background image

Instrukcja do ćwiczenia 2 

BADANIE WŁASNOŚCI BIAŁEK 

 

ZAGADNIENIA DO PRZYGOTOWANIA 

    ●

 Budowa, podział i własności amfoteryczne aminokwasów  

    ● 

Właściwości białek, białka jako polielektrolity, wpływ pH na ładunek białek i ich rozpuszczalność, właściwości  

     amfoteryczne. Wiązanie wody i wpływ soli na rozpuszczalność białek

  

   ● 

Główne frakcje białek osocza – skład, własności i funkcje.

   

 

1. Oznaczanie punktu izoelektrycznego (pI) kazeiny 

Zasada: Białka są amfoterycznymi polielektrolitami. Ładunek cząsteczki białka zależy od stężenia jonów wodorowych w 

środowisku  i  jego  wartość  zmienia  się  wraz  ze  zmianą  pH.  Wartość  pH,  w  którym  cząsteczka  białka  zawiera  tę  samą  liczbę 
zjonizowanych  grup  dodatnich  i  ujemnych,  odpowiada  punktowi  izoelektrycznemu  (pI)  białka,  wówczas  jego  sumaryczny 
ładunek  równy  jest  zero.  Białko  w  tym  punkcie  nie  wędruje  w  polu  elektrycznym,  ma  najniższą  rozpuszczalność  i  najmniejszą 
lepkość,  najłatwiej  je  wtedy  wytrącić  lub  wykrystalizować.  Białka  w  pI  wykazują  również  najmniejsze  ciśnienie  osmotyczne, 
najsłabiej pęcznieją i nie reagują z anionami ani z kationami.  

 

Punkty izoelektryczne (pI) przykładowych białek 

Pepsyna                     1,0 
Albumina osocza       4,8 
Insulina                      5,3 

Globuliny osocza      5,0-7,0 
Hemoglobina             6,8 
Mioglobina                7,0 

Histony                     10-11 
Trypsyna                   10,5 
Cytochrom c             10,6 

 

Wykonanie: 
   10 probówek (wysokich) w statywie opisz nr od 1 do 10 i wprowadź do nich kolejno roztwory wg instrukcji w tabeli 1: 

 

Numer probówki 

10   

Roztwór 

Dodana ilość (ml) 

H

2

1,5M CH

3

COOH - tylko do 1  

probówki,  dalej kolejne rozcieńczanie: 
przenosząc 5 ml z poprzedniej do 
następnej probówki, po wymieszaniu

 

0,5% kazeina w 0,1M 
CH

3

COONa (wymieszać)  

5,5 

4,5 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

5 ml           

    wylać  

Stopień wytrącenia, po 20 min. 
(w skali od 0 do +5) 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Obliczona wartość pH 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Zmierzona wartość pH  

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

    Ustal pI kazeiny, zinterpretuj uzyskane wyniki.  

 

2. Hydratacja i wysalanie białek 

Zasada: Rozpuszczalność białek zależy od zdolności cząsteczek do hydratacji czyli oddziaływania między polarnymi grupami 

białka a dipolami wody. Na rozpuszczalność białek wpływa też obecność soli (małych stężeń) oraz wartość pH roztworu. Przez 
hydratację  zatem  należy  rozumieć  otaczanie  się  cząsteczek  białka  płaszczem  wodnym.  Woda  hydratacyjna,  nieodłączna  część 
cząsteczki białka, wpływa na właściwości strukturalne i funkcjonalne białka. Cząsteczka białka wiąże dipole wody przez polarne 
grupy hydrofilne łańcuchów bocznych aminokwasów oraz atomy N i O wiązań peptydowych. Białko rozpuszczone w niewielkiej 
ilości wody wchłania ją i tworzy galaretowaty żel, w którego przestrzeniach gromadzą się cząsteczki H

2

O. Niewielkie ilości soli 

nieorganicznych zwiększają rozpuszczalność białek – jest to wsalanie. Przypuszczalnie jony soli zobojętniają zjonizowane grupy 
białek odpowiedzialne za przyciąganie między cząsteczkami. Jeśli jednak stężenie soli będzie wzrastać, korzystny wpływ  jonów 
soli  na  rozpuszczalność  ustaje  i  przy  dużym  stężeniu  soli  białka  rozpuszczalne  w  wodzie  wytrącają  się  z  roztworu,  a  proces  ten 
nazywa  się  wysalaniem  białek.  W  celu  wysalania  stosuje  się  sole,  których  jony  łatwo  tworzą  wodziany  i  pozbawiają    białka 
płaszcza  wodnego,  sprzyja  to  ich  asocjacji  w  większe  agregaty  o  zmniejszonej  rozpuszczalności,  dlatego  agregaty  białkowe 
wypadają  z  roztworu.  Stężenie  soli  potrzebne  do  wysalania  białek  zależy  od  ich  właściwości  oraz  pH  środowiska.  Najłatwiej 
wysolić białko w jego punkcie izoelektrycznym, ponieważ cząsteczki  na zewnątrz  obojętne  łatwo  asocjują w większe agregaty 
wypadające  z  roztworu.  Do  wysalania  najczęściej  stosuje  się  (NH

4

)

2

SO

4

,  Na

2

SO

4

,  MgSO

4

.  Wysalanie  białek  jest  procesem 

odwracalnym, usunięcie soli, np. przez dializę, sprawia, że wytrącone białko ponownie rozpuszcza się i wykazuje swe biologiczne 
właściwości.  Wysalanie  stosuje  się  do  wstępnego  frakcjonowania  białek,  również  osocza.  Z  osocza wytrąca się  fibrynogen  przy 
25%  nasyceniu  siarczanem  amonu,  większość  globulin  osocza  wytrąca  się  przy  50%  nasyceniu  siarczanem  amonu,  natomiast 
albuminy i dobrze rozpuszczalne globuliny wysalane są  dopiero przy 80% nasyceniu siarczanem amonu.  

 

background image

Wykonanie: 
Przygotuj 4 probówki wirówkowe opisane nr od 1 do 4, o składzie podanym w tabeli 2: 

Nr probówki 

Surowica rozc. 5x 

(NH

4

)

2

SO

nasycony roztwór 

2,1 ml 

0,9 ml 

(30%) 

2,1 ml 

2,1 ml 

(50%) 

Próby wymieszać, obejrzeć i ocenić stopień wytrącenia bialek (+). Po 5 min. 

odwirować przy 3000obr./min. przez 10  min. Zdekantować supernatant, osad osuszyć. 
Supernatant z probówki 1 
Supernatant z probówki 2 
(NH

4

)

2

SO

in subst. 

1 ml 

0,6 g 

1 ml 

0,6 g 

Próby wymieszać, obejrzeć i ocenić stopień wytrącenia bialek (+). Po 10 min. 

odwirować przy 3000obr./min. przez 10  min. Zdekantować supernatant, osad osuszyć. 
Próby osadów 

osad 

osad 

osad 

osad 

H

2

O destylowana 

5 ml 

5 ml 

5 ml 

5 ml 

Stopień  rozpuszczalności  białek  w 
skali od 0 do 5 (+) 

 

 

 

 

Zinterpretuj uzyskane wyniki.

 

 

3. Denaturacja białek  

 

Zasada: Denaturacja polega na zniszczeniu struktury drugo-, trzecio- lub czwartorzędowej białka, czyli natywnej konformacji, 

czego  konsekwencją  jest  utrata  specyficznych  biologicznych  aktywności  białek.  Denaturacja  białek    zachodzi    pod  wpływem 
różnych  czynników,  zarówno  chemicznych  jak  i  fizycznych.  Zjawisko  to  pojawia  się  pod  wpływem  wysokiej  temperatury, 
mocnych  kwasów  lub  zasad  nieorganicznych,  niektórych  kwasów  organicznych,  rozpuszczalników  organicznych,  takich  jak: 
alkohol lub aceton w temperaturze pokojowej i wyższej oraz kationów metali ciężkich.  

Denaturacja białek oligomerycznych oraz zmodyfikowanych potranslacyjnie jest praktycznie nieodwracalna. Proces ten może 

być odwracalny dla białek niezmodyfikowanych, zbudowanych z pojedynczego polipeptydu takich jak rybonukleaza, która może 
ulegać renaturacji po usunięciu czynnika denaturującego, włącznie z odzyskaniem aktywności biologicznej.

 

 

Wykonanie:  
Przygotuj 4 probówki wirówkowe opisane nr od 1 do 4, o składzie podanym w tabeli 3: 

Nr probówki 

Surowica rozc. 5x 
Mleko rozc. 5x 
Owoalbumina 
1% CH

3

COOH 

1 ml 


1 kropla 

1 ml 

1 kropla 

1 ml 



1 ml 

Próby wymieszać i wstawić do łaźni wodnej i ogrzać do wrzenia po czym obejrzeć próby, 

porównać je i zinterpretować wyniki 

Stopień zmętnienia (+/-) 

 

 

 

 

Do próby 1 dodać niewielką ilość NaCl in subst., wyjaśnić zmianę. Próby 1, 2, 4 

odwirować przy 3000obr./min. przez 5 min. Zdekantować supernatanty (wylewając je do 

zlewu). Do osuszonych osadów wprowadzić po 4 ml H

2

O dest. Próby dokładnie 

wymieszać bagietką, obserwując rozpuszczanie osadów. Zinterpretować uzyskane wyniki. 

Stopień rozpuszczalności osadów 
białek w skali od 0 do 5 (+) 

 

 

 

 

Opracowanie wyników:  

1. Podaj wartość wyznaczonego punktu izoelektrycznego kazeiny oraz krótko wyjaśnij na czym opiera się oznaczenie i przedstaw 
wnioski wynikające z doświadczenia na podstawie którego pI został wyznaczony. 
2. Scharakteryzuj ocenianą ilość wytrąconych białek osocza poddanych wysoleniu (na podstawie ilości znaków +), scharakteryzuj 
skład poszczególnych frakcji (probówki 1, 2, 3, 4) pod względem rodzaju białek i ich rozpuszczalności w H

2

O.  

3. Porównaj rozpuszczalność białek osocza poddanych wysoleniu i denaturacji i zinterpretuj uzyskane wyniki.

  

 

Polecana literatura: 
1. Chemia medyczna pod redakcją Iwony Żak, ŚAM Katowice 2001, Rozdziały 13-15. 
2. Praktikum z chemii medycznej pod redakcją Iwony Żak, ŚAM Katowice 2001, Rozdział 12. 
3. Biochemia Harpera, Murray RR i wsp. PZWL Rozdział: Białka osocza, str. 770-793.