33 

 

0,06 

 

Homogenizat skrobi; Homogenised starch 

 

0,59 

 

4,03 

 

1,50 

 

0,01 

 

 

L. ramnosus 

 

Glukoza; Glucose 

 

15,08 

 

1,97 

 

0,99 

 

0,05 

 
Maltodekstryna; Maltodextrin 

 

9,80 

 

2,55 

 

0,86 

 

0,06 

 

Skrobia; Starch 

 

0,87 

 

2,15 

 

0,59 

 

0,03 

 

Homogenizat skrobi; Homogenised starch 

 

1,07 

 

3,60 

 

1,07 

 

0,05 

 

 

Podsumowanie

 

 

Skrobia  modyfikowana  fizycznie  na  drodze  wysokociśnieniowej  homogenizacji 

kleiku  skrobiowego  wykazuje  obniŜoną  do  50%  strawność  in  vitro.  Zastosowany 
sposób  obróbki  powoduje  częściową  degradację  makrocząsteczek  tego  polisacharydu 
oraz  zmianę  konformacyjną  frakcji  amylopektyny  poprawiającą  termodynamiczną 
zgodność  polimer-rozpuszczalnik  w  układzie  polimer-woda.  Zastąpienie  glukozy  w 
podłoŜu  MRS  skrobią  modyfikowaną  fizycznie  zmienia  przebieg  hodowli  czterech 
badanych  probiotycznych  szczepów  bakterii  Lactobacillus.  UŜycie  jako  źródła  węgla 
maltodekstryny,  nie  wpływa  w  wyraźny  sposób  na  intensywność  wzrostu  Ŝadnego  z 
badanych  szczepów.  Podczas  hodowli  w  podłoŜu  ze  skrobią  ziemniaczaną  natywną 

background image

 

SKROBIA MODYFIKOWANA FIZYCZNIE  ... 

 
 

415 

następuje  natomiast  obniŜenie  liczebności  komórek  oraz  wydłuŜenie  fazy  wzrostu 
wykładniczego  w  stosunku  do  pozostałych  testowanych  w  pracy  źródeł  węgla.  W 
przypadku  zastosowania  podłoŜa  ze  skrobią  modyfikowaną  fizycznie  zaobserwowano 
niŜszą liczebność komórek wszystkich Lactobacillus, w porównaniu do uzyskiwanej w 
podłoŜu z formą natywną skrobi. Maksymalna szybkość  wzrostu komórek była jednak 
porównywalna  w  obu  podłoŜach.  Zastosowanie  wysokocząsteczkowych  źródeł  węgla, 
takich  jak  naturalna  skrobia  ziemniaczana  oraz  skrobia  modyfikowana  na  drodze 
wysokociśnieniowej  homogenizacji  wyraźnie  obniŜyło  produkcję  kwasu  mlekowego 
oraz  zmieniło  proporcje  ilościowe  pomiędzy  pozostałymi  SCFA  wytwarzanymi  przez 
Lactobacillus.  W  podłoŜach  ze  skrobią  modyfikowaną  fizycznie  kwas  octowy  był 
głównym  produktem  fermentacji.  Skrobia  modyfikowana  fizycznie  na  drodze 
wysokociśnieniowej homogenizacji powodowała podobne zmiany metabolizmu bakterii 
probiotycznych jak znane substancje o charakterze prebiotycznym, tj. trans-galakto-oli-
gosacharydy, frukto-oligosacharydy oraz preparaty skrobi opornej. 
 
 
 

Literatura

 

 

ASP,  N-G.  1996.

  Dietary  carbohydrates:  classification  by  chemistry  and  physiology. 

Food Chem. 57(1): 9-14. 

B

ROUNS

  F.,  K

ETTLITZ

  B.,  A

RRIGONI

  E.  2002.

  Resistant  starch  and  the  butyrate  revolu-

tion”. Trends in Food Sci. and Techn. 13(8): 251-261. 

F

OOKS 

L.J.,  F

ULLER

  R.,  G

IBSON

  G.R.  1999.

  Prebiotics,  probiotics  and  human  gut 

microbiology. Intern. Dairy J. 9: 53-61. 

G

IBSON

  G.R.  2004.

  Prebiotics.  Best  Practice  &  Research  Clinical  Gastroenterology 

18(2): 287-298. 

G

IDLEY

 M.J., C

OOKE

 D., D

ARKE

 A.H., H

OFFMANN

 R.A., R

USSELL

 A.L., G

REENWELL

 P. 1995.

 

Molecular  order  and  structure  in  enzyme-resistant  retrograded  starch.  Carbohydrate 
Polymers 28(1): 23-31. 

G

RAJEK

  W.,  J

ANKOWSKI

  T.,  L

EWANDOWICZ

  G.  2004.

  Sposób  otrzymywania  produktu 

skrobiowego  o  podwyŜszonej  odporności  na  enzymy  amylolityczne.  Zgłoszenie  pa-
tentowe RP nr P. 368472 z dnia 8 czerwca 2004. 

L

T

HANH

  J.,  L

EWANDOWICZ

  G.  2007.

  Dietetyczne  produkty  skrobiowe.  Przem.  SpoŜ. 

61(8): 54-58; 88. 

L

ESZCZYŃSKI

  W.  2004. 

Resistant  starch  -  classification,  structure,  production.  Polish  J. 

of Food and Nutrition Sci. 13/54(1): 37-50. 

L

EWANDOWICZ

  G.  S

ORAL

MIETANA

  M.  2004. 

Starch  modification  by  iterated  syneresis

Carbohydrate Polymers 56(4): 403-413. 

L

IBUDZISZ

  Z.  2006.

 Mikroflora przewodu pokarmowego człowieka i jej  wpływ na orga-

nizm, w: Mikroorganizmy w Ŝywności i Ŝywieniu. Wydawn. AR w Poznaniu: 31-41. 

V

ULEVIC

  J.,  R

ASTALL

  R.A.,  G

IBSON

  G.R.  2004.

  Developing  a  quantitative  approach  for 

determining  the  in  vitro  prebiotic  potential  of dietary  oligosaccharides.  FEMS  Micro-
biology Letters 236: 153-159. 

S

ORAL

MIETANA

  M.,  W

RONKOWSKA

  M.,  B

IEDRZYCKA

  E.,  B

IELECKA

  M.,  O

CICKA

  K.  2005.

 

Native and physically-modified starches-utilization of resistant starch by Bifidobacteria 
(In Vitro).
 Polish J. of Food and Nutrition Sci. 14(55): 3.273-279. 

W

RONKOWSKA

  M.,  S

ORAL

MIETANA

  M.,  K

RUPA

  U.,  B

IEDRZYCKA

  E.  2006.

  In  vitro  fer-

mentation  of  new  modified  starch  preparations  -  changes  of  microstructure  and  bac-

background image

 

J. Le Thanh i inni 

 
 

416 

terial end-products. Enzyme and Microbial Techn. 40: 93-99. 
 
 
 
Słowa kluczowe: 

skrobia,  prebiotyk,  Lactobacillus,  krótkołańcuchowe  kwasy 
tłuszczowe 

 
 

Streszczenie 

 

ś

ywność funkcjonalna czyli produkty spoŜywcze wykazujące pozytywny (ponad 

efekt  odŜywczy)  wpływ  na  organizm  człowieka  budzą  coraz  większe  zainteresowanie, 
zarówno  konsumentów,  jak  i  technologów  Ŝywności.  Szczególną  rolę  odgrywają 
wchodzące  często  w  jej  skład  substancje  o  charakterze  prebiotycznym,  tj.  niestrawne 
węglowodany,  które  selektywnie  stymulują  wzrost  i/lub  aktywność  jednego  lub  kilku 
szczepów  bakterii  probiotycznych  (Bifidobacterium,  Lactobacillus)  obecnych  w  jelicie 
grubym.  Przykładem  produktów  będących  źródłem  substancji  prebiotycznych  są 
produkty skrobiowe zawierające tzw. skrobię oporną. Wcześniejsze prace wykonane w 
Katedrze  Biotechnologii  i  Mikrobiologii  śywności  Uniwersytetu  Przyrodniczego  w 
Poznaniu wykazały, Ŝe skrobia modyfikowana fizycznie na drodze wysokociśnieniowej 
homogenizacji kleiku wykazuje strawność in vitro rzędu 50%. Celem pracy była ocena 
prebiotycznych  właściwości  skrobi  modyfikowanej  fizycznie  otrzymanej  na  drodze 
wysokociśnieniowej homogenizacji kleików skrobiowych poprzez określenie zdolności 
mikroorganizmów z rodzaju Lactobacillus do wykorzystywania jej jako źródła węgla. 

Cztery probiotyczne szczepy  bakterii z rodzaju Lactobacillus (L. acidophilus, L. 

casei,  L.  plantarum,  L.  ramnosus)  hodowano  w  podłoŜach  MRS  zawierających  jako 
ź

ródło 

węgla 

zamiennie: 

glukozę, 

maltodekstrynę 

niskoscukrzoną, 

skrobię 

ziemniaczaną natywną, oraz skrobię modyfikowaną fizycznie na drodze homogenizacji 
wysokociśnieniowej.  Zakres  badań  obejmował  określanie  intensywności  wzrostu 
badanych  mikroorganizmów  oraz  poziomu  produkcji  krótkołańcuchowych  kwasów 
tłuszczowych  metodą  HPLC.  Oznaczono  ponadto  rozkład  mas  cząsteczkowych 
wszystkich badanych preparatów skrobiowych. 

Stwierdzono,  Ŝe  wysokociśnieniowa  homogenizacja  kleiku  powoduje  częściową 

degradację  makrocząsteczek  skrobi  oraz  zmianę  konformacyjną  frakcji  amylopektyny 
poprawiającą  termodynamiczną  zgodność  polimer-rozpuszczalnik  w  układzie  polimer-
woda.  Wprowadzenie  skrobi  modyfikowanej  fizycznie  do  podłoŜa  MRS  zamiast 
glukozy  powodowało  zmianę  przebiegu  hodowli  wszystkich  badanych  szczepów 
Lactobacillus. UŜycie jako źródła węgla maltodekstryny zamiast glukozy nie wpłynęło 
zarówno na maksymalną szybkość wzrostu jak i na liczebność komórek Lactobacillus
Hodowlana  w  podłoŜu  ze  skrobią  ziemniaczaną  natywną  charakteryzowała  się  niŜszą 
intensywnością  wzrostu  badanych  bakterii  oraz  najdłuŜszym  czasem  trwania  fazy 
wzrostu  wykładniczego  w  odniesieniu  do  pozostałych  źródeł  węgla.  W  przypadku 
zastosowania  podłoŜa  ze  skrobią  modyfikowaną  fizycznie  jako  źródłem  węgla, 
maksymalna  liczebność  komórek  Lactobacillus  była  niŜsza  od  uzyskiwanej  w 
podłoŜach  z  formą  natywną  skrobi,  natomiast  szybkość  wzrostu  komórek  była 
porównywalna dla obu substratów. Zastosowanie wysokocząsteczkowych źródeł węgla, 
takich  jak  naturalna  skrobia  ziemniaczana  oraz  skrobia  modyfikowana  na  drodze 
wysokociśnieniowej  homogenizacji  powodowało  intensywniejszą  produkcję  kwasu 
octowego  niŜ  mlekowego.  Skrobia  modyfikowana  fizycznie  na  drodze  wy-
sokociśnieniowej  homogenizacji  wywołuje  podobne  zmiany  metabolizmu  bakterii 
probiotycznych  jak  znane  substancje  o  charakterze  prebiotycznym,  tj.  trans-galakto-
oligosacharydy, frukto-oligosacharydy oraz preparaty skrobi opornej. 

background image

 

SKROBIA MODYFIKOWANA FIZYCZNIE  ... 

 
 

417 

 
 
 

PHYSICALLY MODIFIED STARCH AS A POTENTIAL PREBIOTIC 

 
 

Joanna Le Thanh, Aneta Burchardt, Joanna Menclewicz,  

 

Anna Sip, GraŜyna Lewandowicz 

 

Department of Biotechnology and Food Microbiology,  

 

University of Life Sciences, Poznań 

 
Key words: 

starch, prebiotic, Lactobacillus, short chain fatty acids 

 
 

Summary 

 

The  identification  and  development  of  food  ingredients  that  beneficially  affect 

human  organism  have  attracted  much  interest  recently.  Prebiotics  i.e.  nondigestible 
carbohydrates  that  selectively  stimulate  the  growth  and/or  activity  of  one,  or  a  limited 
number of probiotic bacteria (e.g. Bifidobacterium, Lactobacillus) present in  the colon 
seem  to  be  especially  important.  Several  starch  products,  particularly  the  so  called 
resistant starch, are recommended earlier as the health beneficial food ingredients. The 
earlier  researches  performed  in  the  Department  of  Biotechnology  and  Food 
Microbiology  of  Poznań  University  of  Life  Sciences  demonstrated  that  the  process  of 
high-pressure homogenization of starch pastes led to obtain a product characterised by 
the in vitro digestibility of about 50%. The aim of the work was to evaluate the prebiotic 
potential of this type of physically modified starch. 

In  order  to  estimate  the  prebiotic  potential  of  physically  modified  starch,  the 

growth  of  four  probiotic  species  of  Lactobacillus  (L.  acidophilus,  L.  casei,  L. 
plantarum,  &  L.  ramnosus)
  was  investigated.  Maltodextrin  (DE  =  4.9),  native  potato 
starch,  as  well  as  the  homogenised  starch  were  applied  as  the  alternative  (instead  of 
glucose) carbon source in the MRS fermentation broth. Moreover, the short chain fatty 
acids  (SCFA)  production  was  determined.  Molecular  mass  distribution  of  all  starch 
preparations was also analysed. 

It  was  found  that  a  high  pressure  homogenisation  of  starch  pastes  resulted  in 

partial  degradation  of  macromolecules  of  this  polysaccharide,  as  well  as  in  con-
formational change which improved the thermodynamic compatibility in polymer-water 
system. The application of physically modified starch as a carbon source in the modified 
MRS  broth  affected  the  growth  of  all  Lactobacilli  strains  not  only  in  comparison  to 
glucose, but also to maltodextrin and native starch. The application of maltodextrin as a 
carbon  source  resulted  neither  in  the  decrease  of  the  maximal  growth  rate,  nor  the 
maximum cell vialibility. 

In the case of the Lactobacilus culture on the MRS broth containing native potato 

starch,  the  lowering  of  maximum  cell  population,  the  longest  duration  of  exponential 
growth phase in comparison to other carbon source as well as the decrease of maximal 
growth  rate  were  observed.  If  modified  starch  is  used  as  an  alternative  carbon  source, 
the decrease of maximum cell population in comparison to native starch is observed, but 
the maximal growth rate was the same. The application of high molecular weight carbon 
sources  i.e.  native  potato  starch  and  starch  modified  physically  by  a  high  pressure 
homogenisation causes more effective production of acetic rather than lactic acid. 

Physically  modified  starch  applied  as  a  carbon  source  in  the  MRS  broth  caused 

similar changes in the metabolism of Lactobacillus probiotic strains as popular prebiotic 
substances  i.e.  trans-galacto-oligosaccharides,  fructo-  oligosaccharides  and  resistant 
starch preparations. 

background image

 

J. Le Thanh i inni 

 
 

418 

 
 
 
Mgr Joanna Le Thanh 
Katedra Biotechnologii i Mikrobiologii śywności 
Uniwersytet Przyrodniczy 
ul. Wojska Polskiego 48 
60-627 POZNAŃ 
e-mail: maithanh@up,poznan.pl